一株烟碱降解菌的筛选鉴定与降解特性研究

2017-09-08 09:43阮爱东
环境科技 2017年3期
关键词:烟碱氮源菌液

方 超, 阮爱东

(1.河海大学水文水资源学院, 江苏 南京 210098;2.水文水资源与水利工程科学国家重点实验室, 江苏 南京 210098)

0 引言

烟碱作为烟草中重要的生物碱,俗称尼古丁,是衡量烟叶品质和工业可用性的关键指标[1],也是烟草工业废水和烟草废弃物的主要有害成分。烟碱具有毒性,低浓度使人兴奋,高剂量摄入可造成生物体迅速死亡[2]。目前我国部分烟区所产烟叶,尤其是上部烟叶烟碱含量偏高[3]。正常情况下烟碱质量分数烤烟应低于3%,白肋烟应为2%~4%,而我国烤烟烟碱质量分数平均为3%~4%,白肋烟达6%[4]。如何降低烟叶中的烟碱含量到可用范围内,提高烟叶品质和工业可用性,是卷烟行业亟待解决的热点课题。

我国是世界上最大的烟草生产国,每年约有近25%的烟叶、烟末等下脚料被废弃[5],每千克这些废弃物中含有约2 000 mg的烟碱[6]。如果对这些高毒性废弃物不给予合适地处理,它们会逐渐通过 “土壤-水-人体”或“土壤-植物-人体”等途径,改变土壤结构[7],污染地下水,间接被人体吸收,严重威胁人群健康和生态安全[8]。

微生物降解环境污染物具有高效经济,不易造成二次污染的优点[9]。许多研究表明烟碱可被少数微生物利用并降解[10-12]。早在1947年ENDERS等[13]就发现酵母对烟碱存在降解作用,但不能完全降解烟碱。袁勇军等[14]从福建三明地区的土壤中筛选到一株中间苍白杆菌,对质量浓度0.5 g/L的烟碱,36 h内降解率为97.65%。李晓华等[15]从湖北省襄阳烟草种植地也分离到一株中间苍白杆菌,烟碱质量浓度为1 g/L时,降解率达88.33%,烟碱质量浓度为3 g/L时,菌株生长受到抑制。这些降解菌多数适应烟碱的起始浓度比较低,降解条件不够宽泛,实际应用中,烟碱耐受性强、降解效率高的菌株仍十分匮乏。

以烟碱为唯一碳氮源,分离得到一株烟碱降解菌,完成种属鉴定和降解性能研究,并对各种培养条件下,菌株代谢烟碱的能力进行了检测分析。旨在丰富烟碱降解的工程菌资源,为微生物在烟草工业和环境治理的应用建立基础。

1 材料与方法

1.1 材料

土壤样品采自合肥卷烟厂堆积烟草废弃物超50 a的土壤。L-nicotine(纯度大于99%)购于德国默克化工技术有限公司。其它化学试剂均为分析纯或色谱纯。

培养基情况。①富集培养基成分:K2HPO40.2g/L,KH2PO40.8 g/L,MgSO40.2 g/L,CaSO40.1 g/L,NaMoO40.003 3 g/L,FeSO4·7H2O 0.005 g/L,C6H12O61 g/L,烟碱0.5 g/L,pH值=7.0;②无机盐选择培养基(ISM)组成成分:K2HPO40.2g/L,KH2PO40.8g/L,MgSO40.2 g/L,CaSO40.1g/L,NaMoO40.0033g/L,FeSO4·7H2O 0.005g/L,烟碱(根据实验需要添加),pH值=7.0。固体培养时在ISM中加入1.5%~2.0%琼脂。所有培养基在121℃下高压蒸汽灭菌25 min。烟碱经0.22 μm滤膜过滤后加入。

1.2 烟碱降解菌的筛选

在100 mL富集培养基中加入2 g样品土壤,30℃,150 r/min下富集7 d。取培养液至新鲜的ISM(烟碱质量浓度1 g/L),相同条件培养7 d,重复3次。取培养液稀释涂布在ISM琼脂培养基上,30℃培养48 h挑取单菌落,划线在新鲜的ISM琼脂培养基上,直至获得纯化的菌。

1.3 菌种鉴定

1.3.1 形态结构观察及生理生化实验

参照文献[16]《常见细菌系统鉴定手册》进行。

1.3.2 16S rDNA序列测定及系统发育分析

细菌总DNA用DNA抽提试剂盒提取。使用细菌通用引物(上海生工公司合成)进行PCR反应[17]。正向引物:5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′和反向引物:5′-AAGGAGGTGATCCAGCCGCA-3′。 PCR产物的纯化和测序由上海生工公司完成。测序结果利用Blast在GenBank数据库中进行相似性比较和鉴定,并用软件MEGA 5.05构建系统发育树。

