阿魏酸对ob/ob小鼠脂肪沉积及腹脂脂肪酸组成的影响

潘奕鸥　王薇薇　李爱科　张卫卫　韩四海　刘建学,3*

(1.河南科技大学食品与生物工程学院，洛阳471023；2.国家粮食局科学研究院，北京100037；3.河南省食品原料工程技术研究中心，洛阳471023)



阿魏酸对ob/ob小鼠脂肪沉积及腹脂脂肪酸组成的影响

潘奕鸥1,2,3王薇薇2李爱科2张卫卫1韩四海1刘建学1,3*

(1.河南科技大学食品与生物工程学院，洛阳471023；2.国家粮食局科学研究院，北京100037；3.河南省食品原料工程技术研究中心，洛阳471023)

摘要：本试验旨在研究阿魏酸对ob/ob小鼠脂肪沉积和腹脂脂肪酸组成的影响。选取5周龄的雄性ob/ob小鼠30只，随机分为3组(n=10)，分别饲喂在基础饲粮中添加0(对照组)、0.25%和0.50%阿魏酸的试验饲粮，试验期9周。结果表明：与对照组相比，饲粮中添加0.25%和0.50%的阿魏酸显著降低了ob/ob小鼠的总增重、腹脂率(P<0.05)，显著降低了血清甘油三酯及肝脏甘油三酯和总胆固醇水平(P<0.05)，减少了肝脏脂滴积累，显著降低了腹脂中棕榈油酸和油酸的含量(P<0.05)，显著降低了腹脂中棕榈油酸/棕榈酸和油酸/硬脂酸(P<0.05)。由此得出，阿魏酸可以抑制ob/ob小鼠的脂肪沉积，改善其腹脂脂肪酸组成，减重降脂效果明显。

关键词：阿魏酸；ob/ob小鼠；肥胖；脂肪沉积；脂肪酸组成

阿魏酸(ferulic acid,FA)化学名4-羟基-3-甲氧基-2-丙烯酸，是一种酚类化合物，普遍存在于中药、粮食、蔬菜、水果中[1-2]，其在谷物麸皮中含量较高[3]，在全麦粉中的含量为1.252 g/kg，在玉米面中的含量更高达2.317 g/kg[4]。多酚类物质如苹果多酚、茶多酚和葡萄籽多酚一般具有强抗氧化性，对高血脂、糖尿病等有一定的调节作用[5-7]。FA也有极强的抗氧化性[8]，并对Ⅱ型糖尿病、高血压和心脑血管疾病等有一定的治疗效果[9-12]。肥胖病主要表现在机体脂肪的过量积累，并且是Ⅱ型糖尿病、心脑血管疾病等的主要诱发因素之一[13]。多酚类物质及其衍生物，如富含FA的咖啡多酚、酒花多酚、没食子酸、没食子儿茶素和没食子酸酯均具有抑制脂肪积累的效果[14-17]。Son等[18]研究发现，在饲粮中添加FA或FA酯化物质谷维素可以显著抑制高脂饮食诱导的肥胖小鼠的体重增加，使总增重分别降低了47.50%和26.67%；Senaphan等[19]研究认为，大鼠每天口服30或60 mg/kg BW的FA可以改善高脂高碳水化合物诱导的代谢综合征，降低大鼠血清中甘油三酯(triglyceride,TG)和总胆固醇(total cholesterol,TC)的水平，并降低代谢综合征大鼠的体重。但是这些报道并未以脂肪变化为研究重点，只对体重、血脂水平等进行了检测分析，而FA对肥胖机体脂肪沉积和脂肪代谢等方面的影响尚未见系统报道。ob/ob小鼠是瘦素基因缺陷型小鼠，在青年时期即会严重超重，并形成肥胖病相关的体脂紊乱，如高血脂、肝脏脂质沉积等[20]。本试验以雄性ob/ob小鼠为研究对象，研究饲粮中添加不同量的FA(0.25%或0.50%)对ob/ob小鼠脂肪沉积和腹脂中脂肪酸组成的影响，旨在为进一步探明FA对预防和治疗肥胖病的功效提供科学依据。

