梁颖莹,莫志文,黄宇帆,邵汛帆,袁亚维
(广州医科大学附属肿瘤医院,广州510030)
肾细胞癌(肾癌)是常见的泌尿系统恶性肿瘤之一[1]。肾癌治疗方法包括手术及免疫治疗,但复发和转移仍是威胁患者生命的重要原因,进展期患者5年生存率不到10%[2]。因此,深入研究肾癌发病机制,对提高肾癌诊治水平具有重要意义。miRNA不编码蛋白质,可通过与靶标基因3′-UTR端的序列结合从而沉默基因表达[3]。现已发现多种肿瘤中miRNA表达异常,且miRNA可通过影响细胞增殖、迁移、侵袭和凋亡从而参与肿瘤的发生发展[4]。研究[5,6]认为miRNA可作为多种肿瘤的临床诊断、病理分型和预后的标志物。miR-381位于人14号染色体上,在多种肿瘤中表达下调,对肿瘤细胞的生长侵袭有抑制作用。有学者[7~9]报道miR-381可通过抑制ERK和AKT信号通路促进神经胶质瘤细胞增殖,其表达水平也与肺癌的预后不良呈负相关。关于miR-381在肾癌中的作用尚未见报道。本研究观察了miR-381在肾癌细胞系中的表达变化,及其对肾癌细胞增殖、迁移、侵袭能力的影响,并探讨其可能的分子机制。
1.1 细胞与主要实验材料 肾癌细胞系Caki-2、A498、786-O及人正常肾上皮细胞系HK-2均购自中山大学实验动物中心细胞库。胎牛血清及RPMI1640培养基购自美国Roswell公司。DNA结合抑制因子1(ID-1)及GAPDH一抗均购自美国BD公司,二抗购自美国Santa Cruz公司。miR-381 mimics及Scramble均由上海吉玛生物科技有限公司合成。RT-PCR仪购自美国BD公司。HBS-1096B酶标仪购自南京德铁实验设备有限公司。蛋白免疫印迹电泳设备购自美国Bio-Rad公司。
1.2 肾癌细胞中miR-381检测 Caki-2、A498、786-O细胞及HK-2细胞均种植于RPMI1640培养基,在37 ℃、5% CO2培养箱中培养,48 h后消化传代。采用qRT-PCR法检测各细胞中的miR-381,以U6小核RNA作为内参,以2-ΔΔCt表示miR-381相对表达量。
1.3 miR-381表达变化后细胞增殖、迁移、侵袭能力观察
1.3.1 Caki-2细胞分组及miR-381 mimics转染方法 将Caki-2细胞分为miR-381组、NC组、mock组,miR-381组采用LipofectamineTM2000转染miR-381 mimics,mock组转染miR-381 Scramble,NC组不做转染处理。miR-381 mimics上游引物序列为5′-UAUACAAGGGCAAGCUCUCUGU-3′,下游引物序列为5′-AGAGAGCUUGCCCUUGUAUAUU-3′。miR-381 Scramble上游引物序列为5′-UUCUCCGAACGUGUCACGUTT-3′,下游引物序列为5′-ACGUGACACGUUCGGAGAATT-3′。采用qRT-PCR法检测各组细胞中的miR-381,miR-381组、NC组、mock组中miR-381相对表达量分别为8.950±0.720、1.000±0.003、1.090±0.050,miR-381组miR-381相对表达量高于mock组和NC组(P均<0.05)。提示转染成功,可进行下一步实验。
1.3.2 细胞增殖能力检测 采用CCK-8法。将miR-381组、NC组及mock组细胞消化成单细胞悬液后,以2×103个/孔将种植于96孔板上,每孔培养基体积200 μL,分别于培养0、24、48、72、96 h后,每孔加入20 μL的CCK-8溶液,继续培养1 h,在450 nm波长下用酶标仪测定各孔光密度值(OD值),以此表示细胞增殖能力。以时间为横坐标、OD值为纵坐标绘制细胞增殖曲线。
1.3.3 细胞迁移能力检测 采用细胞划痕实验。将miR-381组、NC组、mock组细胞接种于6孔板,培养24 h后用胰蛋白酶消化,待细胞长满培养板后,用200 μL的Tips枪头沿培养板划直线,分别于划痕后即刻和划痕后48 h计算划痕面积和划痕愈合率。划痕愈合率=(划痕后即刻划痕面积-划痕后48 h划痕面积)/划痕后即刻划痕面积×100%。划痕愈合率越高,表示细胞迁移能力越强。实验重复3次,取平均值。
1.3.4 细胞侵袭能力检测 采用Transwell法。取miR-381组、NC组、mock组2×104个细胞,接种于碳酸磷脂表面,于37 ℃下培养24 h,用1%多聚甲醛与膜下面的细胞结合,哈里斯苏木精溶液染色,在高倍镜(200×)下随机取10个视野,计算穿膜细胞数。实验重复3次,取平均值。
1.3.5 各组细胞中ID-1 mRNA及蛋白检测 细胞转染72 h后提取mRNA及蛋白,采用qRT-PCR法检测各组细胞中的ID-1 mRNA。采用Western blotting法检测各组细胞中的ID-1蛋白。将miR-381组、NC组、mock组细胞裂解、变性,每孔30 μg蛋白上样。浓缩胶条件为50 min、80 V,分离胶条件为100 min、100 V,常规转膜,加入ID-1及GAPDH一抗,浓度为1∶200,4 ℃孵育过夜,加入二抗37 ℃孵育4 h,PBST漂洗后ECL液显影。采用Quantity One 1-D软件分析条带灰度值。目的蛋白相对表达量=目的蛋白条带灰度值/GAPDH条带灰度值。实验重复3次,取平均值。