1.4 培养条件对菌株生长和降解能力的影响

温度的影响:将 100 μL 菌液(OD600nm为 0.481)接种到100 mL烟碱质量浓度1.5 g/L的ISM中,150 r/min、不同温度(25,30,35,40 ℃)下培养。

初始pH值的影响:将100 μL菌液 (OD600nm为0.504)接种到100 mL烟碱质量浓度1.5 g/L的ISM中,150 r/min、最适温度、不同 pH 值(5.0,6.0,6.5,7.0,7.5,8.0,9.0)下培养。

初始烟碱浓度的影响:将100 μL菌液(OD600nm为 0.468)接种到 100 mL不同烟碱质量浓度(1,2,3,4,5,6,7,8 g/L)的 ISM 中,150 r/min、最适温度和 pH值下培养。

接种量的影响: 分别将 100,300,900 μL 菌液(OD600nm为0.487)接种到100 mL烟碱质量浓度1 g/L的ISM中,150 r/min、最适温度和pH值下培养。

外加碳源和氮源的影响:将100 μL菌液(OD600nm为0.533)接种到100 mL含不同碳源(葡萄糖质量浓度1 g/L,乙醇质量浓度1 g/L,乙酸钠质量浓度1 g/L)和含不同氮源(硫酸铵0.002mol/L,硝酸钾0.004mol/L,亚硝酸钠0.004 mol/L),及不外加碳氮源的ISM(烟碱质量浓度2 g/L)中,150 r/min、最适温度和pH值下培养24 h。

以上实验组均设3个平行。定时检测菌株生长和烟碱降解情况。

1.5 静息细胞对烟碱的降解

取对数生长期菌液,离心(相对离心力12 000×9.8 m/s2,离心时间 10 min,温度 4 °C)后用 50 mL 磷酸缓冲液(pH值=7.0)清洗3次,重悬浮于等体积的上述缓冲液,最终OD600nm为0.976。加入质量浓度4 g/L的烟碱,150r/min、最适温度和pH值下培养,定时检测烟碱的降解。

1.6 分析方法

烟碱的测定:培养物离心(相对离心力12 000×9.8 m/s2,离心时间 10 min,温度 4 °C)取上清,用高效液相色谱(HPLC,Agilent 1260 Infinity)检测烟碱浓度。 色谱条件:Ultimate XB-C18(4.6×250mm),流动相为甲醇:0.1%三乙胺(40:60,v/v),流速 1 mL/min,柱温 35 °C,检测波长 254 nm,进样量 5 μL。

生物量的测定:培养物离心(相对离心力12 000×9.8m/s2,离心时间 10 min,温度 4°C)得菌体,用 50mL磷酸缓冲液(pH值=7.0)清洗3次,重悬浮于等体积的上述缓冲液。用紫外分光光度计测定600 nm处的OD值。

2 结果与讨论

2.1 菌株的筛选和鉴定

分离的菌株编号为pRF-1,能以烟碱为唯一碳源、氮源和能源生长。在ISM琼脂培养基上菌落呈钮扣状,淡黄色,不透明,表面粗糙,中央隆起,边缘扁平。生理生化鉴定结果见表1。菌株pRF-1好氧,革兰氏阴性,氧化酶、接触酶反应阳性,M.R.,V-P反应阴性,氧化葡萄糖产酸不产气,能还原硝酸盐为亚硝酸盐。与恶臭假单胞菌较接近,初步鉴定为假单胞菌属(Pseudomonassp.)[16]。

表1 菌株pRF-1的生理生化特征

图1 系统发育树

菌株pRF-1的16S rDNA序列在GenBank中登录号为KU363014。利用Blast进行序列同源性分析,结果表明菌株pRF-1与Pseudomonas plecoglossicida的多个菌株同源性均在99%以上,确定菌株pRF-1为假单胞菌属(Pseudomonassp.)。该菌株的系统发育树见图1。

2.2 菌株pRF-1的烟碱降解特性

2.2.1 培养温度对菌株pRF-1生长和降解特性的影响

用烟碱残余浓度和OD600nm值表示烟碱降解和菌株pRF-1生长情况。

在初始pH值为7.0,烟碱质量浓度为1.5 g/L的条件下,菌株pRF-1摇床培养30 h后,在温度为30℃时,生长量最高,能完全降解加入的烟碱,温度对菌株生长和烟碱降解的影响见图2。当温度超过35℃,菌株生长迟缓,烟碱降解率快速下降。大部分假单胞菌属微生物最适生长温度在30℃左右[18],温度过高,一方面菌株难以生长,一方面酶活性受到抑制,都会制约烟碱的降解。

