潘苟生,郑仁朝,郑裕国
(浙江工业大学生物工程研究所,浙江杭州310014)
L-2-氨基丁酸生物合成研究进展
潘苟生,郑仁朝,郑裕国
(浙江工业大学生物工程研究所,浙江杭州310014)
生物法因为具有立体选择性高、环境污染少、反应条件温和等特点,已成为合成L-2-氨基丁酸的重要方法。对近年来生物法(包括发酵法、氨基酰化酶法、氨基酸氧化酶法、酰胺酶法、腈水解酶法、转氨酶法和氨基酸脱氢酶法)合成L-2-氨基丁酸的路线和研究进展进行了综述,分析上述工艺中存在的问题并提出建议和对策,为实现L-2-氨基丁酸工业化生产和降低生产成本提供参考。
左乙拉西坦;L-2-氨基丁酸;微生物发酵;生物催化
L-2-氨基丁酸是一种非天然手性氨基酸,具有抑制人体神经信息传递、加强葡萄糖磷酸酯酶的活性和促进脑细胞代谢的作用。如图1所示:L-2-氨基丁酸及其衍生物(S)-2-氨基丁酰胺、(S)-2-氨基丁醇是多个手性药物(如抑菌抗结核药乙胺丁醇盐酸盐[1-2]、新型抗癫痫药物左乙拉西坦和布瓦西坦等)的关键中间体[3],在制药工业中应用广泛。随着左乙拉西坦等药物专利到期,市场普及程度提高,对其关键中间体L-2-氨基丁酸的需求量大幅增加。因此寻找一条生产效率高、环境污染少的L-2-氨基丁酸合成工艺已成为研究重点。目前,L-2-氨基丁酸的合成方法包括化学法和生物法。化学法包括以L-蛋氨酸为原料在脱硫剂Raney Ni作用下脱去甲硫基生成L-2-氨基丁酸的路线[4]和运用手性拆分试剂D-酒石酸等与外消旋2-氨基丁酸形成非对应异构体进行拆分得到L-2-氨基丁酸的路线[5],但是化学法合成L-2-氨基丁酸反应条件苛刻、易生成副产物,同时大量使用有机溶剂易造成环境污染。生物法合成L-2-氨基丁酸具有立体选择性高、反应条件温和、环境污染少等特点,具有广阔的工业化开发前景。
L-2-氨基丁酸的生物合成方法包括发酵法、氨基酰化酶法、氨基酸氧化酶法、酰胺酶法、腈水解酶法、转氨酶法和氨基酸脱氢酶法等。发酵法操作简单,但是发酵过程会产生与目标产物L-2-氨基丁酸结构类似的副产物丙氨酸等,后续产物分离提取较困难。酶法工艺具有催化效率高、副产物少等特点,主要包括动力学拆分、动态动力学拆分和不对称合成三种。相比于动力学拆分,其他两种方法理论转化可达100%。但是酶法工艺多面临着辅酶循环再生效率和酶稳定性低、工程放大难等问题。
1.1发酵法
大部分天然氨基酸都可以通过微生物发酵生产得到[6],如L-谷氨酸、L-赖氨酸、L-苏氨酸等年产量超过200多万吨[7],但是微生物发酵法生产非天然氨基酸却相对复杂。Liao等[8-9]以30 g/L葡萄糖为底物,以高产L-苏氨酸的重组大肠杆菌Escherichia coli ATCC98082发酵生产L-2-氨基丁酸,产物浓度达到5.5 g/L。其合成途径如图2所示:大肠杆菌以葡萄糖为原料,首先合成L-苏氨酸,L-苏氨酸在异源表达的苏氨酸脱氨酶(脱水酶)和经过分子改造的谷氨酸脱氢酶(GDH)双酶催化下,合成L-2-氨基丁酸。
1.2氨基酰化酶法
该法以外消旋N-乙酰-DL-2-氨基丁酸为底物,使用氨基酰化酶拆分制备L-2-氨基丁酸。例如焦庆才、奚强等用乙酸酐乙酰化DL-2-氨基丁酸,得到N-乙酰-DL-2-氨基丁酸,再用L-氨基酰化酶拆分得到L-2-氨基丁酸;剩余的N-乙酰-D-2-氨基丁酸经消旋化后,再次用于酶拆分,最终得到光学纯L-2-氨基丁酸,收率71.8%,反应过程如图3所示[10-11]。
1.3氨基酸氧化酶法
徐红梅等[12]以外消旋DL-2-氨基丁酸为底物,利用固定化D-氨基酸氧化酶选择性氧化D-2-氨基丁酸,e.e.值达到99.5%。为了进一步提高产物收率,向体系中添加Pd-C/HCOONH4等化学还原剂能够将氧化脱氨过程中形成的过渡态α-亚氨基酸原位转化为DL-2-氨基丁酸,在D-氨基酸氧化酶的作用下进一步拆分,收率可达到85%,反应过程如图4所示。
