PTGFR基因在DDH患儿关节囊和圆韧带中的表达变化及其与DDH发病的相关性研究

2017-12-05 05:43赵利华陈梦婕王一臣范玲燕
重庆医学 2017年33期
关键词:韧带软骨髋关节

赵利华,焦 勤,陈梦婕,王一臣,范玲燕,马 峰,应 灏,王 隼

(上海市儿童医院/上海交通大学附属儿童医院骨科 200062)

·论著·

PTGFR基因在DDH患儿关节囊和圆韧带中的表达变化及其与DDH发病的相关性研究

赵利华,焦 勤,陈梦婕,王一臣,范玲燕,马 峰,应 灏,王 隼△

(上海市儿童医院/上海交通大学附属儿童医院骨科 200062)

目的分析前列腺素F2α 受体(PTGFR)基因在发育性髋关节发育不良(DDH)患儿髋关节组织中的表达变化及其与DDH发病的相关性。方法8对年龄相近、性别相同的DDH患儿(DDH组)和对照儿童(对照组)入组进行比较。采用实时定量PCR和蛋白质印迹法(Western blot)检测两组患儿PTGFR mRNA和蛋白表达水平。结果DDH组患儿髋关节关节囊和圆韧带中PTGFR mRNA表达水平较对照组明显降低(t=3.472、2.887,Plt;0.05)。DDH组患儿髋关节关节囊和圆韧带中PTGFR蛋白表达水平较对照组明显降低(t=5.488、3.942,Plt;0.05)。结论PTGFR可能在DDH发病中发挥重要作用,PTGFR可能是DDH的致病基因之一。

关节囊;圆韧带;发育性髋关节发育不良;前列腺素F2α 受体基因

发育性髋关节发育不良(developmental dysplasia of the hip,DDH)是儿童骨科最常见的疾病之一。 在我国DDH发病率达5‰,国外为2‰~50‰,以女性占绝对优势,其发病率在人种间和地区间差异明显,这与遗传因素、环境影响和生活习惯密切相关[1]。DDH是由股骨近端和髋臼及其周围组织发育异常导致,关节囊和韧带松弛是导致髋关节不稳定的主要因素之一[2]。目前,DDH的明确致病基因和发病机制仍不清楚[3-4]。本课题组前期研究结果提示前列腺素F2α受体(prostaglandin F2α receptor,PTGFR)基因的突变与DDH的发病相关,文献亦显示PTGFR基因与骨关节发育相关。为了进一步研究PTGFR与DDH的相关性,本研究应用分子生物学方法比较PTGFR在DDH和非DDH患儿关节囊和圆韧带中转录水平和蛋白水平的表达差异,为进一步从分子水平探索PTGFR在DDH发病中发挥作用的机制奠定基础。

1 资料与方法

1.1一般资料 选取2012年8月至2016年12月入住本院的DDH患儿8例(DDH组),均无家族史,无合并其他畸形,手术复位中采集切除的患髋关节囊和圆韧带。收集与DDH组性别相同年龄相近(lt;6个月)的对照组儿童8例髋关节关节囊和圆韧带(3例来源于髋关节化脓性关节炎,2例来源于股骨头无菌性坏死,1例来源于股骨骨肉瘤手术切除,2例来源于意外死亡后尸检),取材部位及方法同DDH组。DDH组8例,男2例,女6例,年龄2~8岁,平均(3.2±0.8)岁。对照组8例,男3例,女5例,年龄2~7岁,平均(3.5±1.4)岁。两组一般资料比较差异无统计学意义(t=1.036,Pgt;0.05)。在标本离体后迅速剪取全厚层关节囊和中间1/3圆韧带,将标本切成多块直径约为0.5 cm的组织块并装进带有编号的灭菌冻存管,立即放进液氮转移罐,最终于-80 ℃低温冰箱保存备用。以上标本获取均获得参与人或其法定监护人的书面知情同意,收集和使用病患生物样本均通过医院伦理委员会审核。