1材料与方法

1.1材料与仪器

FA标准品：粉末状，纯度≥99%，购于上海晶纯生化科技股份有限公司。

TG和TC检测试剂盒购于南京建成生物工程研究所，脂肪酸标准品购于北京普析科技有限公司，其他常规试剂均为分析纯。

主要试验仪器如下：SynergyTMHT酶标仪(Biotek公司，美国)；海尔立式超低温保存箱(青岛海尔特种电器有限公司)；Centrifuge-5810R型高速冷冻离心机(Eppendorf公司，德国)；罗氏生化分析仪(Roche公司，瑞士)；7890A气相色谱附氢火焰检测器(FID)，色谱柱为DB-23(Agilent公司，美国)；KD-BMⅢ生物组织包埋机、KD-3368AM切片机、KEDEE生物组织染色机(金华市科迪仪器设备有限公司)等。

1.2动物饲养管理

30只5周龄、体重相近的雄性ob/ob小鼠，购于北京华阜康生物科技股份有限公司，为无特定病原体级(specified pathogen free,SPF)。ob/ob小鼠基础饲粮由南通特洛菲饲料科技有限公司提供，依照AIN-93M标准饲料配方设计，其组成及营养水平见表1。ob/ob小鼠饲养在SPF实验动物房(国家粮食局科学研究院，北京)的独立送风笼具(individual ventilated cage,IVC)中。饲养室保持温度(23±2) ℃，相对湿度50%，12 h/12 h光照日夜循环。配对饲喂，充足饮水，预饲1周。

1.3试验方法

1.3.1试验设计

将30只ob/ob小鼠随机分成3组，每组10个重复，每个重复1只，分笼饲养。对照组(CON组)、低剂量FA添加组(L-FA组)和高剂量FA添加组(H-FA组)ob/ob小鼠分别饲喂在基础饲粮中添加0、0.25%和0.50% FA的试验饲粮。每周测定各组ob/ob小鼠体重、周采食量，称重前禁食12 h，试验期为9周。

1.3.2样品采集

采样前禁食12 h，称量ob/ob小鼠终体重。摘除小鼠眼球采集血样，分离血清，冻存于-80 ℃待测。采集血样后，ob/ob小鼠断颈处死，解剖分离肝脏和腹部白色脂肪组织(white adipose tissue,WAT)，称重后计算肝脏指数和腹脂率。取同一部位的肝组织，存于10%甲醛固定液中。剩余肝组织与WAT一并冻存于-80 ℃待测。

肝脏指数(%)=(肝脏重/体重)×100； 腹脂率(%)=(腹部WAT重/体重)×100。

表1　基础饲粮组成及营养水平(风干基础)Table 1　Composition and nutrient levels of the basal diet (air-dry basis)

矿物质与维生素预混料为每千克饲粮提供The mineral and vitamin premix provided the following per kg of the diet：Ca 5 000 mg，P 3 000 mg，K 3 600 mg，Na 1 033 mg，Mg 511 mg，Fe 45 mg，Zn 35 mg，Mn 10 mg，Cu 6 mg，I 0.2 mg，Cr 1 mg，S 300 mg，Cl 1 613 mg，VA 4 000 IU，VD 1 000 IU，VE 75 IU，VK 0.000 86 g，VB15 mg，VB26 mg，VB330 mg，VB515 mg，VB66 mg，胆碱 choline 1 000 mg，叶酸 folic acid 2 mg，生物素 biotin 0.2 mg，VB120.025 mg。

1.3.3血脂水平检测

用生化分析仪检测血清中TG、TC、高密度脂蛋白胆固醇(high density lipoprotein cholesterol,HDL-C)和低密度脂蛋白胆固醇(low density lipoprotein cholesterol,LDL-C)的水平。

