错配修复基因与胃癌相关性的研究进展

2017-01-10 08:08李昕雨屈怡帆
中华老年多器官疾病杂志 2017年1期
关键词:微卫星碱基核苷酸

李昕雨,李 娟,屈怡帆,白 莉

(解放军总医院肿瘤内科,北京 100853)

肿瘤的发生过程复杂,涉及多方面因素。目前已明确的机制包括原癌基因的激活、抑癌基因的失活和凋亡基因的异常活化。在肿瘤的形成过程中,DNA错配修复(mismatch repair,MMR)基因起一定作用。近年来,在某些散发性肿瘤中均发现了MMR系统功能的缺陷,如胃癌、子宫内膜癌和胰腺癌等[1]。

1 MMR系统和微卫星

1.1 MMR基因的组成

MMR系统由一系列能够特异性识别并修复DNA碱基错配的蛋白组成[2],用于维持遗传物质保持其原有的完整性及稳定性,确保DNA复制的忠实性。在目前已发现的人类MMR系统中,所发现的蛋白至少有7种,分别为h-MLH1、h-MLH3、h-MSH2、h-MSH3、h-MSH6、h-PMS1和h-PMS2。这些蛋白相互之间形成异源二聚体,用于识别DNA复制过程中碱基的不匹配以及小核苷酸的插入或删除(1~4碱基配对)[3]。DNA的MMR功能丧失不仅可以发生在基因组水平,也可以发生在细胞水平[4]。

MMR系统最早发现于原核生物中。酵母MMR系统中有5种mutS 同源蛋白(MSH1、MSH2、MSH3、MSH4和MSH5)和3种mutL同源蛋白(PMS1、MLH1和MLH2)。其中,MSH1主要参与线粒体对应的MMR过程;MSH2属于核MMR基因;MSH3主要确保简单重复序列能够较好地维持其本身的稳定性;MSH4与MSH5同源,参与减数分裂的重组,但其与MMR过程无关。

1.2 MMR基因的功能

MMR基因通过编码MMR蛋白之间相互形成的复合物参与MMR过程。MMR过程主要包括 3个步骤,即错配位点的定位、识别和蛋白的聚集修复,其可能的机制为MSH2与MSH6形成MutSα,识别单独的碱基错配/插入缺失环。MSH2与MSH3形成异源二聚体MutSβ,识别2~8个碱基的插入缺失环。MutSα或MutSβ均具有内在的ATP酶活性,两者在MMR的起始过程中起到关键作用,同时也与识别错配碱基相关[5]。就插入缺失环整个过程来讲,MutLα与MutSα先形成一种复合物,复合物再与ExoI进行协同作用,完成错配部位的有效定位。在完成定位以后,就需要借助于增殖细胞的核抗原来完成后续的修复启动。具体的过程是,同MMR所涉及到的酶进行有效结合,使存在错配碱基的这条DNA链能够被切除掉,之后将会得到正确DNA链,也就达到了修复的目的。其中,hMLH1和hMSH2是MMR系统中最重要的两个组分。正常情况下它们在胞浆内合成,被转运到细胞核后才参与完成MMR反应。其中之一异常则可使MMR系统的功能受损甚至丧失,从而阻断复合物形成,导致相关的其他蛋白丢失,而MMR家族中其他基因的异常则仅会导致编码蛋白的丢失[6]。

由于MMR基因的高保守性,一旦出现了MMR基因缺失,基因组的稳定性就会降低,导致突变率升高。由于MMR基因缺陷增高细胞突变频率,突变表型形成加剧了基因突变累积,进一步导致肿瘤的发生。

目前研究表明,单一MMR基因的缺陷不足以引起肿瘤发生。MMR基因缺陷引起肿瘤发生的原因有4个方面[7-9]:(1)癌/抑癌基因出现更高的突变频率;(2)人体内部分功能基因遗传存在很大程度的不稳定;(3)可能会产生烷化剂等对细胞造成较大损害的物质,进而导致肿瘤的发生[10];(4)诱导损伤细胞凋亡功能的缺陷。

1.3 微卫星

微卫星(microsatellite)属于DNA重复序列,主要由2~6个核苷酸重复单位构成,约占人类总基因的10%[11]。目前认为,微卫星的遗传稳定性较高。当某个MMR基因出现缺陷时,DNA复制过程出现的错误不能被及时矫正,导致微卫星移码突变(插入/删除),基因片段的数量产生变化,从而产生微卫星不稳定(microsatellite instability,MSI)[8,12,13]。