1.4酰胺酶法
Yasukawa等[13]利用来源于Brevundimonas diminuta TPU 5720的酰胺酶催化(S)-2-氨基丁酰胺水解生成L-2-氨基丁酸。反应如图5所示:2-氨基丁腈首先经腈水合酶水合生成外消旋2-氨基丁酰胺,L-酰胺酶催化(S)-2-氨基丁酰胺水解生成L-2-氨基丁酸;剩余的(R)-2-氨基丁酰胺在外消旋酶的作用下再次形成外消旋体,进一步拆分后得到光学纯L-2-氨基丁酸,e.e.值大于99%。
1.5腈水解酶法
周海岩等[14]利用产腈水解酶的重组大肠杆菌立体选择性水解外消旋2-氨基丁腈合成L-2-氨基丁酸(图6)。在60mmol/L底物浓度下,产物质量浓度达到5.43 g/L,e.e.值大于99%。
1.6转氨酶法
以2-酮丁酸为底物通过转氨酶法合成L-2-氨基丁酸是目前报道较多的方法,由于2-酮丁酸价格较高,因此多以L-苏氨酸为出发底物,通过转氨酶与苏氨酸脱氨酶(也称苏氨酸脱水酶)耦联合成L-2-氨基丁酸。
Fotheringham等[15-16]在大肠杆菌中分别表达来源于大肠杆菌的苏氨酸脱氨酶、酪氨酸转氨酶和来源于枯草芽孢杆菌的乙酰乳酸合成酶。以苏氨酸为底物,天冬氨酸为氨基供体,建立了三酶不对称催化合成L-2-氨基丁酸的方法(图7)。L-苏氨酸首先在苏氨酸脱氨酶的作用下生成2-酮丁酸,2-酮丁酸在酪氨酸转氨酶的作用下,以L-天冬氨酸为氨基供体,生成产物L-2-氨基丁酸和副产物草酰乙酸。草酰乙酸自发脱羧生成丙酮酸,后者在乙酰乳酸合成酶的作用下生成乙酰乳酸,乙酰乳酸进一步自发脱羧生成3-羟基-2-丁酮,从而促使反应朝着产物生成方向进行。但该法L-2-氨基丁酸最大得率为54%,因为反应中生成的丙酮酸也可以作为氨基受体,导致副产物丙氨酸的形成。由于丙氨酸与产物L-2-氨基丁酸性质相似,增加了后续产物分离的难度。2001年,Ager等[17]在此基础上研究了提高L-2-氨基丁酸产物得率和产物分离纯化的方法。在底物浓度为500 mmol/L时,转化率达到58.3%,纯度大于92%。为了进一步消除副产物丙氨酸,Zhu等[18]在三酶催化基础上,在反应体系中耦联丙氨酸消旋酶和D-氨基酸氧化酶,反应结束后,分离纯化产物,最终L-2-氨基丁酸的纯度大于99%。
Shin等[19]克隆表达来自Vibrio fluvialis JS17 的ω-转氨酶,以50mmol/L 2-酮丁酸和70mmol/ L苯甲胺为底物,采用两相反应体系不对称合成L-2-氨基丁酸,反应5 h,转化率达到96%,e.e.值大于99%,但反应中有机溶剂的存在会影响酶的稳定性。2012年Malik等[20]以外消旋苯乙胺为氨基供体,以L-苏氨酸为底物,在ω-转氨酶和苏氨酸脱氨酶的作用下,同时拆分苯乙胺生成手性胺和不对称合成L-2-氨基丁酸,2.5 h转化率达到94%,e.e.值大于99%。2013年Park等[21]以异丙胺为氨基供体,L-苏氨酸为底物(100 mmol/L),在来源于Ochrobactrum anthropic的ω-转氨酶和苏氨酸脱氨酶催化下,反应1 h,转化率达到99%,e.e.值大于99.9%。异丙胺是一种廉价的氨基供体,且转氨反应后形成的产物丙酮易挥发,促使反应朝着L-2-氨基丁酸合成方向进行,这种方法具有工业化潜力。
1.7氨基酸脱氢酶法
该法以2-酮丁酸为底物,在亮氨酸脱氢酶或缬氨酸脱氢酶的作用下不对称合成L-2-氨基丁酸。氨基酸脱氢酶以NADH为辅酶,所以在催化体系中需要耦合辅酶再生体系。该反应中的2-酮丁酸价格昂贵,一般也可以通过苏氨酸脱氨酶催化L-苏氨酸脱氨获得,苏氨酸脱氨酶、亮氨酸脱氢酶和甲酸脱氢酶三酶催化合成L-2-氨基丁酸的途径如图8所示[22-25]。1997年Galkin等[26]利用来源于Thermoactinomyces intermedius的耐热的亮氨酸脱氢酶催化2-酮丁酸合成L-2-氨基丁酸,得率为88%,e.e.值大于99%,产物质量浓度达到36 g/L。2014年Tao等[27]利用来自Bacillus cereus的高比酶活亮氨酸脱氢酶,通过优化三酶催化条件,在30 L反应体系中底物浓度达到1 mol/L,产物得率97.3%,e.e.值大于99%。脱氢酶法具有较好的工业化开发前景,其瓶颈在于如何实现辅酶的高效再生,降低生产成本。