1.3.4肝脂水平检测

肝脏匀浆依照南京建成生物工程研究所提供的方法制备，按照检测试剂盒说明书采用酶联免疫吸附法检测肝脏中TG和TC水平。

1.3.5肝脏病理学分析

取固定24 h后的肝组织，包埋处理后，切片(厚度为5 μm)，经苏木精-伊红(hematoxylin-eosin staining,HE)染色后在光学显微镜下以10×25倍视野观察肝组织中脂滴大小和密度变化。

1.3.6腹脂脂肪酸组成检测

按照GB/T 9695.7—2008操作，得到小鼠脂肪组织中的油脂，并按照GB/T 17367—2008的方法，用三氟化硼法对其脂肪酸进行甲酯化，利用气相色谱法(GB/T 17377—2008)分析其脂肪酸组成，主要包括棕榈酸(palmitic acid,C16∶0)、棕榈油酸(palmitoleic acid,C16∶1)、硬脂酸(stearic acid,C18∶0)和油酸(oleic acid,C18∶1)的含量(质量百分数)，并计算C16∶1/C16∶0和C18∶1/C18∶0。

1.4数据统计分析

试验数据用平均值±标准差表示，采用SAS 9.0统计软件中的ANOVA过程进行单因素方差分析，P<0.05为差异显著。

2结果

2.1FA对ob/ob小鼠体重、总增重和总采食量的影响

由图1可知，饲养期初始，各组ob/ob小鼠体重均呈稳定增长趋势，与CON组ob/ob小鼠相比，前4周L-FA组和H-FA组ob/ob小鼠的体重没有显著差异(P>0.05)。第5～6周，L-FA组和H-FA组ob/ob小鼠体重增长趋于平缓。第7周开始至饲养期结束，L-FA组与H-FA组ob/ob小鼠体重均显著低于CON组(P<0.05)。

同一时间点，数据点无字母或有相同字母标注表示差异不显著(P>0.05)，有不同小写字母标注表示差异显著(P<0.05)。

At the same time piont, data points with no letter or the same letters mean no significant difference (P>0.05), while with different small letters mean significant difference (P<0.05).

图1各组ob/ob小鼠每周体重变化

Fig.1Body weight change weekly ofob/obmice in groups

由表2可知，各组总采食量无显著差异(P>0.05)，L-FA组与H-FA组ob/ob小鼠的总增重显著低于CON组(P<0.05)。

表2　各组ob/ob小鼠的总增重和总采食量Table 2　Total weight gain and total feed intake of ob/ob mice in groups　g

同行数据肩标无字母或相同字母表示差异不显著(P>0.05)，不同小写字母表示差异显著(P<0.05)。下表同。

In the same row, values with no letter or the same letter superscripts mean no significant difference (P>0.05), while with different small letter superscripts mean significant difference (P<0.05). The same as below.

2.2FA对ob/ob小鼠肝脏指数和腹脂率的影响

由表3可知，L-FA组与H-FA组ob/ob小鼠的肝脏重和肝脏指数与CON组无显著差异(P>0.05)，但L-FA组和H-FA组ob/ob小鼠的肝脏重均有降低的趋势(P<0.10)。与CON组相比，饲粮中添加0.25%或0.50%的FA显著降低了ob/ob小鼠的腹部WAT重和腹脂率(P<0.05)。

2.3FA对ob/ob小鼠血脂水平的影响

由表4可知，饲粮中添加0.25%或0.50%的FA对ob/ob小鼠的血清TC和LDL-C水平均没有产生显著影响(P>0.05)。L-FA组与H-FA组ob/ob小鼠的血清TG水平显著降低于CON组(P<0.05)，只有当FA添加量为0.50%时，ob/ob小鼠的血清HDL-C水平才得到显著提高(P<0.05)，L-FA组ob/ob小鼠的血清HDL-C水平与CON组无显著差异(P>0.05)。

