虎杖对COPD模型大鼠肺组织MMP-9、TIMP-1表达的干预研究

2018-04-24 07:26石亚莉楼黎明陈素珍王世强胡丹丹黄冉冉徐一凯
浙江中西医结合杂志 2018年4期
关键词:强的松虎杖蛋白酶

石亚莉 楼黎明 陈素珍 王世强 胡丹丹 黄冉冉 徐一凯

慢性阻塞性肺疾病(chronic obstructive pulmo- nary disease,COPD)是一种以气流受限和呼吸系统症状持续存在为特征的常见疾病[1]。但目前为止COPD发病机制仍未完全明确,较肯定的包括蛋白酶/抗蛋白酶和氧化/抗氧化失衡、气道和肺实质慢性炎症等[2],其中基质金属蛋白酶9(matrix metallopeptidase 9,MMP-9)、基质金属蛋白酶抑制剂-1(tissue inhibitor of metalloproteinase 1,TIMP-1)及其比值的研究较为广泛。已有实验研究证明虎杖提取物白藜芦醇对COPD模型大鼠肺组织发挥抗炎、抗氧化作用,对肺组织具有保护作用[3]。本研究采用熏烟和气管内滴入脂多糖(LPS)的方法创建大鼠COPD模型,以观察虎杖对COPD大鼠模型肺组织MMP-9和TIMP-1表达的影响,进一步探索其可能作用机制。

1 实验材料

1.1动 物 健康雄性SD大鼠40只,清洁级,体质量240~257g,周龄4周左右,来源于上海西普尔必凯实验动物有限公司,许可证号:SCXK(沪)2013-0016,由浙江中医药大学动物实验中心饲养(温度23~25℃,湿度约 70%)。

1.2药物与试剂 虎杖煎剂:杭州华东中药饮片有限公司生产,批号161020,由浙江省中山医院中药房煎至成1mg/mL备用。强的松:规格5mg/片,浙江仙琚制药股份有限公司生产,批号160693。脂多糖:规格 10mg/支,美国 Sigma公司,批号 L-2880。RNAiso Plus试剂盒(日本 Takara公司,批号 9109);Prime-Script RT reagent Kit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)反转录试剂盒(日本Takara公司,批号RR047A);SYBR Premix Ex Taq II(Tli RNaseH Plus)(日本 Takara公司,批号 RR820A)。

2 实验方法

2.1分组及模型制备 雄性SD大鼠40只随机分成正常对照组、COPD模型组、强的松组、虎杖组,每组10只。除正常对照组外,COPD模型组、强的松组、虎杖组采用烟熏+气管内注入脂多糖方法建立大鼠COPD模型[4]。将大鼠放入定制的有机玻璃烟熏箱内被动吸烟,1次20支香烟,持续1h,1天2次,每次熏烟间隔4h,熏烟8周。在烟熏的第1、14、28天用10%水合氯醛(10mL/kg)麻醉大鼠,经气管滴入LPS的生理盐水溶液(200μL)。

2.2给药方法 正常对照组、COPD模型组予6mL/kg生理盐水灌胃,强的松组予强的松6mg/kg灌胃,虎杖组予虎杖煎剂6g/kg灌胃,在熏烟的第29天开始药物干预,每天熏烟前30min给予大鼠灌胃,给药28天。

2.3标本采集 在给药第28天,大鼠予水合氯醛腹腔注射麻醉,经腹主动脉采血处死。取左肺组织固定于福尔马林中备用;右肺组织经液氮速冻后,于-80摄氏度冰箱保存,待用RT-PCR检测。

2.4肺组织病理改变 左肺组织用梯度酒精脱水、浸蜡和包埋,制成石蜡块,用苏木素染色,盐酸酒精分化及自来水返蓝,之后伊红染色,再次脱水、透明、封片,于显微镜下观察炎症细胞浸润,光学显微镜下进行肺组织病理观察。

2.5Real-Time PCR法检测肺组织MMP-9、TIMP-1 mRNA表达水平 从液氮速冻右肺组织中提取细胞,按照RNAiso Plus Total RNA Reagent试剂盒步骤进行RNA的提取、洗涤、溶解,RNA浓度测定,再按照PrimeScript RT regent Kit With gDNA Eraser反转录试剂盒步骤进行cDNA的合成。最后将样品cDNA 稀释 5~20倍,选取内参基因(GAPDH)。采用SYBR试剂法,对所得的样品进行表达分析。放入LightCycler 480 Real-time PCR仪中进行扩增。荧光定量 PCR 反应程序:95℃,30s;95℃,5s,60℃,30s,40个循环;95℃,5s,60℃,1min,用于检测溶解曲线。采用2-△△CT法分析样品间的相对表达量。使用Primer5.0软件,分别设计目标基因和内参基因的QPCR引物(表1),引物由杭州华安生物技术有限公司合成。

2.6统计学方法 所有数据应用SPSS17.0统计软件进行数据处理,计量资料用均数±标准差(x±s) 表示,组间比较采用单因素方差分析,P<0.05为差异有统计学意义。

3 实验结果

3.1各组大鼠肺组织超微结构变化 对照组大鼠肺组织气道结构基本正常,上皮细胞完整,气道周围和血管周围组织未见炎症细胞浸润;肺泡形态正常,肺泡间隔未增厚;与正常对照组相比,COPD三组大鼠,肺组织大量上皮细胞脱落,黏膜上皮增生,炎性细胞浸润,肺泡间隔增厚,肺泡缩小,甚至出现肺泡实变。强的松组、虎杖干预组肺组织损伤轻于COPD模型组,见图 1(封底)。

