中华鳖冬眠后精子发生及肌酸激酶的表达规律

2018-04-03 07:17胡怡琦楼佳栋潘文洁金歆怡卢建良钱国英王伟
关键词:精子发生精原细胞管腔

胡怡琦,楼佳栋,潘文洁,金歆怡,卢建良,钱国英*,王伟*

(1浙江万里学院生物与环境学院,浙江省重中之重学科实验室,宁波 315100;2浙江理工大学生命科学学院,杭州310018)

中华鳖(Pelodiscus sinensis)是爬行纲、龟鳖目、鳖科、鳖属的代表动物之一,具有季节性生殖周期[1]。中华鳖是具有冬眠习性的爬行动物,精子的发生也具有明显的季节性。研究表明雄性和雌性的生殖周期并不同步,在一年的不同时期分别产生雌雄配子[2]。前期的研究表明雄性精子发生始于4、5月份,在8、9月份时正处于高峰期,直至11月末停止,然后精子一次性释放到附睾中储存起来[3]。但是冬眠期是否就是精子发生的静止期,冬眠期是否存在着精子释放尚不清楚。

肌酸激酶(creatine kinase,CK)是胍基磷酸转移酶家族的一员,在ATP能量快速转移方面发挥着重要的作用[4-7]。CK主要定位于ATP快速再生的细胞中,主要参与离子泵转运、磷酸肌酸穿梭、肌肉收缩、ATP再生、吞噬细胞吞噬、糖酵解调控以及神经递质的释放[8-10]。精子中能量的利用和生成是密切偶联的,CK可催化肌酸(creatine)和腺苷三磷酸(ATP)生成磷酸肌酸(CP)和腺苷二磷酸(ADP)的可逆反应,为细胞提供及时的能量储存,是精子能量合成及运输的关键酶[11]。但是,CK与中华鳖精子发生的关系鲜有报道。研究冬眠前后CK在中华鳖睾丸曲细精管中的表达定位,对于研究中华鳖精子发生的能量供应具有积极的意义。

本研究以9月、12月和来年3月的性成熟中华鳖为研究对象,对曲细精管生精上皮的组织形态学进行分析,探讨精子发生和释放的规律。同时,采用免疫组织化学方法分析CK在冬眠前后的组织表达规律,探讨CK在精子发生中的作用。

材料与方法

1 实验动物处理及样品采集

性成熟雄性中华鳖购自浙江余姚某水产养殖场。分别于当年9月、12月和第二年3月进行取样,每个时间点各取3只。其中12月份和3月份为冬眠期样品,在室外水族箱中完成自然冬眠。中华鳖屠宰后取睾丸组织,切成约5mm见方的小块,在4%多聚甲醛中固定24h后用于组织学分析。

2 石蜡切片制作及HE染色

将固定后的睾丸组织经过梯度乙醇脱水处理,在透明和浸蜡后进行石蜡组织包埋。修块后进行7 μm组织切片(RM 2125,徕卡,德国),并于40°C水浴中进行摊片和展片;随后用APES处理后的载玻片进行捞片,并在烤片机上烘干12h(40°C)。进行常规HE染色(无毒环保苏木素-伊红(H-E)染液D006,南京建成生物,中国),最后用中性树胶封片进行观察。

3 CK的免疫组织化学染色

石蜡切片脱蜡、止水后,经过3% H2O2甲醇-PBS溶液消除内源性过氧化物酶活性,用0.01mol/L枸橼酸缓冲液(pH6.0)进行抗原热修复后用5% BSA进行封闭,随后滴加生物素化山羊抗兔IgG一抗,具体 为 CK-B(ab151579,Abcam,USA,1:200),CK-M(ab151465,Abcam,USA,1:200),CK-S(ab189314,Abcam, USA,1:250)。孵育后进行SABC反应(SA1022,博士德,中国),DAB显色后用显微成像系统进行观察。

结 果

1 冬眠前后精子发生的显微结构特点

通过比较冬眠前后精子发生的情况,我们发现9月份睾丸曲细精管上皮细胞包含大量的初级精母细胞和精子细胞,大量发育中的精子在管腔中呈“穗状”排列(图1A-1C)。12月份睾丸曲细精管中,几乎不见初级精母细胞,但是管腔中还存在大量的精子,以及正在发生变形的精子(图1D)。在3月份的睾丸曲细精管中,管腔中存在少量的精子,几乎不见初级精母细胞和变形中的精子(图1E);但是在曲细精管之间交界的基质处,精原细胞和初级精母细胞数量已开始增多(图1F)。