表3　各组ob/ob小鼠的肝脏指数和腹脂率Table 3　Liver index and abdomen lipid percentage of ob/ob mice in groups

表4　各组ob/ob小鼠血清TG、TC、HDL-C和LDL-C水平Table 4　Serum TG, TC, HDL-C and LDL-C levels of ob/ob mice in groups　mmol/L

2.4FA对ob/ob小鼠肝脂水平的影响

由表5可知，与CON组相比，饲粮中添加0.25%和0.05%的FA使ob/ob小鼠肝脏TG水平分别降低了50.00%和39.29%，肝脏TC水平降低了39.62%和43.72%，差异均达到显著水平(P<0.05)。

表5　各组ob/ob小鼠肝脏TG和TC水平Table 5　Liver TG and TC levels of ob/ob mice in groups

2.5ob/ob小鼠肝脏病理学分析

由图2可知，同为10×25倍视野下，CON组ob/ob小鼠肝脏脂滴大而密集(图2-A)，而L-FA组ob/ob小鼠肝脏脂滴明显减少(图2-B)，并且大部分脂滴直径小于CON组，H-FA组ob/ob小鼠肝脏脂滴大小与密集程度相对于CON组也得到了明显改善(图2-C)。

2.6FA对ob/ob小鼠腹脂脂肪酸组成的影响

由表6可知，FA对ob/ob小鼠腹脂中C16∶0和C18∶0含量无显著影响(P>0.05)，但对C16∶1和C18∶1含量的增高有显著的抑制作用(P<0.05)。L-FA组与H-FA组ob/ob小鼠腹脂中C16∶1/C16∶0和C18∶1/C18∶0显著低于CON组(P<0.05)，且H-FA组C18∶1/C18∶0还显著低于L-FA组(P<0.05)。

3讨论

本试验通过在饲粮中添加一定量的FA，研究FA是否会对ob/ob小鼠的增重以及脂肪沉积和代谢有改善作用。本试验采用配对饲喂，使各组最终绝对总采食量无显著差异，各组ob/ob小鼠平均FA日摄入量分别为：CON组，0 mg/d；L-FA组，7.6 mg/d；H-FA组，15.5 mg/d，符合试验所设计的FA摄入梯度。

A为CON组ob/ob小鼠肝脏组织切片，B为L-FA组ob/ob小鼠肝脏组织切片，C为H-FA组ob/ob小鼠肝脏组织切片。

A, liver section ofob/obmice in CON group; B, liver section ofob/obmice in L-FA group; C, liver section ofob/obmice in H-FA group.

图2　各组ob/ob小鼠肝脏组织切片HE染色观察Fig.2　Observation on HE staining of liver tissue sections of ob/ob mice in groups (250×) 表6　各组ob/ob小鼠腹脂脂肪酸组成Table 6　Fatty acid composition in abdominal lipid of ob/ob mice in groups

