鲁清华 张宇 张松柏 彭静 郑立敏 张德咏 刘勇
摘要:【目的】对湖南省长沙市发生的疑似番茄黄化曲叶病毒(TYLCV)样本进行检测,明确TYLCV在湖南长沙的发生情况,为TYLCV的防控提供科学依据。【方法】2016年3和11月,在湖南长沙采集疑似TYLCV样本48份,采用已发表的TYLCV不同株系的全基因组序列,利用DNAMAN进行序列比对,根据保守序列设计特异性引物TY-T-F和TY-T-R、TY-P-F和TY-P-R对番茄样本的DNA进行PCR、Southern印迹杂交(Sourthern blotting)检测和系统发育分析。对呈阳性条带的PCR产物进行切胶回收并送样测序,在NCBI上进行BLAST比对分析,利用系统发育分析TYLCV湖南长沙分离物与国内外株系的相似性。【结果】采集的48份样本中有42份样本能扩增出目的条带,阳性检出率为87.5%;将42个阳性克隆序列导入MEGA 7.0,得到27个分离物。对测序结果进行同源性分析、多重比对、聚类分析及进化分析,结果显示27个湖南长沙TYLCV分离物与我国其他省(市)分离物的相似性在98.5%~99.8%,与伊朗株系(AJ132711和GU076453)、墨西哥株系(FJ012358)、澳大利亚株系(GU178814)和葡萄牙株系(AF105975)的相似性分别介于90.7%~91.5%、95.4%~95.5%、98.6%~98.8%和99.3%~99.4%。【结论】TYLCV已在湖南长沙发生危害,需加强检疫工作,防止从疫区调运感病番茄,以控制病害扩散蔓延。
关键词: 番茄黄化曲叶病毒;番茄;检测;湖南长沙
中图分类号: S436.412.1 文献标志码:A 文章编号:2095-1191(2018)07-1332-06
0 引言
【研究意义】番茄黄化曲叶病毒(Tomato yellow leaf curl virus,TYLCV)是一种在全世界暴发的番茄病毒之一。最先在以色列报道发生(Picó et al.,1996),目前已逐步扩展到热带和亚热地区的多个国家(Segbefia et al.,2018),在我国江苏(赵统敏等,2007;姜静等,2018)、山东和安徽(余文贵等,2009)、天津(郝永娟等,2010;金凤媚等,2011)、河北(李志勇等,2011)、四川(熊艳等,2011)、北京(宋晰等,2013)、湖北(汤亚飞等,2015)及河南(王浩权等,2016)等地区均有发生,严重危害我国番茄等经济作物的生产。番茄是湖南省消费量最大、栽培面积最广的蔬菜作物之一,是农民增收致富和出口创汇的重要经济作物,因此,对番茄黄化曲叶病害的检疫及预防工作必须严格把关,以确保湖南省番茄生产的健康良性发展。【前人研究进展】国内外对TYLCV的研究主要集中在基因组结构、传毒介体、地理分布、症状和传播途径等方面。TYLCV属于双生病毒科(Geminiviridae)菜豆金色花叶病毒属(Begomovirus)成员,为单组分双生病毒,DNA-A组分大小2.7~2.8 kb,可用RNA干扰方法将植株体内的病毒滴度降低(Ammara et al.,2015)。利用病毒诱导的基因沉默(Virus-induced gene silencing, VIGS)技术,SlMAPK3可调节水杨酸和茉莉酸的信号传导,从而使番茄对TYLCV的耐受性增强(Li et al.,2017b)。根据生态学和流行病学研究,在自然界中TYLCV经烟粉虱持久性传播(Kil et al.,2016;Li et al.,2017a;Zhao et al.,2018),目前已逐步扩展到热带和亚热带地区的多个国家(Segbefia et al.,2018),并蔓延到印度洋海域和包括澳大利亚、新喀里多尼亚和毛里求斯等的太平洋海域(Mabvakure et al.,2016)。TYLCV侵染番茄的典型症状为上部新叶叶片黄化变小,叶缘卷曲,苗期染病可能导致绝收(Li et al.,2017a)。【本研究切入点】TYLCV是一种在全球范围内广泛传播的病毒,该病毒在我国多地被发现,极易随种苗传播,对番茄产业存在极大威胁。虽然该病毒的传播介体烟粉虱在湖南省为害严重,但目前尚无TYLCV在湖南发生危害的报道。2016年3和11月,湖南长沙市陆续发现疑似TYLCV的番茄植株,本研究团队立即进行大田采样检测,鉴定疑似该病毒的番茄幼苗及成苗,调查发生情况。【拟解决的关键问题】采用TYLCV特异引物TY-T-F和TY-T-R、TY-P-F和TY-P-R对湖南长沙发生的疑似TYLCV番茄样本的DNA进行PCR和Southern印迹杂交(Sourthern blotting)检测,以明确TYLCV在湖南长沙的发生情况,为TYLCV的防控提供科学依据。