图1 中华鳖冬眠后的精子发生。A-C,9月份睾丸曲细精管,大量发育中的精子呈“穗状”排列;D,12月份睾丸曲细精管,管腔中存在大量的精子,及正在变形的精子(红色圆圈中标示);E和F,3月份的睾丸曲细精管,管腔中存在少量的精子,图F可见靠近基质部分的精原细胞和初级精母细胞数量开始增多;L,管腔;SC,支持细胞;S,精原细胞;PS,初级精母细胞;SS,次级精母细胞;Sd,精子细胞;Sz,精子;比例尺:A, 75μm; B-F, 25μmFig.1 Spermatogenesis of Pelodiscus sinensis after hibernation. A to C, a large amount of developing sperms were arranged in spike-like pattern in seminiferous tubule of testis collected in September; D, in December samples, there were lots of sperm and some metamorphic sperms (marked by the red circle) in the lumen of seminiferous tubule; E and F, a small number of sperms existed in the lumen of seminiferous tubule collected in next March;F, the number of spermatogonia and primary spermatocytes near stroma began to increase; L, lumen; SC, sertoli cell; S, spermatogonia; PS, primary spermatocytes; SS, secondary spermatocyte; Sd, spermartid; Sz, spermatozoon; scale bar, 75μm in A and 25μm in B to F

2 冬眠前后睾丸中CKs表达特点

免疫组织化学结果显示,CKs在不同月份的睾丸中的表达定位不同。在9月份的睾丸中(图2A-2C),精子发生处于活跃期,CK-S在曲细精管上皮细胞中广泛大量表达,而CK-B只是微量表达;CKM的表达主要在精原细胞和初级精母细胞。在12月份的睾丸中(图2D-2F),精子发生基本处于停滞阶段,CK-B主要在精原细胞内表达;而CK-M的表达主要集中在精原细胞内及胞外,同时在管腔中也有表达;值得注意的是,CK-S的表达虽具有广泛性,但是在充满精子的管腔中表达量很高。在3月的睾丸中(图2G-2I),3种CK亚型的表达方式和12月份相似,但是管腔内的精子数量显著减少。因此,CK亚型在不同月份中也表现出不同的表达方式。CK-B和CK-M在冬眠后主要在精原细胞中表达,而CKM和CK-S在胞外和曲细精管管腔中也大量表达。

图2不同CK亚型在曲细精管中的表达定位分析。A-C,在9月份CK-M和CK-S在曲细精管中广泛大量表达;D-F,在12月份的精母细胞中三种亚型的CK均大量表达,在曲细精管的管腔中可见大量正在变形的精子(红色圆圈内);G-I,3月份的曲细精管上皮细胞,三种CK亚型的表达方式和12月份相似;S,精原细胞;PS,初级精母细胞;SS,次级精母细胞;Sd,精子细胞;Sz,精子);比例尺,25μmFig. 2 Localization and tissue expression analysis of CKs. A to C, in September, CK-M & S were extensively expressed in the seminiferous tubule; D to F, in December, all three CKs were extensively expressed in spermatocyte cells, and many metamorphic sperm cells were observed (marked by the red circle); G to I, in March, the patterns of CKs expression were similar to December; S, spermatogonia; PS, primary spermatocytes; SS, secondary spermatocyte; Sd, spermartid; Sz, spermatozoon; scale bar, 25μm

讨 论

在中华鳖冬眠前的9月份,生精上皮的精子发生非常活跃,曲细精管内可见大量发育中的精子呈“穗状”排列。而到了冬眠期,精子发生趋于静止,不仅“穗状”排列的精子消失,曲细精管内也鲜有精母细胞存在。但是冬眠期的精子发生并不是完全停止的—12月份的曲细精管内含有大量的精子,生精上皮内还存在处于变形阶段的精子;而到了3月份,曲细精管内仅有少量的精子存在,且处于变形阶段的精子几乎看不到。因此,中华鳖冬眠后精子的发生并不是完全停止的。虽然这与Zhang等[12]所描述的不完全一致,但是冬眠期精子的发生还是趋于静止的状态,精母细胞的数量也变得稀少。

关于中华鳖精子释放的方式,通常认为是在冬眠前一次性排放到附睾中。但是,我们观察到从12月份到来年的3月份,不仅仅是发育中的精子数量在减少,曲细精管内游离的精子数量也在减少。如果说精子的释放每年只有一次,那么就不会出现精子数量减少的情况。根据这个现象,我们推测精子的释放方式可能是一年多次的,即使是处于冬眠阶段。

能量代谢关键基因CKs的免疫组化结果显示,CKs在生精上皮中广泛和大量表达,且不同亚型的

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