廖 倩,于春水,汪瀚文
皮肤是人体内最大的器官,总重量大约占个体体重的16%,也是抵御外界不良因素侵扰的第一道防线。Kabashima-Kubo等[1]的研究表明,皮肤屏障不仅阻止了病原体的入侵,而且对角质层、角质形成细胞结构组成及免疫细胞抗原的介导进行了整合。皮肤屏障在防御外界有害因素损伤及维持内环境稳态中起重要作用,包括物理屏障、色素屏障、神经屏障和免疫屏障等。其中90%的皮肤屏障功能依靠角质层形成,角质层屏障的主要成分是角质层及其角质包膜(砖泥)和细胞间的脂质双分子层(灰泥)。“砖墙-灰泥模型”(brick and mortar)是现在公认的表皮角质层屏障结构模型,同时覆盖在这层模型之外还有一层水脂膜(hydro-lipid fi lm),与砖墙结构共同构成了皮肤的物理性屏障。Addor[2]研究认为角质层具有活跃的新陈代谢和自我调节能力,对激发炎症反应中的角质形成细胞、血管生成、纤维素增生起到调节的作用,调节作用的大小主要取决于刺激的强度。
角质层具有独特的多层结构,是由角质形成细胞通过核分裂、分化、退化直至消失,经由基底层、棘细胞层、颗粒细胞层、透明层(仅见于掌跖等表皮较厚部位),最后形成无生命的角质形成细胞。角质形成细胞呈叠瓦状垂直分布,有效阻止细胞外基质过度伸展,减少了皮肤水分的丢失。细胞外Ca2+的浓度有利于角质形成细胞的分化和增殖,且兜甲蛋白(loricrin,LOR)、内披蛋白(involucrin,IVL)、丝聚合酶原(pro fi laggrin,pFLG)的表达与胞外Ca2+浓度也密切相关[3]。
角蛋白是表皮的主要结构蛋白,也是角质形成细胞的标志成分。角蛋白不同阶段的表达代表了表皮细胞分化的不同阶段,表达随表皮向终末分化的过程而改变。表皮基底层是未分化的细胞,具有分裂增殖能力,表达特异性角蛋白5/14(即K5 /K14),而当细胞上升至棘细胞层即可发现特异性分化蛋白K1 /K10 的表达。Roth等[4]在研究中发现,通过调节小鼠皮肤K1与K10的缺失,从而增加角化包膜(corni fi ed envelope,CE)的易脆性而影响皮肤屏障功能。在表皮层缺乏K1与缺乏K10的小鼠组别中,缺乏K1的组别中出现了小鼠围产儿死亡;即使小鼠的皮肤屏障是完整的,但缺乏K1的小鼠会出现经表皮水分丢失(trans epidermal water loss,TEWL)上升,提示皮肤屏障功能受损。Choate等[5]研究在K1中确认了一新的基因突变,和先天性网状鱼鳞病样红皮病(congenital reticular ichthyosiform erythroderma,CRIE,也称ichthyosis with confetti,IWC)导致的K10突变类似,K1的突变导致丝聚体碳末端的框移突变,该多肽链30位点氨基酸残基取代了碳末端22位点的氨基酸;突变的K1导致了细胞质中丝状体网坍塌并错置于胞核中。与K10突变导致CRIE一样,K1突变的逆转需要通过有丝分裂重组。由于此突变逆转(回复突变)未见于其他致病性角蛋白变异,作者的研究结果表明K1和K10丝状体碳末端框移突变在CRIE回复性突变嵌合体中高频出现。
CE也称交叉连接膜、边缘带以及周边带,它的形成标志着角质形成细胞分化的终末产物——角质形成细胞的产生,是表皮作为一种防御屏障的基础。CE主要由丝聚合蛋白( fi laggrin,FLG)、IVL、LOR等构成,这些蛋白广泛交叉连接,并受到角质形成细胞转谷氨酰胺酶(transglutaminase keratinocyte,TGK/TG1)的调节。CE相关蛋白的形成与角质形成细胞的增生和分化密切相关,只有当前者的正常基因编码表达和后者之间达到精准平衡,表皮才能正常形成并角质化[3]。2012年Yoneda等[6]发现丝聚合酶原氮端结构域(pro fi laggrin N-terminal domain,PND)的表达与角质形成细胞的终末分化密切相关;在活的有机体内PND和LOR与K10相互作用,这些作用可能与CE和皮肤屏障的形成有关。
转谷氨酰胺酶(transglutaminase,TG)目前在人类中发现的有8种类型,是一组Ca2+结合及Ca2+依赖性酶。其中TG1(或者角质形成细胞TG,TGK)、TG2(或者组织TG,TGC)、TG3(或者表皮TG,TGE)、TG5(或者TGX)存在于表皮及其附属器及鳞状复层上皮组织。TGK在正常表皮中仅分布于棘细胞层的中上部直至角质层的起始, 在FLG 的参与下催化角质套膜蛋白如IVL、包绕角蛋白纤维束, 组成表皮特异的角质层屏障结构。Liu等[7]发现,2,3,7,8-四氯二苯并二恶英(2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin,TCDD)可以通过上调TGK而刺激表皮的分化。