生物法合成L-2-氨基丁酸具有反应条件温和、过程高效和立体选择性严格等优势,工业化应用前景广阔;发酵法体系复杂、分离纯化难度大;而酶催化工艺又面临酶活力低、稳定性差、重复使用率不高等问题。因此,后续L-2-氨基丁酸生物合成工艺开发应主要集中在以下两个方面:一方面要筛选改造获得高稳定性高催化活力的转氨酶、氨基酸脱氢酶等;另一方面优化催化工艺,如通过使用固定化酶增加反应批次,同时利于产物的分离纯化。
[1]白国义,陈立功,邢鹏,等.乙胺丁醇的合成[J].精细化工,2004,21(12):943-945.
[2]NUGENTW A,FEASTER JE.Practical synthesis ofmethyl Z-2-(N-acetylamino)but-2-enoate.An intermediate to D-and L-2-aminobutyric acid[J].Synthetic communications,1998,28 (9):1617-1623.
[3]SASA M.A new frontier in epilepsy:novel antiepileptogenic drugs[J].Journal of pharmacological sciences,2006,100(5):487-494.
[4]郭勇,王力.一种新的制备单一构型的2-氨基丁酸或其衍生物的方法:CN1510025[P].2004-07-07.
[5]韩冰,徐良,熊林,等.一种不对称转换法制备L-2-氨基丁酸的方法:CN102060721A[P].2011-05-18.
[6]IKEDA M.Microbial production of L-amino acids[M].Berlin Heidelberg:Springer,2003.
[7]LEUCHTENBERGER W,HUTHMACHER K,DRAUZ K. Biotechnological production of amino acids and derivatives:current status and prospects[J].Applied microbiology and biotechnology,2005,69(1):1-8.
[8]LIAO JC,ZHANG K,CHO KM.Compositions and methods for the production of L-homoalanine:WO2011106696A2[P].2011-09-01.
[9]ZHANG K,LIH,CHO K M,et al.Expanding metabolism for total biosynthesis of the nonnatural amino acid L-homoalanine [J].Proceedings of the national academy of sciences,2010,107 (14):6234-6239.
[10]焦庆才,刘均忠,陈争依,等.L-2-氨基丁酸酶法转化制备方法:CN101538596A[P].2009-09-23.
[11]奚强,丁友友,林丫丫,等.2-氨基丁酸的酶拆分[J].武汉工程大学学报,2009,31(3):26-29.
[12]徐红梅,夏仕文,何从林.固定化D-氨基酸氧化酶催化DL-氨基酸去消旋化制备非天然L-氨基酸[J].分子催化,2012,26(2):192-196.