表1 目标基因引物序列及产物长度

3.2各组大鼠肺组织MMP-9、TIMP-1 mRNA表达比较 与正常对照组比较,其余三组大鼠肺组织MMP-9和TIMP-1 mRNA表达水平均明显升高(P<0.05);与COPD模型组比较,强的松组、虎杖组大鼠肺组织MMP-9和TIMP-1 mRNA表达水平均明显降低(P<0.05),见表 2。

表2 各组大鼠肺组织MMP-9、TIMP-1 mRNA相对表达量比较(x±s)

4 讨论

慢阻肺病理改变表现为气道、肺实质和肺血管的慢性炎症,炎症反应导致实质破坏、黏液高分泌,增加细支气管周围和间质纤维化,促进小气道气流受限的发生,而持续气流受限的重要因素之一为气道重塑[5]。诱发气道重塑的原因之一是细胞外基质(ECM)的异常降解和沉积,在ECM降解过程中,蛋白酶主要通过降解基质中的弹性蛋白,破坏弹性蛋白保持小气道通畅和肺泡壁弹性的作用,引起气道及实质的破坏,这种破坏是COPD肺气肿特征的重要成因[6]。此后新合成的弹性蛋白,不能完全形成链即ECM,发挥结构支撑的作用,这也可能是气道重塑的机理之一。

基质金属蛋白酶(MMPs)家族在已知的二十多个成员中MMP-9是最主要的弹性蛋白水解酶[7]。MMP-9主要来源于肺泡巨噬细胞、中性粒细胞,降解气道、肺泡基底膜及ECM中弹性蛋白,促进液体渗出、炎症介质释放,加剧黏液分泌和气道炎症反应[8];弹性蛋白的降解,进而导致COPD肺泡基质及肺泡结构破坏,从而MMP-9参与气道重塑,导致持续性气流受限和炎症反应。TIMP-1是一种能特异性抑制MMP-9活性的金属蛋白酶组织抑制剂。TIMP-1通过抑制MMP-9的活性减少ECM的降解破坏,并能使肺泡ECM沉积,反映气道纤维化和修复重塑的过程[9]。MMP-9/TIMP-1的平衡是维持ECM正常状态所必须的,一旦平衡打破则出现病理状态。MMP-9、TIMP-1及其比值的平衡是维持基质正常状态所必须的。MMP-9、TIMP-1的表达及其比值升高,表明处于以炎症反应为主的病理状态,以组织破坏为主;表达及比值下降,气道表面以修复为主[10]。

慢阻肺归属中医“肺胀、喘证、咳嗽”,病位在肺、脾、肾三脏,病理因素主要为痰、瘀、虚三者。急性发作期的病机主要为痰热夹瘀,治则以祛痰化瘀,宣肺泄热为主[11]。虎杖始见于《雷公炮炙论》,其性味微寒微苦,归肝、胆、肺经,其主要功能有利湿退黄,散瘀止痛,清热解毒,止咳化痰等。活性成分主要有大黄素、大黄素甲醚、虎杖苷和白藜芦醇[12]。研究[12-13]证实白藜芦醇抑制香烟烟雾(CSM)介导COPD中肺泡巨噬细胞的炎症细胞因子释放,通过减少促炎细胞因子的释放,提高谷胱甘肽的含量,降低肺组织的髓过氧化物酶(MPO)活性,从而减少肺损伤。白藜芦醇亦可通过核转录因子(NF-κB)通路显著抑制基质金属蛋白酶的表达[14],调节蛋白酶/抗蛋白酶平衡。慢阻肺急性加重期中医辨证分型,痰热瘀阻型约占47.3%[15],组方多配伍虎杖归肺经以活血清热、化痰止咳[16]。

本实验发现,虎杖组、强的松组大鼠肺组织切片较COPD模型组结构较完整,此结果与虎杖及糖皮质激素对COPD肺组织具有保护作用的众多研究相符。与正常对照组比较,COPD三组大鼠肺组织MMP-9和TIMP-1mRNA表达水平均明显升高(P<0.05),这与 Higashimoto 等[17]的研究相符,提示MMP-9和TIMP-1参与慢阻肺气流受限及气道重塑的发生发展;经强的松、虎杖干预后,大鼠肺组织MMP-9和TIMP-1mRNA表达水平均明显降低(P<0.05),证明二者均具有抗炎作用。提示虎杖用于COPD大鼠可显著改善MMP-9/TIMP-1失调,可抑制炎症反应、气道重塑,可保护肺组织、改善气流受限。但虎杖组干预作用不及强的松组(P<0.05)。

综上所述,模型组COPD大鼠存在蛋白酶/抗蛋白酶的失衡状态,经虎杖煎剂干预后可改善肺组织MMP-9和TIMP-1mRNA表达水平及其失衡,有利于抑制其炎症反应,保护肺泡基质延缓气道重塑,但目前其机制尚未确定,有待进一步研究[本文受浙江中医药大学附属第三医院院级医药卫生科技计划(No.ZS16ZA01)、浙江中医药大学校级科研基金(No.2013ZR03)资助]。

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