1.2方法

1.2.1实时定量PCR检测髋关节关节囊及圆韧带中PTGFR mRNA的表达水平 总RNA的分离和提取方法严格按照Trizol试剂盒说明书进行。紫外分光光度计TU-1901进行吸光度A260/280和A260/230比值的测定以确定样品总RNA的纯度和浓度。分别取总RNA各500 ng进行反转录,β-actin作为内参。β-actin上游引物:5′-TGA GAG GGA AAT CGT GCG TGA C-3′,下游引物:5′-GCT CGT TGC CAA TAG TGA TGA CC-3′;PTGFR上游引物:5′-GTT TTC CGT CTG GCA GGT TGT-3′,下游引物:5′-AGA TGA CTT GAG TGG TTG GCT TTT-3′。实时定量PCR反应混合液:2×SYBR Green qPCR Master Mix 10 μL,10 μmol/L的上游引物0.4 μL,10 μmol/L的下游引物0.4 μL,加水至总体积为20 μL。实时定量PCR循环条件:初始阶段95 ℃ 3 min;95 ℃ 7 s(解链),57 ℃ 10 s(退火),72 ℃ 15 s(延伸),共40个循环。完成加样后,把加好样品的96孔板放在ABI7500型荧光定量PCR仪中进行反应。实验重复3次,数据采用2-ΔΔCt法进行分析。

1.2.2蛋白质印迹法(Western blot)检测髋关节关节囊及圆韧带中PTGFR蛋白的表达水平 取两组患儿关节囊和圆韧带组织样本适量,加300 μL含蛋白酶抑制剂的总蛋白抽提试剂后冰上研磨。研磨后冰上放置10 min,4 ℃ 15 300 r/min离心10 min。取上清液(即是总蛋白提取物)放入预冷的1.5 mL离心管。按Bradford蛋白质定量试剂盒操作说明操作,测定样品浓度后行SDS-PAGE电泳,半干法蛋白质转至PVDF膜,按Bio-Rad蛋白转移装置说明组装滤纸凝胶纤维素夹层,300 mA恒流条件下按蛋白大小转膜。膜在5%脱脂奶粉溶液中室温孵1 h以封闭膜上的非特异结合,封闭过的膜加一抗(PTGFR)室温孵育1.5 h,TBST洗脱5 min×3次,HRP标记的荧光二抗(1∶5 000)常温下孵育1 h,TBST洗脱5 min×3次,ECL化学发光显像,Image J软件测定灰度值。 β-actin作为内参照,每个样本重复3次。

2 结 果

2.1髋关节关节囊及圆韧带中PTGFR mRNA的表达水平 DDH组患儿髋关节关节囊、圆韧带中PTGFR mRNA的表达水平较对照组降低,差异有统计学意义(t=3.472、2.887,Plt;0.05)。见图1、表1。

A:髋关节关节囊;B:髋关节圆韧带

图1两组患儿髋关节关节囊和圆韧带中PTGFR mRNA表达水平

2.2髋关节关节囊及圆韧带中PTGFR蛋白的表达水平 DDH组患儿髋关节关节囊、圆韧带中PTGFR蛋白表达水平较对照组降低,差异有统计学意义(t=5.488、3.942,Plt;0.05)。见图2、3,表2。

表1 两组患儿髋关节关节囊和圆韧带中PTGFR mRNA的表达情况

*:Plt;0.05,与对照组相比

1~8:DDH组标本;1′~ 8′:对照组标本

图2两组患儿髋关节关节囊中PTGFR蛋白表达水平

1~8:DDH组标本;1′~ 8′:对照组标本

图3 两组患儿髋关节圆韧带中PTGFR蛋白表达水平表2 两组患儿髋关节关节囊和圆韧带中PTGFR 蛋白表达情况

*:Plt;0.05,与对照组相比

3 讨 论

DDH病因学复杂,越来越多的研究显示环境因素和遗传因素共同参与DDH的发病。环境因素包括羊水过少、臀位、襁褓方法不当等[5]。流行病学研究显示,遗传因素在DDH的发生中发挥重要作用,67.88%的DDH发病与遗传因素有关[6],同卵双生DDH的发病一致率(41.4%)远远高于异卵双生的发病一致率(2.8%)[7]。包括家族聚集性研究、家系的复合分离分析、遗传模式分析和流行病学调查在内的多种研究结果也表明孤立型DDH符合常染色体显性遗传的一些特征,但不表现为简单的孟德尔方式遗传,可能由于其复杂的病因,DDH往往表现为不完全外显性[3-4],这些证据都提示基因的异常在DDH的发病中发挥重要作用。

临床医师常常发现DDH患儿髋关节关节囊和圆韧带存在松弛和薄弱[2,8]。人类出生时髋关节髋臼浅、股骨头表面形成的弧线平滑,出生后髋臼不断加深、股骨头弧度加大,髋关节逐渐稳定,厚而坚韧的髋关节关节囊和圆韧带在该稳定过程发挥重要作用[8]。髋关节的正常生长发育需要髋臼、股骨近端、关节周围韧带、血管、神经及肌肉的协调生长共同完成,该过程由复杂的基因网络调控,同时受环境、生物因素的影响[9]。本课题组前期研究结果提示PTGFR基因的突变与DDH的发病相关。本研究进一步通过实时定量PCR技术和Western blot技术分别从mRNA和蛋白水平检测了PTGFR在DDH患儿髋关节关节囊和圆韧带中的表达,研究结果提示DDH患儿髋关节的关节囊和圆韧带中PTGFR的mRNA和蛋白表达明显低于对照组,进一步提示PTGFR很可能参与DDH的发病。