1 材料与方法
1. 1 试验材料
1. 1. 1 样本采集 于2016年3和11月从湖南长沙采集疑似TYLCV样本48份,其中番茄幼苗15份、叶片33份(表1)。样本用自封袋封口,写好标签,带回实验室。
1. 1. 2 主要试剂和仪器设备 10×Buffer、dNTP、Taq DNA聚合酶、DNA Marker和琼脂糖购自北京全式金生物技术(Transgen Biotech)有限公司;DNA凝胶回收试剂盒采用美国Axygen公司的AxyPrep DNA凝胶回收试剂盒;荧光染料SYBR系列购自Thermo Fisher生产的SYBR-GREEN系列;PCR仪为基因有限公司(Gene Company Limited)产品;DIG High Prime DNA Labeling and Detection Starter Kit I购自Roche公司;BioDOC-IT凝膠成像系统为美国伯乐公司产品;阳性对照DNA由湖南省农业科学院植物保护研究所提供,阴性对照为灭菌双蒸水。
1. 2 试验方法
1. 2. 1 番茄总DNA提取 采用CTAB法提取番茄叶片总DNA(Turaki et al.,2017)。番茄叶片在液氮中研磨成粉末,加入CTAB抽提缓冲液总DNA,经氯仿∶异戊醇(体积比24∶1)纯化,加入异戊醇沉淀DNA,加入ddH2O溶解,于-20 ℃保存备用。
1. 2. 2 引物设计 根据已发表的TYLCV不同株系全基因组序列,利用DNAMAN进行序列比对,根据保守序列设计特异性引物(TY-T-F:5'-CTCTGG AATGAAGGAACAGGCAT-3',TY-T-R:5'-CCCACT
ATCTTCCTCTGCAATCCA-3'),由华大基因公司合成,预期条带长800 bp,包含AV1及完整AC2和AC3区,分别编码外壳蛋白(Coat protein,CP)、移动蛋白(Movement protein,MP)及复制增强蛋白(Replication enhance protein,REn)。
1. 2. 3 PCR检测 PCR反应体系50.0 μL:10×Bu-ffer 5.0 μL、dNTP 200 μmol/L,上、下引物各1.0 μL,DNA模板0.1~2.0 μg,Taq DNA聚合酶1.0 μL,加ddH2O至50.0 μL。扩增程序:95 ℃预变性 5 min;94 ℃ 30 s,55 ℃ 1 min,72 ℃ 1 min,进行30个循环;72 ℃延伸10 min,4 ℃结果反应。每个样本进行3次重复扩增检测。
1. 2. 4 电泳检测 将PCR扩增产物和番茄总DNA用0.8%琼脂糖凝胶进行电泳,在BioDOC-IT成像仪照像,将有特异条带的扩增产物经凝胶回收试剂盒回收纯化后,送至生工生物工程(上海)股份有限公司进行测序。所得序列在NCBI中进行BLAST比对分析。
1. 2. 5 Sourthern blotting检测 根据1.2.4的测序结果设计Sourthern blotting特异性引物(TY-P-F:5'-CAGAATGTATCGAAGCCCTGATG-3',TY-P-R:5'-TGCCTGTTCCTTCATTCCAGAG-3'),以總DNA为模板进行PCR扩增,目的片段长约350 bp,回收后用Roche公司的DIG High Prime DNA Labeling and Detection Starter Kit I进行地高辛标记,获得探针, -20 ℃保存。以番茄总DNA进行琼脂糖凝胶电泳(0.8%浓度)、转膜,杂交方法参照说明书。以健康番茄总DNA为阴性对照,接种TYLCV番茄总DNA作为阳性对照。
1. 2. 6 TYLCV扩增片段序列分析 测序结果利用DNAMAN v6.0进行序列处理,利用Seqman v7.1进行序列同源性分析,利用MEGA 7.0进行多重比对、聚类分析及进化分析,采用邻近(Neighbor-Joning)法构建系统发育进化树,进化树可信度使用1000次自导复制验证。
2 结果与分析
2. 1 TYLCV在湖南长沙的发生率调查结果
分别以设计的引物对番茄样本基因进行PCR和Southern blotting检测,结果分别扩增出800(图1和图2)和350 bp(图3)的片段,均与预期结果一致。表明湖南省长沙市采集的疑似感病番茄样本均存在TYLCV侵染。
由表2可知,48份番茄样本中有42份样本检测出TYLCV感染,检出率为87.5%,其中2016年3月采集的番茄幼苗样本TYLCV检出率为100.0%;2016年11月采集的番茄叶片样本TYLCV检出率为81.8%。
2. 2 湖南长沙TYLCV分离物序列分析结果