美国国立癌症研究院的检测标准包含了5个微卫星位点,其中有2个单核苷酸重复序列,即BAT-25和26;还包含了3个二核苷酸重复序列,分别是D-17S25015、D2S123和D5S346。由于MSI的发生频率不同,可将其分为3种类型,即高度MSI(high microsatellite instability,MSI-H)、低度MSI(low microsatellite insability,MSI-L)以及微卫星稳定(microsatellite stability,MSS)。在以上5个位点中,有≥2个出现MSI现象称为MSI-H,仅1个产生MSI则称为MSI-L,若没有MSI现象产生称为MSS[14]。Nagasaka等[15]针对MSI给出了一个比较新的定义,首先需要保证≥1个单核苷酸重复序列不稳定,其次是需要保证在上述5个微卫星位点之中出现1个不稳定,这样才能够被判定为MSI,用以降低2个二核苷酸重复序列不稳定产生的假阳性率。

1.4 检测方法

1.4.1 免疫组织化学 免疫组织化学(immunohistochemistry,IHC)法是常用的检测MMR蛋白方法。MMR基因表达特定的MMR蛋白,应用此方法检测MMR蛋白,可以反映MMR基因的功能情况。IHC的优势在于简单、实用,且花费少[16]。

1.4.2 聚合酶链式反应 聚合酶链式反应(polymerase chain reaction,PCR)通过对上述提到的5个位点,即BAT-25、BAT-26、D-17S25015、D2S123和D5S346PCR进行检测,对PCR产物行6%聚丙烯酰胺凝胶电泳以检测MSI状态[17]。PCR技术能够检测出被IHC忽略的MMR基因缺失(MMR-deficient,dMMR),被认为是dMMR筛查的标准方法。

1.4.3 基因检测 对外周血进行基因测序。因价格昂贵,目前不作为常用的检测方法。

前两种检测方法的一致性近90%,如联合使用,敏感性更高[18]。

2 MMR基因与胃癌

MMR基因已成为预测结肠癌预后的标志物。2016年美国国家综合癌症网(National Comprehensive Cancer Network,NCCN)指南提出,Ⅱ期结肠癌术后患者应检测MMR基因,dMMR患者无需进行辅助化疗,MMR基因完整(MMR-proficient,pMMR)患者才应考虑行术后辅助化疗。MMR基因在癌症家族中的作用已经成为研究热点。

近年来,国内外对MSI与胃癌的研究结果显示[19],MSI-H胃癌患者具有明显特征。Jahng等[20]对219例胃癌患者的分析结果表明,与MSS和MSI-L患者相比,MSI-H患者病灶发生于胃窦部者更多(P<0.001),表现为肠型者更多(P<0.05),且伴明显淋巴细胞浸润者更多(P<0.001)。Oki等[21]对240例胃癌患者的研究结果表明,MSI-H患者的肿瘤大多位于胃窦部,淋巴结转移更常见。An等[22]对1990例胃癌患者的研究结果表明,MSI-H者老年女性居多,病灶位于胃窦部者居多,组织学分型为肠型者居多。上述结果表明,MSI胃癌大多数为肠型,位于远端胃,多发生于老年女性。

一些研究表明MSI-H患者预后相对较好,但由于MSI-L和MSS患者对氟尿嘧啶类药物相对敏感,也有研究得出相反的结果[18]。Fang等[23]对214例接受胃癌根治性手术患者进行分析后总结,与 MSI-L和MSS患者相比,MSI-H患者具有更高的 5年总生存率(P=0.030)。An等[22]观察了进行R0手术切除胃癌的1990例患者,认为MSS、MSI-L与MSI-H患者之间的总生存期差异无统计学意义。胃癌患者MSI的发生率为15%~30%。伴MSI胃癌患者多发生遗传性疾病,如林奇综合征,但大多数为散发,只有小部分患者(约10%)有家族史。

目前,以抗程序性死亡受体-1(programmed cell death-1,PD-1)/PD-1-配体1(PD-1-ligand 1,PD-L1)为代表的新型癌症免疫疗法取得的成功已经有目共睹。已有研究证明,与无MMR缺陷或MSS肿瘤患者相比较,伴有MMR缺陷或MSI的肿瘤患者对PD-1抑制剂的反应性更好,派姆单抗(pembrolizumab)在MSI肿瘤患者中的反应率、无进展生存期以及总生存期具有明显优势[8]。与其他免疫治疗方法不同,抗PD-1/PD-L1可以针对肿瘤诱导的免疫缺陷以及正在进行的肿瘤免疫过程使得肿瘤特异性免疫过程激活[24]。如果存在MSI,肿瘤细胞的突变则较多,患者对免疫治疗则更敏感。

3 小 结

MMR基因对胃癌的诊断、治疗及预后有重要提示作用。目前胃癌的治疗策略及MMR系统在胃癌中的作用尚不十分明确。越来越多证据表明dMMR与pMMR胃癌的预后和化疗敏感性不尽相同。因此,MMR基因可否成为筛查胃癌高危人群的常规检测需要更大规模的临床试验验证。

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