韩 瑞 仇福成 李培培 王文婷 顾 平
(河北医科大学第一医院神经内科,河北 石家庄 051000)
血管性痴呆模型小鼠海马神经元的电生理改变
韩 瑞 仇福成 李培培1王文婷 顾 平
(河北医科大学第一医院神经内科,河北 石家庄 051000)
目的观察血管性痴呆(VD)发病过程中神经元的电生理改变。方法应用被动逃避反应实验、神经元硫堇染色技术、膜片钳操作技术,对实验动物的认知功能及动物海马CA1区神经元结构和密度进行评价,进而观察神经元的兴奋性。结果与假手术组小鼠相比,模型组小鼠被动逃避反应实验成绩明显下降,海马CA1区神经元密度未见明显改变,而海马神经元的兴奋性出现了显著降低。结论神经元电兴奋性的降低可能是导致VD的主要机制之一。
血管性痴呆;被动逃避反应实验;动作电位
血管性痴呆(VD)是因脑组织血液循环障碍所致的一种获得性、进行性认知功能障碍综合征〔1〕。神经元的信息传递是编码为动作电位的形式进行的,如果神经元受到损伤,动作电位的形成变慢,信息的加工过程出现异常,进而影响神经元的功能〔2〕。海马是学习记忆的关键中枢,也是缺血后最易受损的脑区之一〔3,4〕。本实验观察VD小鼠海马神经元的电生理改变。
1.1动物模型和分组 将40只9月龄雄性C57小鼠随机分为:①假手术组:只暴露双侧颈总动脉,不阻断血流。②模型组:分别暴露双侧颈总动脉,反复夹闭双侧颈总动脉3次,每次夹闭20 min,每次间隔10 min。
1.2避暗箱实验 术后第22天,开始对所有动物进行避暗箱测试,采用被电次数和避暗潜伏期作为学习记忆的检测指标。实验的第1天进行适应性训练:暗箱不通电,将小鼠以背向暗箱的方向放入透明箱中,令其可自由进出暗箱,适应5 min,记录小鼠第1次进入暗箱的时间为潜伏期。实验的第2天进行认知训练:暗箱通电,将小鼠以背向暗箱的方向放入透明箱中,训练5 min,记录小鼠进入暗箱被电次数。实验第3天进行记忆检测:暗箱通电,将小鼠以背向暗箱的方向放入透明箱中,记录小鼠第1次进入暗箱的时间即避暗潜伏期,如果在5 min内小鼠不进入暗箱,则避暗潜伏期记为300 s。
1.3脑组织病理学评价 动物在行为学测定结束后,断头取脑,冠状切取视交叉后1~4 mm脑组织,4%多聚甲醛固定,石蜡包埋,常规脑组织切片(5 μm),硫堇染色观察海马组织学改变。高倍镜下计数海马CA1区每1 mm区段内细胞膜完整、胞核饱满、核仁清晰的锥体细胞数目,每张切片海马各计数3个区段取平均数为神经元密度(ND)。
1.4电流钳记录 动物在行为学测定结束后,将小鼠冰上快速断头取脑(1 min左右),冠状切去部分额部、枕部,枕部切面用瞬间黏合剂粘固到振动切片机的平台上。浸入冰水汇合氧饱和的人工脑脊液,在冠状平面上切取5~6片皮层脑组织(300 μm厚度)。置于95%O2+5%CO2饱和的人工脑脊液孵育槽中,室温下(21℃~26℃)孵育1 h备用。数据由MultiClamp 700B放大器采集,应用全细胞电流钳记录模式,观察了海马CA1区神经元动作电位的频率。
1.5统计学方法 应用SPSS13.0软件进行t检验。
2.1避暗箱实验结果 与假手术组〔(22.9±0.3)s〕比较,在被动逃避反应实验第1天训练阶段的潜伏期在模型组无明显变化〔(24.1±13.8)s,P>0.05〕。在避暗箱实验第2天学习阶段,被电次数在模型组较假手术组显著增多〔(2.7±1.2) vs (1.8±0.8)s,P<0.05〕。在实验第3天,与假手术组小鼠相比,被动逃避潜伏期在模型组显著缩短〔(174.2±105.3)vs (251.4±84.4)s,P<0.05〕。
2.2小鼠海马CA1区病理学结果 假手术组和模型组小鼠海马CA1区锥体细胞3~5层,排列整齐致密,细胞形态完整,胞核饱满,核仁清晰,均无明显细胞缺失,见图1。与假手术组(257.7±15.3)相比,模型组小鼠海马CA1区ND有降低趋势,但结果无统计学差异(252.2±13.0,P>0.05)。
图1 两组海马CA1区病理学结果(HE,×400)
2.3神经元兴奋性变化 与假手术组(23.3±3.3)相比,模型组小鼠海马CA1区的神经元动作电位产生个数(18.3±4.3)显著减少(P<0.05),见图2。
图2 两组海马CA1区神经元动作电位示意图