利用DNAMAN v6.0对42个阳性序列进行处理,同时用Seqman v7.1进行序列同源性分析,利用MEGA 7.0进行多重比对、聚类分析及进化分析,结果得到27个分离物,27个TYLCV分离物的相似性在98.6%~100.0%,与我国其他省(市)分离物的相似性在98.5%~99.8%,与伊朗株系(AJ132711、GU076453)、墨西哥株系(FJ012358)、澳大利亚株系(GU178814)和葡萄牙株系(AF105975)的相似性分别介于90.7%~91.5%、95.4%~95.5%、98.6%~98.8%和99.3%~99.4%。
聚类分析结果(图4)显示,TYLCV可分为5个分支,TYLCV湖南长沙分离物与我国辽宁(KJ754193,KJ754194)、上海(GU434143和GU434144)和广东(JQ867092)等省(市)的TYLCV分离物及澳大利亚(GU178814)、墨西哥(FJ012358)等TYLCV分离物聚类在同一分支。
3 讨论
目前,TYLCV已在我国20多个省(市)发生并危害番茄生产,该病毒的传播介体烟粉虱在湖南省为害严重,但尚未见在湖南省发生危害的报道。本研究对湖南长沙疑似感染TYLCV的番茄样本进行PCR、Sourthern blotting检测和测序分析,结果表明湖南长沙已有TYLCV发生,是TYLCV在湖南长沙的首次报道。
从系统发育进化树(图4)分析可知,湖南长沙27个TYLCV分离物的相似性在98.6%~100.0%,说明这些分离物毒源相同,番茄从同一地方调运,11月采集的番茄样本的毒源有可能来自3月采集的番茄;湖南长沙TYLCV分离物与我国其他省(市)分离物比较,相似性在98.5%~99.8%,从系统发育进化树可知,其分离物与广东(JQ867092)、浙江(AM698117)和天津(GU563330)等株系相似性较高,与上海株系(GU434144)和辽宁株系(KJ754194)相似性最高,说明湖南地区的TYLCV最有可能来自上海或辽宁地区的番茄调运;湖南长沙TYLCV分离物与国外分离物比较,与伊朗株系(AJ132711和GU076453)、墨西哥株系(FJ012358)、澳大利亚株系(GU178814)和葡萄牙株系(AF105975)的相似性分别介于90.7%~91.5%、95.4%~95.5%、98.6%~98.8%和99.3%~99.4%,说明湖南长沙TYLCV也有可能来自进口自澳大利亚或葡萄牙的番茄。因此,湖南长沙TYLCV毒源可能来自澳大利亚和葡萄牙进口的番茄,或来自辽宁和上海等地调运的番茄。
据报道,TYLCV是一种在全世界暴发的番茄病毒之一,最先在以色列报道发生,已在中东地区蔓延(Picó et al.,1996),故而湖南长沙TYLCV分离物与中东地区伊朗株系(AJ132711和GU076453)具有90.7%~91.5%的相似性。目前TYLCV已逐步扩展到热带和亚热带地区的多个国家(Segbefia et al.,2018),在我国江苏(赵统敏等,2007;姜静等,2018)、河南(王浩权等,2016)、山东和安徽(余文贵等,2009)、河北(李志勇等,2011)、北京(宋晰等,2013)、天津(郝永娟等,2010;金凤媚等,2011)、四川(熊艳等,2011)和湖北(汤亚飞等,2015)等20多个地区也先后发生危害,总体趋势是从沿海地区逐渐向内陆乃至全国蔓延,严重危害我国的番茄生产。
目前,国内外尚缺乏对TYLCV抗性较好的番茄品种。Mangal等(2017)分析对比辣椒和番茄的基因组,找到番茄抗性区域,杂交选育TYLCV抗性品种。Segbefia等(2018)通过对具有TYLCV抗性的野生番茄与栽培番茄回交杂交,选育出具有一定抗性的番茄品种。因此,在番茄生产上,选择抗TYLCV品种非常重要。此外,在番茄苗期应注意检测和防治TYLCV发生危害,以防TYLCV在湖南省快速扩展蔓延。
4 结论
对48份番茄样本的PCR和Sourthern blotting检测结果表明,TYLCV在湖南长沙已有发生。今后需加强检疫工作,防止从疫区调运感病番茄,以控制番茄黄化曲叶病毒病进一步扩散蔓延。
参考文献:
郝永娟, 王万立, 金凤媚,刘春燕,霍建飞,徐维红. 2010. 天津市番茄黄化曲叶病毒病的发生与防治[J]. 天津农业科学, 16(2):48-50. [Hao Y J, Wang W L, Jin F M,Liu C Y, Huo J F, Xu W H. 2010. Occurrence and control of Tomato yellow leaf curl virus(TYLCV) in Tianjin[J]. Tianjin Agricultural Sciences , 16(2): 48-50.]