髋关节属于滑膜关节,它的两个关节面都由关节软骨被覆。软骨内成骨贯穿于正常骨和关节生长、发育及外伤后骨骼修复,软骨内成骨的软骨细胞分化过程受到多种生长因子和信号分子调控,其中一类信号分子即是前列腺素(prostaglandins,PGs),它是一组化学结构相似、具有广泛生物活性的不饱和脂肪酸,体内的PGs水平极微,但活性极强,除PGE2外,PGF2α是关节液的主要PGs,骨关节炎和类风湿性关节炎患者血液和关节液中的PGE2和PGF2α水平均明显增高[10]。PGF2α能刺激鼠软骨细胞株聚糖蛋白合成并促进人关节软骨细胞中二型胶原蛋白mRNA的表达[11-12]。PGF2α通过其受体PTGFR发挥生物学作用,PGF2α与PTGFR结合,活化的PTGFR增加肌醇三磷酸/甘油二酯(IP3/DAG)水平,从而激活蛋白激酶C(PKC),触发Ca2+从细胞内质网释放,从而发挥调控作用[13]。Wang等[14]发现PTGFR mRNA表达于生长版的肥大软骨细胞,这提示PTGFR-PGF2α信号通路可能参与软骨细胞的肥大过程。Kim等[15]发现PTGFR的表达在软骨形成后期明显增高,低表达PTGFR干扰软骨形成而人为的高表达PTGFR能促进软骨形成,该结果提示PTGFR的低表达会抑制软骨的形成,与本研究结果一致,提示PTGFR可能影响髋关节关节囊和圆韧带的发育从而参与DDH的发病。因此,PTGFR极有可能在DDH的发病中发挥重要作用,但是目前为止,尚无文献报道PTGFR与DDH的发病相关,其中的机制需要大量研究进一步证实。

DDH的临床表现、诊断标准和治疗方案均较明确,遗传因素在DDH发病中发挥着重要作用这一观念也被大多数临床工作者和科研工作者所认同,目前发现至少5个基因的突变和DDH的发病相关,但是,这些基因在DDH发病中发挥作用的分子机制均不明确,DDH的发病机制更不清楚。本研究结果提示PTGFR参与DDH的发病,但是其分子机制还需要大量细胞学和动物学研究不断探索和研究。

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ExpressionchangeofPTGFRgeneinarticularcapsuleandligamentumteresinDDHanditscorrelationwithpathogenesisofDDH*

ZhaoLihua,JiaoQing,ChenMengjie,WangYichen,FanLingyan,MaFeng,YingHao,WangSun△

(DepartmentofOrthopedics,ShanghaiMunicipalChildren′sHospital/AffiliatedChildren′sHospital,ShanghaiJiaotongUniversity,Shanghai200062,China)

ObjectiveTo analyze the expression change of PTGFR gene in hip joint tissues of development dysplasia of the hip (DDH) and its correlation with DDH pathogenesis.MethodsEight age-and gender-matched children with DDH (DDH group) and control children (control group) were enrolled for conducting the compaison.The real-time quantitative PCR method and Western-blot method were adopted to detect the PTGFR mRNA and protein expression levels.ResultsPTGFR mRNA expression level in the hip articular capsule and ligamentum teres of the DDH group were significantly decreased compared with those of the control group (t=3.472,2.887,Plt;0.05,).The PTGFR protein expression level in the hip articular capsule and ligamentum teres of the DDH group were significantly decreased compared with those of the control group(t=5.488,3.942,Plt;0.05).ConclusionPTGFR could play an important role in DDH pathogenesis and may be one of DDH pathogenic genes.

joint capsule;round ligament;developmental dysplasia of the hip;prostaglandin F2α receptor gene

10.3969/j.issn.1671-8348.2017.33.002

国家自然科学基金项目(81401763);上海卫生计生委科研项目(20144Y0176);上海市科学技术委员会科研项目(12DZ2295006);上海交通大学医学院“985”计划基金(YBKL2013008)。

赵利华(1982-),主治医师,博士,主要从事先天性/发育性骨关节疾病发病机制研究。△

,E-mail:Wangs@shchildren.com.cn。

R684.2

A

1671-8348(2017)33-4613-03

2017-05-24

2017-07-16)

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