[13]YASUKAWA K,HASEMI R,ASANO Y.Dynamic kinetic resolution of alpha-aminonitriles to form chiral alpha-amino acids[J].Advanced synthesis and catalysis,2011,353(13):2328-2332.
[14]周海岩,张旺,徐建妙,等.点饱和突变提高腈水解酶不对称合成L-2-氨基丁酸的酶活[J].工业微生物,2015,45(6):1-8.
[15]FOTHERINGHAM IG,GRINTER N,PANTALEONE D P,et al.Engineering of a novel biochemical pathway for the biosynthesis of L-2-aminobutyric acid in Escherichia coli K12 [J].Bioorganic and medicinal chemistry,1999,7(10):2209-2213.
[16]FOTHERINGHAM IG.Transaminase biotransformation process:US6197558B1[P].2001-03-06.
[17]AGER D J,LIT,PANTALEONED P,etal.Novel biosynthetic routes to non-proteinogenic amino acids as chiral pharmaceutical intermediates[J].Journal ofmolecular catalysis B:Enzymatic,2001,11(4/6):199-205.
[18]ZHU Li,TAO Rongsheng,WANG Yi,et al.Removal of L-alanine from the production of L-2-aminobutyric acid by introduction of alanine racemase and D-amino acid oxidase[J]. Applied microbiology and biotechnology,2011,90(3):903-910.
[19]SHIN J S,KIM B G.Transaminase-catalyzed asymmetric synthesis of L-2-aminobutyric acid from achiral reactants[J]. Biotechnology letters,2009,31(10):1595-1599.
[20]MALIK M S,PARK E S,SHIN JS.ω-Transaminase-catalyzed kinetic resolution of chiral amines using L-threonine as an amino acceptor precursor[J].Green chemistry,2012,14(8):2137-2140.
[21]PARK E S,DONG G Y,SHIN JS.ω-Transaminase-catalyzed asymmetric synthesis of unnatural amino acids using isopropylamine as an amino donor[J].Organic and biomolecular chemistry,2013,11(40):6929-6933.
[22]祝俊,苏金环,曾聪明,等.一种酶法制备L-2-氨基丁酸的方法:CN101818178A[P].2010-09-01.
[23]杨晟,范文超,陶荣胜,等.一种L-2-氨基丁酸的生产方法:CN102212567A[P].2011-10-12.
[24]李斌,王海艳,鞠鑫.一种L-2-氨基丁酸的生物制备方法:CN102605041A[P].2012-07-25.
[25]苏金环,郭皓,曾聪明,等.生物催化一锅法制备2-氨基丁酸[J].精细化工,2012,29(9):921-924.
[26]GALKIN A,KULAKOVA L,YOSHIMURA T,et al.Synthesis of optically active amino acids from alpha-keto acids with Escherichia coli cells expressing heterologous genes[J]. Applied and environmentalmicrobiology,1997,63(12):4651-4656.
[27]TAO Rongsheng,JIANG Yu,ZHU Fuyun,et al.A one-pot system for production of L-2-aminobutyric acid from L-threonine by L-threonine deaminase and a NADH regeneration system based on L-leucine dehydrogenase and formate dehydrogenase[J].Biotechnology letters,2014,36(4):835-841.
(责任编辑:朱小惠)
Advance in the biosynthesis of L-2-am inobutyrate
PAN Gousheng,ZHENG Renchao,ZHENG Yuguo
(Institute of Bioengineering,Zhejiang University of Technology,Hangzhou 310014,China)
Biosynthesis provides an eco-friendly approach for L-2-aminobutyrate due to its high stereoselectivity and mild condition.This review summarized the biosynthetic method of L-2-aminobutyrate such as microbial fermentation,biotransformations with aminoacylase,amino acid oxidase,amidase,nitrilase,transaminase and amino acid dehydrogenase.The advances and the limitations of thesemethodswere assayed.In order to reduce cost of industrial production of L-2-aminobutyrate,suggestions and countermeasureswere also put forward for the existing problems. Keywords:levetiracetam;L-2-aminobutyrate;microbial fermentation;biocatalysis
TQ463
A
1674-2214(2016)03-0182-06
2016-04-05
潘苟生(1991—),男,江西新余人,硕士,研究方向为生物催化,E-mail:pangoushengzjut@163.com.通信作者:郑裕国教授,E-mail:zhengyg@zjut.edu.cn.