本文VD动物模型未观察到神经元结构明显损伤,与国内其他的VD模型中所描述的不同〔5〕。文献报道神经元兴奋性的降低可以引起认知功能损伤〔6〕,本研究中也印证了这一电生理现象在VD中的作用。文献报道改善神经元兴奋性可以提高个体的认知功能〔7,8〕,这就为临床治疗VD提供了新的思路,开发、寻找可以提高神经元兴奋性的药物或物理治疗方法,提高神经元的兴奋性;并以此为靶点为寻找改善VD认知功能障碍的方法提供理论支持。调节神经元兴奋性的离子通道主要有钾离子通道,L型钙离子通道〔8,9〕,具体是何种离子通道特性的改变引起的神经元兴奋性变化,针对这些神经元兴奋性变化的离子通道机制还需要进一步研究。
1Roh JH,Lee JH.Recent updates on subcortical ischemic vascular dementia〔J〕.J Stroke,2014;16:18-26.
2Randall AD,Booth C,Brown JT.Age-related changes to Na+channel gating contribute to modified intrinsic neuronal excitability〔J〕.Neurobiol Aging,2012;33:2715-20.
3Lee CH,Yoo KY,Choi JH,etal.Neuronal damage is much delayed and microgliosis is more severe in the aged hippocampus induced by transient cerebral ischemia compared to the adult hippocampus〔J〕.J Neurol Sci,2010;294:1-6.
4Fjell AM,McEvoy L,Holland D,etal.What is normal in normal aging? Effects of aging,amyloid and Alzheimer′s disease on the cerebral cortex and the hippocampus〔J〕.Prog Neurobiol,2014;117C:20-40.
5Choi DH,Lee KH,Kim JH,etal.NADPH oxidase 1,a novel molecular source of ROS in hippocampal neuronal death in vascular dementia〔J〕.Antioxid Redox Signal,2013;21(4):533-50.
6McKay BM,Matthews EA,Oliveira FA,etal.Intrinsic neuronal excitability is reversibly altered by a single experience in fear conditioning〔J〕.J Neurophysiol,2009;102(5):2763-70.
7Xiao Z,Cilz NI,Kurada L,etal.Activation of neurotensin receptor 1 facilitates neuronal excitability and spatial learning and memory in the entorhinal cortex:beneficial actions in an Alzheimer′s disease model〔J〕.J Neuroscience,2014;34(20):7027-42.
8Rose GM,Ong VS,Woodruff-Pak DS.Efficacy of MEM 1003,a novel calcium channel blocker,in delay and trace eyeblink conditioning in older rabbits〔J〕.Neurobiol Aging,2007;28(5):766-73.
9Thibault O,Landfield PW.Increase in single L-type calcium channels in hippocampal neurons during aging〔J〕.Science,1996;272(5264):1017-20.
〔2016-04-17修回〕
(编辑 苑云杰/曹梦园)
顾 平(1970-),女,博士,主任医师,博士生导师,主要从事老年神经系统退行性疾病研究。
韩 瑞(1977-),女,主治医师,主要从事老年变性疾病研究。
R741.044
A
1005-9202(2017)17-4211-02;doi:10.3969/j.issn.1005-9202.2017.17.019
1 河北省古城县医院内科