图2 温度对菌株生长和烟碱降解的影响

2.2.2 初始pH对菌株pRF-1生长和降解特性的影响

初始pH值对菌株生长和烟碱降解的影响见图3。

图3 初始pH值对菌株生长和烟碱降解的影响

在培养温度为30℃,烟碱质量浓度为1.5 g/L的条件下,初始pH值为6.5~7.5时,菌株pRF-1经30 h摇床培养,均能完全降解加入的烟碱,当初始pH值为7.0,菌株生长最好。初始pH值小于5.0或大于9.0时,菌株生长明显受到抑制,烟碱几乎不降解。与已报道的Pseudomonassp.HF-1[19]和Pseudomonas stutzeriZCJ[20]相比,菌株pRF-1适应初始pH的能力更强,单位时间代谢烟碱的效率更高。

2.2.3 初始烟碱浓度对菌株pRF-1生长和降解特性的影响

在pH值为7.0,培养温度为30℃条件下,当初始烟碱质量浓度为1~4 g/L,菌株pRF-1在48 h内能完全降解烟碱(见图4)。

图4 初始烟碱浓度对菌株生长和烟碱降解的影响

由图4(a)可以看出,质量浓度为5 g/L时,烟碱降解率达96%。随初始烟碱质量浓度增加,降解率逐渐降低,但高达8 g/L时,降解率仍有50.72%。说明菌株pRF-1的烟碱耐受力非常高。以前报道的烟碱降解菌在低浓度烟碱环境中降解效果较好,但耐受的烟碱质量浓度有限,大多数在6 g/L以内,如Pseudomonassp.HF-1[19],Pseudomonas stutzeriZCJ[20]和Pseudomonas putidaS16[21]的烟碱耐受质量浓度分别为2,4.5和6 g/L。本研究筛选的假单胞菌pRF-1在接种量仅为100 μL条件下,48 h内对质量浓度为8 g/L烟碱的降解率为50.72%,有望应用于高浓度烟碱环境,去除烟碱污染。

由图4(b)可以看出,烟碱降解和菌株生长均有一段迟缓期,并随初始烟碱浓度的提高,迟缓期逐渐延长,这一现象也见于其他烟碱降解菌的报道[19-22]。说明高浓度烟碱对菌株生长存在一定的抑制作用。初始烟碱质量浓度为4 g/L,菌株生长量最高。

值得关注的是,当烟碱降解完全后,菌株仍保持较长时间的快速生长,推测菌株pRF-1可以利用烟碱的降解产物。

2.2.4 接种量对烟碱降解的影响

图5 接种量对烟碱降解的影响

图6 外加碳源和氮源对烟碱降解的影响

接种量越大,菌株降解烟碱的速率越快(见图5)。接种量为 900 μL,相比 100 μL,烟碱降解的迟缓期有所缩短。

2.2.5 外加碳源和氮源对烟碱降解的影响

外加碳源和氮源对烟碱降解的影响见图6。

由图6可以看出,葡萄糖和乙酸钠对菌株pRF-1降解烟碱有促进作用,乙醇、硫酸铵和亚硝酸钠对菌株pRF-1降解烟碱有抑制作用,而硝酸钾则无影响。

2.3 静息细胞的烟碱降解性能

静息细胞条件下,菌株停止生长,依靠积累的酶来催化降解烟碱。静息细胞对烟碱的降解能力见图7。在含烟碱的磷酸缓冲液中,菌株pRF-1的静息细胞在22 h内完全降解质量浓度为4 g/L烟碱,最大降解效率为每小时降解247 mg的烟碱,说明静息细胞内存在高效的烟碱降解酶。在醇化烟叶或处理烟草废弃物时,可以直接通过喷洒事先培养好的菌液,催化降解烟碱,缩短处理时间。

图7 静息细胞对烟碱的降解能力

3 结论

(1)从堆积烟草废弃物的土壤中筛选得到一株能以烟碱为唯一碳源、氮源和能源生长的菌株,经形态学、生理生化特征和16S rDNA序列同源性分析,初步鉴定为假单胞菌属(Pseudomonassp.),命名为pRF-1。

(2)菌株pRF-1生长和降解烟碱的最适条件均为:温度30℃,初始pH值为7.0,此条件下,48 h内菌株对质量浓度为5 g/L的烟碱的降解效率达96%。菌株pRF-1耐受极高的烟碱浓度,烟碱质量浓度达8 g/L,48 h降解率仍有50.72%。

(3)可通过增大接种量或适当外加葡萄糖和乙酸钠促进菌株pRF-1对烟碱的降解效果。

(4)菌株pRF-1的静息细胞中存在高效的烟碱降解酶,在22 h内完全降解质量浓度为4 g/L的烟碱,说明菌株pRF-1可应用于烟叶醇化和烟草废弃物处理。

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