杜鹏瑶 王丽红 刘德江 张云杰
摘要 [目的]探讨热水提取法提取树舌灵芝多糖(soluble polysaccharides from Ganoderma applanatum,GASP)的最佳提取工艺。[方法]在单因素试验的基础上,运用响应面法对提取的树舌灵芝多糖(GASP)各项参数进行优化。[结果]提取时间、提取温度、液料比均对树舌灵芝多糖提取率有显著影响,影响大小为提取时间>液料比>提取温度;最终确定树舌灵芝多糖提取的最佳工艺条件为提取温度77 ℃、提取时间138 min、液料比27∶1(mL∶g),该条件下多糖实际提取率为2.57%±0.05%。[结论]响应面法优化树舌灵芝多糖提取工艺参数切实可靠。
关键词 树舌灵芝;多糖;提取;响应面
中图分类号 R284.2文献标识码 A文章编号 0517-6611(2018)34-0148-04
树舌灵芝[Ganoderma applanatum (Pers.) Pat]别名树舌、树舌扁灵芝、平蓋灵芝,隶属于担子菌门(Basidiomycota)非褶菌目(Aphyllophorales)灵芝菌科(Ganodermataceae)灵芝属(Ganoderma Karst),是药食同源的大型高等真菌[1]。我国大部分省区均有分布[2],且广泛分布于欧洲、亚洲、北美洲等地区的其他国家[3]。树舌灵芝药用见于《中国药用真菌图鉴》和《长白山植物药志》,其性平,微苦,能抗癌、止痛、清热、化积、止血、化痰、消炎解毒[4]。研究表明,树舌灵芝还具调节免疫力、抗肿瘤、保肝、抗菌、抗病毒、抗氧化、降血压等生物活性[5-11]。多糖作为一种天然高分子化合物,具有广泛的生物活性,近年来受到广大学者们的重视。而树舌灵芝多糖(soluble polysaccharides from Ganoderma applanatum,GASP)作为树舌灵芝的活性成分之一,也受到医药工作者的重视,关于其报道也最多。
目前提取多糖常用的方法有水提法、超声提取法、微波提取法、酶提取法、超临界流体萃取法、酸提法、碱提法等[12-14]。而水提法是实验室提取多糖最常用的方法之一,该方法具有经济环保、操作简单、对设备要求低等优点。最重要的是与其他方法相比,对天然活性物质的结构影响小,因此被广泛应用于包括多糖的水溶性活性成分的提取研究[15]。笔者采用热水提取法对树舌灵芝多糖(GASP)进行提取,并在提取条件单因素的基础上进行响应面法优化,以确定水提树舌灵芝多糖最佳提取工艺,为树舌灵芝多糖规模化开发提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
树舌灵芝采至黑龙江省佳木斯市汤原县鹰山,经佳木斯大学生药学教研室王丽红教授鉴定为树舌灵芝(Ganoderma applanatum)。试验所用葡萄糖、浓硫酸、苯酚、乙醇均为国产分析纯试剂。
1.2 仪器与设备
FW135中草药粉碎机(天津市泰斯特仪器有限公司);FA2004N型电子分析天平(上海恒平科学仪器有限公司);HH-24型恒温水浴锅(郑州长城科工贸有限公司);UV-2550型紫外可见分光光度计(岛津公司)。
1.3 方法
1.3.1 树舌灵芝多糖的提取。
取清洗过后的树舌灵芝子实体放至烘箱,50 ℃烘干至恒重,粉碎过40目筛,制得树舌灵芝干粉。精密称取树舌干粉3.0 g,用80%乙醇浸泡24 h,乙醇用量刚好没过料面即可,抽滤,80%乙醇洗脱滤渣至滤液澄清,自然晾干。按试验方案所需液料比、提取温度、提取时间、提取次数进行提取,抽滤,离心,浓缩至固定体积,所得溶液即为树舌灵芝粗多糖提取液。
1.3.2 葡萄糖标准曲线的绘制。
精密称取干燥恒重的标准葡萄糖10 mg,定容于100 mL容量瓶中,配制成浓度为0.1 mg/mL的葡萄糖标准溶液。精密移取0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2 mL的葡萄糖标准品溶液,分别置于具塞试管中,依次加水定容至2 mL,另取2.0 mL蒸馏水作空白对照。然后加入1.0 mL浓度5%的苯酚溶液,摇匀,迅速加入5 mL浓硫酸,摇匀后待试管冷却至室温即可。在波长490 nm处测定吸光值,以所测吸光值为纵坐标,标准葡萄糖浓度为横坐标,绘制标准曲线,并求出线性回归方程及相关系数。
1.3.3 粗多糖含量及提取率的测定 。