2.1 肾癌细胞中miR-381表达变化 Caki-2、A498、786-O细胞中miR-381相对表达量分别为0.290±0.030、0.370±0.040、0.51±0.043,HK-2细胞中miR-381相对表达量为1.00±0.04。Caki-2、A498、786-O细胞中miR-381相对表达量低于HK-2细胞(P均<0.01)。
2.2 各组Caki-2细胞增殖能力比较 转染72、96 h后miR-381组细胞增殖能力低于NC组、mock组(P均<0.05)。详见表1。
表1 转染后不同时间三组Caki-2细胞OD值比较
2.3 各组Caki-2细胞迁移、侵袭能力比较 miR-381组、mock组、NC组细胞划痕愈合率分别为28.7%±2.6%、59.7%±4.8%、56.4%±4.5%,侵袭细胞数分别为(44.7±3.9)、(235.9±17.9)、(225.7±15.7)个,miR-381组细胞划痕愈合率及侵袭细胞数均少于mock组、NC组(P均<0.01)。详见图1A、图1B。
注:A为细胞划痕实验结果;B为Transwell实验结果。
图1各组细胞迁移、侵袭能力情况
2.4 各组Caki-2细胞中ID-1 mRNA及蛋白表达比较 miR-381组、mock组、NC组细胞中ID-1 mRNA相对表达量分别为0.38±0.04、1.08±0.09、1.0±0.06,ID-1蛋白相对表达量分别为0.45±0.04、1.11± 0.08、1.0±0.09,miR-381组细胞中ID-1 mRNA及蛋白相对表达量均低于mock组、NC组(P均<0.01)。
肾癌是泌尿系统常见的恶性肿瘤之一,发病率占泌尿系统肿瘤的第二位[1]。肾癌目前常用的治疗方法包括手术和放化疗,但疗效不理想,因此,寻找合适的早期生物标志物成为研究重点。研究发现多个miRNA异常表达(如miR-34a,miR-141、miR-142-3p、miR-21、miR-155、miR-210)对肾癌细胞发生发展起重要调控作用[10~12]。
miR-381的编码序列位于14号染色体上,已证实与细胞增殖、分化有关。在脑肿瘤中,miR-381可作为重要的血清诊断标志物及预后标志物。此外,miR-381可以通过抑制C/EBP依赖性的CX43表达而参与乳腺癌的侵袭和转移过程,通过调控p53/PTTG1通路从而促进垂体肿瘤发生,并可通过抑制SOX4促进胃癌细胞的转移[8,12]。陈兵海等[7]报道,在肾细胞癌中miR-381呈显著低表达。本研究选取三个肾细胞癌细胞系,发现相对于人正常肾上皮细胞系HK-2,Caki-2、A498、786-O细胞中miR-381相对表达量降低,与上述研究结果一致。为研究miR-381在肾癌发生发展中的作用,我们上调了Caki-2细胞中miR-381的表达,结果显示转染72、96 h后miR-381组细胞增殖能力低于NC组、mock组,miR-381组细胞划痕愈合率及侵袭细胞数均少于mock组、NC组。这说明miR-381过表达后,Caki-2细胞的增殖、迁移、侵袭能力受到抑制,推测miR-381起到了抑癌基因作用。
研究[13]发现,miR-381可靶向结合ID-1,并确认ID-1为miR-381的靶标分子。ID家族成员的3′非编码区可能存在一个能够与miR-381相结合的区域,提示异常高表达的miR-381可能通过对ID的靶向调控从而参与早期癌变过程。ID-1是螺旋-环-螺旋转录因子家族成员之一,可通过抑制转录因子与DNA的结合,其表达一旦失调,会导致肿瘤的发生[14]。ID-1主要功能是促进细胞增殖,并抑制细胞分化,诱导血管形成,与肿瘤进展及预后相关[15]。目前研究认为,ID-1主要是通过调控细胞周期来影响细胞增殖、分化的。在正常组织中,ID-1蛋白表达水平较低甚至不表达;而在恶性肿瘤中,如前列腺癌、膀胱癌、食道癌等组织中均可检测到ID-1高表达[16~18]。故有学者[18~20]认为ID-1是肿瘤诊断及预后标志物。为探讨miR-381参与肾癌细胞增殖、迁移、侵袭的机制,我们进一步检测了三组细胞中的ID-1 mRNA及蛋白,结果显示,miR-381组细胞中ID-1 mRNA及蛋白相对表达量均低于mock组、NC组,提示miR-381能够通过作用于ID-1来发挥抑癌作用,抑制肾癌细胞的增殖、迁移、侵袭能力。
综上所述,肾癌细胞中miR-381呈低表达;过表达miR-381可降低肾癌细胞的增殖、迁移、侵袭能力,其机制可能与ID-1表达下调有关。miR-381参与了肾癌细胞的增殖调控,可能成为肾癌新的治疗靶点。然而,本研究是在体外细胞系中进行的实验研究,至于在动物实验中结果如何以及miR-381在体内组织中的表达与肿瘤预后的关系,都需要进一步研究。
参考文献:
[1] McCroskey Z, Sim SJ, Selzman AA, et al. Primary collision tumors of the kidney composed of oncocytoma and papillary renal cell carcinoma: A review[J]. Ann Diagn Pathol, 2017,29(25):32-36.