由试验结果可知，L-FA组和H-FA组ob/ob小鼠的总增重分别比CON组减少了23.01%和19.4%，Son等[18]的研究表明在饲粮中添加0.50% FA可以使总增重降低26.67%，与此相一致，但本研究结果说明更小的FA添加量也可达到减重的效果。与之类似的，饲粮中添加0.25% FA使ob/ob小鼠的脂肪重减少了24.66%，腹脂率降低了18.58%，而H-FA组ob/ob小鼠的脂肪重和腹脂率分别减少了21.97%和16.17%。各组ob/ob小鼠的肝脏指数无显著差异，饲粮中添加0.25%和0.50%的FA均使ob/ob小鼠的肝脏重降低了15.4%，有趋势但不显著，这说明FA对ob/ob小鼠脂肪沉积的抑制可能主要作用于脂肪组织。相对于CON组，L-FA组和H-FA组ob/ob小鼠肝脏中TG水平分别降低了50.00%和39.29%，TC水平分别降低了39.62%和43.72%，这与图2显示出的FA具有改善肝脏脂滴积累的作用相一致，说明0.25%和0.50% FA虽未显著降低ob/ob小鼠的肝脏重，但可以抑制肝脏中脂质的积累。不同的是，Wang等[21]的研究发现口服FA虽可以降低高脂饲粮诱导的肥胖大鼠肝脏中TC水平，但是TG水平只有降低的趋势。其可能的原因是口服大量的FA与饲粮中含的FA在体内消化吸收的效率不同。在血液中，HDL-C的主要功能是促进血清中胆固醇的逆向转运[22]。本试验结果表明，H-FA组ob/ob小鼠的血清HDL-C水平相对于CON组显著提高，但血清TC水平没有显著变化。这与Marimuthu等[23]研究的结果并不相同，他们发现口服FA的代谢综合征大鼠的血清HDL-C水平比CON组升高了74.56%，血清TC水平则降低了35.37%。结果的差异可能是FA的摄入量和摄入方式不同导致。L-FA组与H-FA组ob/ob小鼠的血清TG水平相比CON组分别降低了10.56%和6.11%，而Marimuthu等[23]也报道高脂血症大鼠每天注射20 mL/kg FA可以显著降低血清与肝脏中的TG水平，与此结果类似。

Jeyakumar等[24]研究发现，饮食诱导肥胖大鼠模型中，大鼠脂肪组织的C16∶1/C16∶0和C18∶1/C18∶0会升高，但是该研究并未关注FA对脂肪酸组成的影响。在本试验中，相对于CON组，L-FA组ob/ob小鼠腹脂中C16∶1/C16∶0和C18∶1/C18∶0分别显著降低了15.59%和8.09%，H-FA组则分别降低了20.18%和13.62%，差异均达到显著水平。FA对脂肪组织中C16∶0和C18∶0的含量没有显著的改善作用，但是FA降低了C16∶1和C18∶1的含量，从而降低了ob/ob小鼠腹脂中C16∶1/C16∶0和C18∶1/C18∶0。硬脂酰辅酶A脱氢酶(stearoyl-CoA desaturase,SCD)是一种内质网酶，可以催化不饱和脂肪酸的合成[25]。在缺少SCD基因的ob/ob小鼠中，脂肪组织中C16∶1和C18∶1的含量及C16∶1/C16∶0和C18∶1/C18∶0有所降低[26]。因此，本试验中FA可能通过下调SCD基因的表达，有效减少不饱和脂肪酸的合成，抑制ob/ob小鼠的脂肪合成进程。

在本试验条件下，FA添加量为0.25%时较对ob/ob小鼠的总增重、腹脂、血清与肝脏的TG水平的改善作用都略高于添加量为0.50%时，但0.50%的FA对ob/ob小鼠的血清和肝脏TC水平有较好的改善效果。由此可知，若以减重降脂为目的，0.25%为较适宜添加量，若以降胆固醇为目的，则0.50%为较适宜添加量。FA等酚酸在人们日常饮食中含量丰富，在玉米等粗粮中的含量接近0.25%，这就鼓励人们在日常饮食中多以玉米、小米和糙米等富含FA等多酚类物质的谷物作为主食，提高对此类植物化学素的摄取，达到预防肥胖的保健效果。

4结论

本试验条件下，饲粮中添加0.25%和0.50%的FA均能够抑制ob/ob小鼠体重的增加，降低脂肪组织重量及腹脂率，降低血脂和肝脂水平，改善肝脏脂滴积累程度。以减重降脂为目的时，0.25%为较适宜添加量；以降胆固醇为目的时，0.5%为较适宜添加量。

参考文献：

[1]殷华芳,钱晓萍,刘宝瑞.阿魏酸抗肿瘤作用机制研究进展[J].现代中西医结合杂志,2010,19(32):4238-4240.