姜靜,王银磊,李亚茹,赵丽萍,周蓉,陈伟男,赵统敏,余文贵. 2018. 江苏省及其他地区番茄黄化曲叶病毒的分子鉴定及序列分析[J]. 江苏农业学报,34(1):238-240. [Jiang J,Wang Y L,Li Y R,Zhao L P,Zhou R,Chen W N,Zhao T M,Yu W G. 2018. Molecular identification and sequence analysis of Tomato yellow leaf curl virus in Jiangsu Province and its peripheral area[J]. Jiangsu Journal of Agricultural Sciences,34(1):238-240.]
金凤媚, 薛俊, 郏艳红,周祥明,王建江,刘仲齐. 2011. 天津地区番茄黄化曲叶病毒DNA-A的克隆和序列分析[J]. 华北农学报, 26(1):58-62. [Jin F M, Xue J, Jia Y H,Zhou X M, Wang J J, Liu Z Q. 2011. Cloning and sequence analysis of TYLCV DNA-A in Tianjin[J]. Acta Agriculturae Boreali-Sinica, 26(1): 58-62.]
李志勇, 谢夏青, 李兴红,董志平. 2011. 邯郸、保定番茄黄化曲叶病毒检测及其DNA-A全序列分析[J]. 华北农学报, 26(3):64-67. [Li Z Y, Xie X Q, Li X H, Dong Z P. 2011. Molecular detection and analysis of the complete nucleotide sequence of TYLCV isolates from Handan and Baoding[J]. Acta Agriculturae Boreali-Sinica,26(3): 64-67.]
宋晰, 师迎春, 张世晨, 梁彦,王廿,陈善义,周涛. 2013. 北京地区番茄黄化曲叶病病毒分离物测定及株系的初步鉴定[J]. 植物病理学报, 43(2):113-119. [Song X, Shi Y C, Zhang S C,Liang Y,Wang N,Chen S Y,Zhou T. 2013. Detection and preliminary strain identification of the pathogen induing Tomato yellow leaf curl disease in Beijing[J]. Acta Phytopathologica Sinica,43(2):113-119.]
汤亚飞, 何自福, 杜振国,佘小漫, 蓝国兵, 罗方芳. 2015. 番茄黄化曲叶病毒在湖北首次报道[J]. 植物保护,41(5):233-236.[Tang Y F, He Z F, Du Z G,She X M,Lan G B,Luo F F. 2015. First report of Tomato yellow leaf curl virus in Hubei Province of China[J]. Plant Protection, 41(5): 233-236.]
王浩权,纠敏,汪伦记,邱智军,黄狮,张敏. 2016. 侵染河南省番茄的番茄黄化曲叶病毒及伴随卫星DNA分子的基因组特征[J]. 河南农业科学,45(10):71-75. [Wang H Q,Jiu M,Wang L J,Qiu Z J,Huang S,Zhang M. 2016. Genomic characterization of DNA-A and associated satellite DNA molecule of Tomato yellow leaf curl virus infecting tomato in Henan[J]. Journal of Henan Agricultural Scien-ces,45(10):71-75.]
熊艳, 杨帅, 青玲,周常勇, 孙现超, 杨水英. 2011. 四川番茄黄化曲叶病病原分子鉴定及变异分析[J]. 中国农业科学,44(3):477-484. [Xiong Y,Yang S,Qing L,Zhou C Y,Sun X C,Yang S Y. 2011. Molecular identification and variation analysis of the pathogen causing Tomato yellow leaf curl disease in Sichuan Province[J]. Scientia Agriculture Sinica, 44(3): 477-484.]