[2] Huang Y, Dai Y, Yang J, et al. Microarray analysis of microRNA expression in renal clear cell carcinoma[J]. Eur J Surg Oncol, 2009,35(10):1119-1123.
[3] Garzon R, Pichiorri F, Palumbo T, et al. MicroRNA gene expression during retinoic acid-induced differentiation of human acute promyelocytic leukemia[J]. Oncogene, 2007,26(28):4148-4152.
[4] Zhou S, Ye W, Ren J, et al. MicroRNA-381 increases radiosensitivity in esophageal squamous cell carcinoma[J]. Am J Cancer Res, 2015,5(1):267-277.
[5] Garzon R, Calin GA, Croce CM. MicroRNAs in cancer[J]. Annu Rev Med, 2009,60(1):167-179.
[6] Bartels CL, Tsongalis GJ. MicroRNAs: novel biomarkers for human cancer[J]. Clin Chem, 2009,55(4):623-631.
[7] 陈兵海,刘斌.miRNA-381抑制肾癌侵袭能力及其分子机制[J].中南大学学报:医学版,2015(10):1053-1059.
[8] Tang H, Liu X, Wang Z, et al. Interaction of hsa-miR-381 and glioma suppressor LRRC4 is involved in glioma growth[J]. Brain Res, 2011,12(9):21-32.
[9] Tian C, Li J, Ren L, et al. MicroRNA-381 serves as a prognostic factor and inhibits migration and invasion in non-small cell lung cancer by targeting LRH-1[J]. Oncol Rep 2017,38(5):3071-3077.
[10] Zang W, Wang Y, Du Y, et al. Differential expression profiling of microRNAs and their potential involvement in esophageal squamous cell carcinoma[J]. Tumor Biol, 2014,35(4):3295-3304.
[11] Dutta KK, Zhong Y, Liu YT, et al. Association of microRNA-34a overexpression with proliferation is cell type-dependent[J]. Cancer Sci, 2007,98(12):1845-1852.
[12] Juan D, Alexe G, Antes T, et al. Identification of a microRNA panel for clear-cell kidney cancer[J]. Urology, 2010,75(4):835-841.
[13] Liang Y, Zhao Q, Fan L, et al. Down-regulation of MicroRNA-381 promotes cell proliferation and invasion in colon cancer through up-regulation of LRH-1[J]. Biomed Pharmacother, 2015,75(1):137-141.
[14] Nemetski SM, Gardner LB. Hypoxic regulation of Id-1 and activation of the unfolded protein response are aberrant in neuroblastoma[J]. J Biol Chem, 2007,282(1):240-248.
[15] Rothschild SI, Tschan MP, Jaggi R, et al. MicroRNA-381 represses ID1 and is deregulated in lung adenocarcinoma[J]. J Thorac Oncol, 2012,7(7):1069-1077.
[16] Zielinski AJ, Fong S, Allison J, et al. The helix-loop-helix Id-1 inhibits PSA expression in prostate cancer cells[J]. Int J Cancer, 2010,126(10):2490-2496.
[17] Dong Z, Liu S, Zhou C, et al. Overexpression of Id-1 is associated with tumor angiogenesis and poor clinical outcome in oral squamous cell carcinoma[J]. Oral Oncol, 2010,46(3):154-157.
[18] Hu H, Wang YL, Wang GW, et al. A novel role of Id-1 in regulation of epithelial-to-mesenchymal transition in bladder cancer[J]. Urol Oncol, 2013,31(7):1242-1253.
[19] Cao Q, Liu F, Ji K, et al. MicroRNA-381 inhibits the metastasis of gastric cancer by targeting TMEM16A expression [J]. J Exp Clin Cancer Res, 2017,36(1):29-33.
[20] Hou C, Meng F, Zhang Z, et al. The Role of MicroRNA-381 in Chondrogenesis and Interleukin-1-beta Induced Chondrocyte Responses [J]. Cell Physiol Biochem, 2015,36(5):1753-1766.