[2]D’ARCHIVIO M,FILESI C,DI BENEDETTO R,et al.Polyphenols,dietary sources and bioavailability[J].Annali dell’Istituto Superiore di Sanità,2007,43(4):348-361.

[3]郝杰,张长虹,曹学丽.七种谷物麸皮中的酚酸类成分分析[J].食品科学,2010,31(10):263-267.

[4]张伟,耿欣.不同食品中阿魏酸含量的分析[J].食品研究与开发,2012,33(8):126-128.

[5]李新明,高忠东,李群,等.苹果多酚对高脂模型大鼠血脂代谢的调节作用[J].安徽农业科学,2015,43(2):69-71.

[6]杨小兰,毛立新,张晓云.黑桑椹对高脂血症大鼠的降脂作用研究[J].食品科学,2006,26(9):509-510.

[7]熊何健,周常义,郑新阳,等.葡萄籽多酚对高脂膳食小鼠降血脂和抗氧化功能的影响[J].江西农业学报,2008,20(1):105-107.

[8]TROMBINO S,SERINI S,DI NICUOLO F,et al.Antioxidant effect of ferulic acid in isolated membranes and intact cells:synergistic interactions with α-tocopherol,β-carotene,and ascorbic acid[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2004,52(8):2411-2420.

[9]ARDIANSYAH,OHSAKI Y,SHIRAKAWA H,et al.Novel effects of a single administration of ferulic acid on the regulation of blood pressure and the hepatic lipid metabolic profile in stroke-prone spontaneously hypertensive rats[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2008,56(8):2825-2830.

[10]ALAM M A,SERNIA C,BROWN L.Ferulic acid improves cardiovascular and kidney structure and function in hypertensive rats[J].Journal of Cardiovascular Pharmacology,2013,61(3):240-249.

[11]ROY S,METYA S K,SANNIGRAHI S,et al.Treatment with ferulic acid to rats with streptozotocin-induced diabetes:effects on oxidative stress,pro-inflammatory cytokines,and apoptosis in the pancreatic β cell[J].Endocrine,2013,44(2):369-379.

[12]COYLE D R.High fat diet effects on erythrophagocytosis and mcp-1 levels in mice[D].Ph.D.Thesis.Ohio State:University of Cincinnati,2012.

[13]ZOU C H,SHAO J H.Role of adipocytokines in obesity-associated insulin resistance[J].The Journal of Nutritional Biochemistry,2008,19(5):277-286.

[14]MURASE T,MISAWA K,MINEGISHI Y,et al.Coffee polyphenols suppress diet-induced body fat accumulation by downregulating SREBP-1c and related molecules in C57BL/6J mice[J].American Journal of Physiology: Endocrinology and Metabolism,2010,300(1):E122-E133.

[15]CHAO J,HUO T I,CHENG H Y,et al.Gallic acid ameliorated impaired glucose and lipid homeostasis in high fat diet-induced NAFLD mice[J].PLoS One,2014,9(6):e96969.

[16]韩超,范小兵,王少康,等.表没食子儿茶素没食子酸酯对肥胖模型大鼠减肥作用的实验研究[J].现代医学,2008,36(3):197-199.

[17]郭苗,杨小兰.酒花多酚对高脂血症小鼠的降脂与抗氧化作用[J].食品科学,2015,36(3):183-187.

[18]SON M J, RICO C W, NAM S H,et al.Influence of oryzanol and ferulic acid on the lipid metabolism and antioxidative status in high fat-fed mice[J].Journal of Clinical Biochemistry and Nutrition,2010,46(2):150-156.

[19]SENAPHAN K,KUKONGVIRIYAPAN U,SANGARTIT W,et al.Ferulic acid alleviates changes in a rat model of metabolic syndrome induced by high-carbohydrate,high-fat diet[J].Nutrients,2015,7(8):6446-6464.