将所得粗多糖溶液稀释至适当倍数后得样品溶液,精密移取样品溶液2 mL,按测定标准曲线的方法测定吸光度,由回归方程计算树舌灵芝粗多糖溶液中多糖的浓度,按下式计算树舌灵芝粗多糖溶液中多糖的含量:多糖含量(m0)=C·V·X;多糖得率(%)=m0/m×100%。式中,C为样品溶液中多糖的浓度(mg/mL),V为样品溶液体积(mL),X为稀释倍数,m为树舌灵芝干重(g),m0为多糖含量(mg)。
1.4 单因素试验设计
1.4.1 液料比对树舌灵芝多糖提取率的影响。
准确称取6份质量相同的树舌灵芝干粉3.0 g,按树舌灵芝粗多糖提取工艺流程“1.3.1”进行操作,设置液料比为15∶1、25∶1、35∶1、45∶1、55∶1、65∶1(mL∶g,下同),在70 ℃条件下浸提2 h,提取3次,根据所测吸光度考察液料比对树舌灵芝粗多糖得率的影响。
1.4.2 提取温度对树舌灵芝多糖提取率的影响。
准确称取6份质量相同的3.0 g灵芝干粉末,按树舌灵芝粗多糖提取工艺流程进行操作,按液料比 45∶1加入蒸馏水,设置提取温度分别为50、60、70、80、90、100 ℃,浸提2 h,提取3次。根据所测吸光度考察提取温度对树舌灵芝多糖提取率的影响。
1.4.3 提取时间对树舌灵芝多糖提取率的影响。
准确称取6份质量相同的5 g灵芝干粉末,按液料比45∶1加入蒸馏水,设置提取时间分别为30、60、90、120、150、180 min,在70 ℃条件下提取3次,根据所测吸光度考察提取时间对树舌灵芝粗多糖得率的影响。
1.4.4 提取次数对树舌灵芝多糖提取率的影响。
准确称取6份质量相同的5 g灵芝干粉末,按液料比45∶1加入蒸馏水,设置提取次数分别为1、2、3、4次,在70 ℃条件下浸提2 h。根据所测吸光度考察提取次数对树舌灵芝粗多糖得率的影响。
1.5 响应面试验设计
通过单因素试验确定各因素变量范围,选择提取温度(A)、提取时间(B)及液料比(C)为主要影响因素。运用Design Expert 8.0软件进行3因素3水平Box-Behnken试验设计,试验因素及水平编码如表1所示。根据公式(1)计算出多元二次回归数学模型,进行数据回归分析。
2 结果与分析
2.1 标准曲线线性考察结果
根據葡萄糖对照品浓度(C)与吸光度值(A)的线性关系得回归方程A=67.428 57C-0.112 19,R2=0.999 5,说明葡萄糖浓度与吸光度值的线性关系良好。
2.2 单因素结果分析
2.2.1 液料比对树舌灵芝多糖提取率的影响。
由图1可知,液料比在15∶1~35∶1范围内,GASP提取率与液料比呈正相关;在35∶1时最大,提取率可达2.18%;而液料比超过35∶1以后,随着液料比的增大GASP提取率呈下降趋势。这可能是因为在一定范围内,随着液料比的增大可以提高植物细胞内外溶剂的浓度差,从而使水溶性多糖迅速溶出从而提高多糖提取率[16],但液料比达到一定值后,液料比太大,浓缩时间延长,导致多糖损失[17]。综合考虑,选择35∶1为BBD(Box-Behnken Design)试验液料比的中心点。
2.2.2 提取温度对树舌灵芝多糖提取率的影响。
由图2可知,在一定提取范围内,GASP提取率随着提取温度的升高而增大,提取温度在80 ℃时GASP提取率最高可达2.05%;提取温度超过80 ℃以后,随着温度的升高GASP提取率呈下降趋势。这可能因为温度上升到一定水平时,由温度过高引起部分多糖结构破坏而降解[18],从而使GASP提取率降低。因此选择80 ℃为BBD试验提取温度的中心点。
2.2.3 提取时间对树舌灵芝多糖提取率的影响。
图3表明,GASP提取率随着温度的升高呈先上升后下降的趋势,在120 min时达到峰值2.08%。这可能因为处理时间太短,样料中的多糖不能充分溶解;而时间太长,会使多糖降解为各种单糖,导致提取率下降[19]。因此选择120 min为BBD试验提取时间的中心点。
2.2.4 提取次数对树舌灵芝多糖提取率的影响。由图4可以看出,GASP提取率随着提取次数的增加而提高,提取次数从1次增加到3次,GASP提取率从1.13%增加到2.11%,增幅比较明显,从3次到5次提取率几乎趋于稳定。综合考虑,为节约资源,简化操作,确定BBD试验提取次数的中心点为3次。
2.3 响应面优化结果分析
2.3.1 Box-Behnken模型建立及试验结果。