FLG又称为微丝凝聚蛋白,主要存在于表皮颗粒层和透明层,由表皮颗粒层的透明角质颗粒中无活性的pFLG经一些特异性磷酸酶和蛋白酶催化转化而来。它可以和角蛋白中间丝蛋白互相作用,聚集成角蛋白纤维束,从而形成最外层角质形成细胞的扁平支架结构。到目前为止,亚洲和欧洲已发现大约40个FLG 突变位点,且它具有明显的地域性和种群性。Gutowska-Owsiak等[8]认为,白细胞介素(IL)-17A下调了FLG的表达和细胞黏附相关的基因。Batista等[9]研究发现在成人特应性皮炎(atopic dermatitis,AD)中,不仅观察到FLG和紧密连接蛋白1(claudin,CLD)的表达下降,而且发现FLG的表达和疾病的严重程度呈负相关。Kabashima-Kubo等[1]发现,在AD患者中,高浓度的IgE组比低浓度组更易引起FLG的突变;由于FLG的减少或缺失引起的皮肤屏障功能障碍,可能会导致经皮肤引起的过敏反应增加。Thomsen等[10]在异卵双生双胞胎中发现,携带FLG突变基因胎儿比不携带此等位基因胎儿更易患AD。根据基于亚洲人群(包括韩国人、日本人、中国人、新加坡华人)的FLG基因突变谱回顾分析发现:诸如p.R501*、c.3321delA、 p.S1515*、p.S3296*和 p.K4022*FLG等突变普遍均能在至少2个上述人群中发现,而FLG基因无义突变罕见于上述各人群[11]。
IVL主要表达于棘细胞层上部与颗粒层,是角质形成细胞分化的标志性蛋白,位于CE的外层,与含有-OH的神经酰胺共价结合,由此将脂质基质和角化细胞连接起来而发挥作用。Theerawatanasirikul等[12]发现了在犬类皮肤中依赖于互补DNA(complementary deoxyribonucleic acid,cDNA)序列来衡量表达产物的4种特定基因引物,即IVL、FLG、K10、K5,这一系列引物的探索,有利于更深层次分子研究犬类皮肤疾病的mRNA和蛋白的定量测定,并且此研究是关于正常犬类皮肤CE基因表达和免疫组化相关性的首篇报道[3]。
Moravcová等[13]发现,在中波紫外线(ultraviolet radiation b,UVB)照射的角质形成细胞中,会引起K1和K10表达增加及IVL减少。Gnanaraj等[14]发现在银屑病中,丙硫氧嘧啶(propylthiouracil,PTU)不仅可以通过调节使过度表达的IVL下降,还可以调节过早成熟的IVL。在银屑病患者的角质形成细胞中,IVL是上升的;而无论是银屑病患者或正常角质形成细胞中,IL-13、IL-17A、内皮素-1、肿瘤坏死因子-α、干扰素-γ均能升高IVL水平[15]。IVL表达异常与对称性肢端角化病(symmetrical acrokeratoderma,SAK)、板层状鱼鳞病(lamellar ichthyosis)等有关。
LOR主要表达于颗粒层与角质层,是最终分化的CE的主要构成成分,大约占其蛋白量的80%。Ishitsuka等[16]研究发现,后期角化包膜蛋白1(late corni fi ed envelope 1 protein)可以通过用免疫电子显微镜来定位敲除LOR的细胞包膜,而被当作互补成分,同时也发现后期角化包膜基因1可以使皮肤中敲除LOR小鼠的核因子NF-E2相关因子2(nuclear factor erythroid 2 related factor 2,Nrf2)转录水平上升。在AD患者中可能由于病变程度与选取皮损部位的不同,关于IVL和LOR的表达研究结论也并不相同[17]。 2012年Kawachi等[18]发现通过蛋白免疫印迹(Western blotting)分析得出与未分化的角质形成细胞相比,转录因子GATA-3(GA-TA-binging protein-3)在分化的角质细胞中含量更高;共转染实验发现GATA-3和基因c-fos与 sp1通过互助的方式正性调节角质形成细胞分化中LOR的基因转录。有研究发现LOR的异常表达在口腔黏膜下纤维化颊黏膜(oral submucous fi brosis,OSF)发生发展和癌变过程中可能发挥了重要作用[19]。LOR基因突变所致的皮肤病有火棉胶婴儿、进行性对称性红斑角化症(symmetrical progressive erythrokeratoderma,PSEK)及变异性残毁性掌跖角化症(Vohwinkel syndrome,VS)等;LOR表达异常的皮肤病有AD、银屑病等。
本文主要对皮肤屏障的分化蛋白做一综述,随着对各种分化蛋白研究的进一步了解,能对皮肤屏障有更深入认识。
【参 考 文 献】
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