[20]LINDSTRÖM P.β-cell function in obese-hyperglycemic mice[ob/obmice][J].Advances in Experimental Medicine and Biology,2010,654:463-477.

[21]WANG O,LIU J,CHENG Q,et al.Effects of ferulic acid and γ-oryzanol on high-fat and high-fructose diet-induced metabolic syndrome in rats[J].PLos One,2015,10(2).e0118135.

[23]MARIMUTHU S,ADLURI R S,RAJAGOPALAN R,et al.Protective role of ferulic acid on carbon tetrachloride-induced hyperlipidemia and histological alterations in experimental rats[J].Journal of Basic and Clinical Physiology and Pharmacology,2013,24(1):59-66.

[24]JEYAKUMAR S M,LOPAMUDRA P,PADMINI S,et al.Fatty acid desaturation index correlates with body mass and adiposity indices of obesity in Wistar NIN obese mutant rat strains WNIN/Ob and WNIN/GR-Ob[J].Nutrition & Metabolism,2009,6(27):1722-1726.

[25]NTAMBI J M,MIYAZAKI M,STOEHR J P,et al.Loss of stearoyl-CoA desaturase-1 function protects mice against adiposity[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2002,99(17):11482-11486.

[26]PATON C M,NTAMBI J M.Biochemical and physiological function of stearoyl-CoA desaturase[J].American Journal of Physiology:Endocrinology and Metabolism,2009,297(1):E28-E37.

(责任编辑菅景颖)

doi：10.3969/j.issn.1006-267x.2016.07.019

收稿日期：2016-01-25

基金项目：公益性(粮食)行业专项“粮油营养健康特性研究与基础参数数据库的构建”(201313011-6)；河南省重点攻关项目“农产品加工副产物的高效增值和循环利用关键技术研究”(142102310262)

作者简介：潘奕鸥(1990—)，男，河南洛阳人，硕士研究生，研究方向为生物化学与分子生物学。E-mail: lynnouou@163.com *通信作者：刘建学，教授，硕士生导师，E-mail: jx_liu@163.com

中图分类号：S816

文献标识码：A

文章编号：1006-267X(2016)07-2140-07

*Corresponding author, professor, E-mail: jx_liu@163.com

Effects of Ferulic Acid on Lipid Deposition and Fatty Acid Composition in Abdominal Lipid ofob/obMice

PAN Yiou1,2,3WANG Weiwei2LI Aike2ZHANG Weiwei1HAN Sihai1LIU Jianxue1,3*

(1. College and Food and Bioengineering, Henan University of Science and Technology, Luoyang 471023, China;2. Academy of State of Administration of Grain, Beijing 100037, China; 3. Henan Engineering Research Center of Food Material, Luoyang 471023, China)

Abstract:This experiment was conducted to study the effects of ferulic acid (FA) on lipid deposition and fatty acid composition in abdominal lipid of ob/ob mice. A total of 30 male ob/ob mice at 5 weeks old were randomly divided into 3 groups (n=10). ob/ob mice in the 3 groups were fed the basal diets supplemented with 0 (control group), 0.25% and 0.50% FA, respectively. The experiment lasted for 9 weeks. The results showed that compared with control group, FA significantly reduced the total weight gain and abdomen fat percentage (P<0.05), significantly lessened the serum TG and liver TG and TC levels (P<0.05), attenuated accumulation of lipid droplet, significantly suppressed the contents of palmitoleic acid and oleic acid in abdominal lipid(P<0.05), and significantly decreased the desaturation indexes-palmitoleic acid/palmitic acid and oleic acid/ stearic acid in abdominal lipid (P<0.05). It is concluded that FA can inhibit the lipid deposition and ameliorate the fatty acid composition in abdominal lipid, and the weight-reducing and lipid-lowering effect is obvious.[Chinese Journal of Animal Nutrition, 2016, 28(7)：2140-2146]

Key words:ferulic acid; ob/ob mice; obesity; lipid deposition; fatty acid composition