通过响应面设计Box-Behnken对GASP提取率建立数学模型,优化提取工艺参数,共有17个试验点,12个分析因子,5个零点。以分析因子为自变量在A、B、C构成三维顶点;零点为区域的中心点。零点试验重复5 次,用以估算试验误差[20]。以GASP提取率为响应值,试验结果见表2。
2.3.2 响应面回归模型的建立及显著性检验。
运用Design-expert 8.0软件对表2中的GASP提取率进行回归分析,建立回归模型。根据公式(1),得GASP提取率回归方程(编码方程)为:Y=2.54+0.10×A+0.38×B-0.32×C-0.12×A×B+0.33×A×C-0.23×B×C-0.38×A2-0.50×B2-0.36×C2。
模型的F值为49.3 P<0.000 1**,表明该试验所得拟合方程回归模型具有高度显著性。失拟项P>0.05,不显著,表明该模型的稳定性较好;调整决定系数R2=0.984 5,表明GASP提取率约98.45%是由独立变量决定;决定系数R2Adj=0.964 5,变异系数C.V.%=5.50%,表明该模型的相关性高,拟合度较好,能很好地模拟GASP真实提取率与各变量之间的关系。概率值P<0.05说明该模型项是显著的;P<0.01说明该模型项为极其显著。根据回归模型方差分析可知:FA=7.18,PA=0.031 5*;FB=98.06,PB<0.000 1**;FC=68.21,PC<0.000 1**;FAB=4.99,PAB=0.060 7;FAC=37.67,PAC=0.000 5**;FBC=18.54,PBC=0.003 5**;FA2=51.54,PA2=0.000 2**;FB2=89.46,PB2=0.000 1**;FC2=46.77,PC2=0.000 2**。可见,A为显著项;B、C、AC、BC、A2、B2 、C2均为极显著项。
2.3.3 等高线图及响应面图分析。
为比较直观地了解各因素之间交互作用是否显著,以期进一步优化试验工艺,运用Design-expert 8.0软件对GASP提取率响应值分析作图,得到由响应值、A、B、C因素所构成的三维空间图及其三维空间在二维平面上的等高线图,分析结果见图5~7。
由图5中的三维空间图可知,该试验在所选范围内存在极值,既是三维曲面的最高点,又是等高线图椭圆的中心点。与A方向比较,B方向的效应面曲线较陡,B等高线的密度显著高于沿A方向移动的密度,说明提取时间(B)对GASP提取率的影响显著高于提取温度(A);等高线呈圆形,表明提取时间(B)与提取温度(A)的交互作用不显著。
由图6可以看出,与A方向比较,C方向的效应面曲线较陡,C等高线的密度显著高于沿A方向移动的密度,说明液料比(C)对GASP提取率的影响显著高于提取温度(A);等高线呈椭圆形,表明液料比(C)与提取温度(A)的交互作用显著。
由图7可以看出,与C方向比较,B方向的效应面曲线较陡,B等高线的密度显著高于沿C方向移动的密度,说明提取时间(B)对GASP提取率的影响显著高于液料比(C);等高线呈椭圆形,表明提取时间(B)与液料比(C)的交互作用显著。因此,各因素对GASP提取率影响大小为提取时间(B)>液料比(C)>提取温度(A)。
2.3.4 响应面模型验证。
根据所得到的模型,预测最佳提取工艺条件为提取温度77.04 ℃、提取时间137.91 min、液料比27.33∶ 在该条件下GASP提取率的理论值可达2.76%。考虑到试验的实际操作性,将提取条件修正为提取温度77 ℃、提取时间138 min、液料比27∶1。试验重复3次,所得GASP实际提取率为2.57%±0.05%,该结果与理论值较为吻合。
3 结论
该研究在单因素试验的基础上,运用Box-Benhnken响应面法对树舌灵芝多糖的提取条件进行优化,结果表明:提取温度、提取时间、液料比均对树舌灵芝多糖提取率有显著影响,影响大小为提取时间>液料比>提取温度;最终确定树舌灵芝多糖提取的最佳工艺条件为提取温度77 ℃、提取时间138 min、液料比27∶ 在该条件下多糖实际提取率为2.57%±0.05%。可见,运用响应面法优化树舌灵芝多糖提取工艺参数切实可靠,为树舌灵芝多糖的开发利用奠定了理论基础。
参考文献
[1]姜俊清,赵绥林,李艳平,等.扁芝生物学特性的初步研究[J].东北林业大学学报,1999,27(5):59-61.