余文贵, 赵统敏, 杨玛丽,赵丽萍, 季英华, 周益军. 2009. 山东、安徽两省栽培番茄烟粉虱传双生病毒的PCR检测及序列分析[J]. 江苏农业学报, 25(4):747-751. [Yu W G, Zhao T M, Yang M L,Zhao L P, Ji Y H, Zhou Y J. 2009. PCR detection and sequence analysis of whiteny-transmitted gemiilivirus in tomato from Anhui and Shandong Provinces[J]. Jiangsu Journal of Agricultural Scien-ces, 25(4): 747-751.]
赵统敏,余文贵,周益军,季英华. 2007. 江苏省番茄黄化曲叶病毒病(TYLCD)的发生与诊断初报[J]. 江苏农业学报,23(6):654-655. [Zhao T M,Yu W G,Zhou Y J,Ji Y H. 2007. The occurrence and diagnosis of Tomato yellow leaf curl disease(TYLCD) in Jiangsu Provinc[J]. Jiangsu Journal of Agricultural Sciences, 23(6): 654-655.]
Ammara U E, Mansoor S, Saeed M, Amin I, Briddon R W,Al-Sadi A M. 2015. RNA interference-based resistance in transgenic tomato plants against Tomato yellow leaf curl virus-Oman(TYLCV-OM) and its associated betasatellite[J]. Virology Journal,12(1):38.
Kil E J,Kim S,Lee Y J,Byun H S,Park J,Seo H,Kim C S, Shim J K,Lee J H,Kim J K,Lee,Choi H S,Lee S. 2016. Tomato yellow leaf curl virus(TYLCV-IL): A seed-transmissible geminivirus in tomatoes[J]. Scientific Reports, 6:19013.
Li M,Li X J,Su Y L. 2017a. Flue-cured tobacco confirmed as a reservoir host plant for Tomato yellow leaf curl virus by agro-inoculation and Bemisia tabaci MED-mediated transmission[J]. PLoS One, 12(12):e0190013.
Li Y Z,Qin L,Zhao J J,Muhammad T,Cao H H,Li H L, Zhang Y,Liang Y. 2017b. SlMAPK3 enhances tolerance to Tomato yellow leaf curl virus(TYLCV) by regulating salicylic acid and jasmonic acid signaling in tomato(Solanum lycopersicum)[J]. PLoS One,12(2):e0172466.
Mabvakure B,Martin D P,Kraberger S,Cloete L,Brunschot S V,Geering A D W,Thomas J E,Bananej K,Lett J M, Lefeuvre P,Varsani A,Harkins G W. 2016. Ongoing geographical spread of Tomato yellow leaf curl virus[J]. Virology,498:257-264.
Mangal M,Srivastava A,Sharma R,Kalia P. 2017. Conservation and dispersion of genes conferring resistance to tomato begomoviruses between tomato and pepper genomes[J]. Frontiers in Plant Science,doi:10.3389/fpls.2017.01803.
Picó B,Díez M J, Nuez F. 1996. Viral diseases causing the greatest economic losses to the tomato crop. II. The Tomato yellow leaf curl virus—A review[J]. Scientia Horticulturae, 67(3): 151-196.
Segbefia M M,Amoatey H M,Ahiakpa K,Ahiakpa J K, Quartey E K,Appiah A S,Nunoo J,Kusi-Adjei R. 2018. Field evaluation of tomato varieties/breeding lines against Tomato yellow leaf curl virus disease(TYLCV)[J]. Pertanika Journal of Tropical Agricultural Science,41(1):423-440.
Turaki A A,Ahmad B,Magaji U F,Abdulrazak U K,Yusuf B A. 2017. Optimised cetyltrimethylammonium bromide (CTAB) DNA extraction method of plant leaf with high polysaccharide and polyphenolic compounds for downstream reliable molecular analyses[J]. African Journal of Biotechnology, 16(24):1354-1365.
Zhao W H,Ji Y H,Wu S H,Ma X F,Li S,Sun F,Cheng Z B,Zhou Y J,Fan Y J. 2018. Single amino acid in V2 encoded by TYLCV is responsible for its self-interaction, aggregates and pathogenicity[J]. Scientific Reports,doi:
10.1038/s41598-018-21446-2
(責任编辑 麻小燕)