[2]刘英杰,翟凤艳,宋慧.树舌灵芝菌丝体不皂化物GC-MS分析[J].资源开发与市场,2011,27(1):4-5.
[3]冯敏,东方神奇仙草——现代科学论灵芝[M].北京:科学出版社,2005.
[4]马述清.树舌灵芝部分提取物的分离及其药理活性研究[D].长春:吉林农业大学,2008.
[5]ZHOU H B,LIU G Q,HUANG F R,et al.Improved production,purification and bioactivity of a polysaccharide from submerged cultured Ganoderma lucidum[J].Archives of pharmacal research,2014,37(12):1530-1537.
[6]王友芳,纪莎,何丹鸿,等.星点设计-效应面法优化鹿角灵芝微乳超声提取工艺[J].中国现代应用药学,2015,32(10):1198-1202.
[7]WANG P Y,ZHU X L,LIN Z B.Antitumor and immunomodulatory effects of polysaccharides from broken-spore of Ganoderma lucidum[J].Frontiers in pharmacology,2012,3:1-8.
[8]張文彭,陈康林.药用真菌治肿瘤[M].北京:中国中医药出版社,2014:39-41.
[9]EO S K,KIM Y S,OH K W,et al.Mode of antiviral activity of water soluble components isolated from Elfvingia applanata on vesicular stomatitis virus[J].Archives of pharmacal reseach,2001,24(1):74-78.
[10]岳文杰,关利新.树舌多糖对心血管系统作用的研究[J].牡丹江医学院学报,1991,12(2):66-68.
[11]王本祥,刘爱静,程秀娟,等.树舌多糖对各种实验性肝损伤的影响[J].中药药理与临床,1985(00):186-187.
[12]CHEN T Q,WU Y B,WU J G,et al.Efficient extraction technology of antioxidant crude polysaccharides from Ganoderma lucidum(Lingzhi),ultrasonic-circulating extraction integrating with superfine-pulverization[J].Journal of the Taiwan institute of chemical engineers,2014,45(1):57-62.
[13]于海洋,弥春霞,吴薇,等.灵芝多糖提取方式比较及多糖应用研究进展[J].安徽农业科学,2014,42(8):2318-2319,2400.
[14]ZHAO X,ZHOU F,ZHU L,et al.Optimization of ultrasonic wave extraction technology of polysaccharides from auricularia auricula by response surface methodology and molecular weight distributions[J].Advanced materials research,2011,183-185:1852-1858.
[15]王娇,许丽,杨志翔,等.超声提取海南树舌灵芝多糖工艺参数的响应面优化[J].南华大学学报(自然科学版),2016,30(4):121-128.
[16]CHEN R Z,LI Y,DONG H,et al.Optimization of ultrasonic extraction process of polysaccharides from Ornithogalum Caudatum Ait and evaluation of its biological activities[J].Ultrasonics sonochemistry,2012,19(6):1160-1168.
[17]WANG J L,ZHANG J,WANG X F,et al.A comparison study on microwave-assisted extraction of Artemisia sphaerocephala polysaccharides with conventional method:Molecule structure and antioxidant activities evaluation[J].Int J Biol Macromol,2009,45:483-492.
[18]王吉标,欧阳臻,赵明,等.响应面分析法优化金蝉花多糖的提取工艺[J].天然产物研究與开发,2014,26(3):438-443.
[19]ZHAO B T,ZHANG J,GUO X,et al.Microwave-assisted extraction,chemical characterization of polysaccharides from Lilium davidiivar.unicolor Salisb and its antioxidant activities evaluation[J].Food hydrocolloids,2013,31(2):346-356.
[20]GAN C Y,LATIFF A A.Extraction of antioxidant pecticpolysaccharide from mangosteen(Garcinia mangostana)rind:Optimization using response surface methodology[J].Carbohyd Polym,2011,83:600-607.