生物素对吉富罗非鱼幼鱼生长、体成分及血清生化指标的影响

吴金平，文　华，蒋　明，刘　伟，吴　凡，田　娟，黄　凤，任　春

(1上海海洋大学 水产与生命学院，上海 200090；2 中国水产科学研究院 长江水产研究所，湖北 武汉 430223；3 华中农业大学 水产学院，湖北 武汉 430070)



生物素对吉富罗非鱼幼鱼生长、体成分及血清生化指标的影响

吴金平1，文华2，蒋明2，刘伟2，吴凡2，田娟2，黄凤2，任春3

(1上海海洋大学 水产与生命学院，上海 200090；2 中国水产科学研究院 长江水产研究所，湖北 武汉 430223；3 华中农业大学 水产学院，湖北 武汉 430070)

[摘要]【目的】 研究生物素对吉富罗非鱼幼鱼生长、体成分及血清生化指标的影响，以确定其需要量。【方法】 选用初始体质量为(64.04±1.26) g/尾的吉富罗非鱼幼鱼270尾，随机分成6组(每组3重复，每重复15尾)，分别投喂生物素水平为0.00(对照组)，0.03，0.07，0.31，0.61和1.26 mg/kg的饲料10周，测定并分析生物素对吉富罗非鱼幼鱼体质量增长率、特定生长率、体成分及血清生化指标的影响。 【结果】 饲料中添加一定水平的生物素可显著提高鱼体质量增长率、特定生长率、饲料效率和肥满度(P<0.05)。0.07 mg/kg生物素添加组鱼粗脂肪以及1.26 mg/kg生物素添加组鱼灰分含量最高，均显著高于对照组(P<0.05)；水分和粗蛋白含量在各组间无显著差异(P>0.05)。0.61 mg/kg生物素添加组鱼血清总蛋白、白蛋白和球蛋白质量浓度显著高于其余各组(P<0.05)；0.61和 1.26 mg/kg生物素添加组鱼血清甘油三酯、总胆固醇浓度显著高于对照组(P<0.05)。血清过氧化氢酶与超氧化物歧化酶活性分别以0.07和0.31 mg/kg生物素添加组最大，均显著高于对照组(P<0.05)；0.03～0.31 mg/kg生物素添加组血清丙二醛浓度均显著低于对照组(P<0.05)。【结论】 饲料中添加生物素可提高吉富罗非鱼生长性能，改善饲料利用效率，吉富罗非鱼幼鱼饲料生物素适宜需要量为0.08 mg/kg。

[关键词]吉富罗非鱼；生物素；生长；体成分；血清生化指标

生物素，又名维生素H，属于水溶性B族维生素，通常以辅酶的形式参与催化脱羧和羧化反应，影响氨基酸代谢、脂肪酸合成，是维持动物正常生理机能所必需的维生素之一[1]。国内外很多研究证明，生物素对鱼类有很重要的作用，鱼类缺乏生物素时会表现出厌食、生长减慢、皮肤色素沉积异常等症状[1]；而在饲料中添加生物素可以提高幼建鲤(Cyprinuscarpio)[2]、日本尖吻鲈(Lateolabraxjaponicas)[3]、印度鲶(Heteropneustesfossilis)[4]、草鱼(Ctenopharyngodonidellus)[5]等的体质量增长率，促进其生长。

罗非鱼具有生长快、食性杂、无肌间刺、营养丰富等优点[6]，是我国南方地区主要养殖的淡水品种之一[7]。迄今为止，已有学者对小规格罗非鱼(1～50 g/尾)[8]的维生素营养[9]进行了全面的研究，但由于大规格罗非鱼(>50 g/尾)[8]对饲料中维生素缺乏反应不敏感，对饲养条件的要求也较高，且饲养环境难以控制等因素，对其维生素营养需要研究较少，仅见奥尼罗非鱼(Oreochromisniloticus×O.aureus) 幼鱼(0.98±0.01) g/尾)的生物素需要量为0.06 mg/kg的报道[10]。在罗非鱼养成过程中，成鱼阶段的生长期长且饲料消耗多，其营养需要的研究尤为重要。本试验研究了不同水平生物素对大规格罗非鱼的生长、体成分、血清指标及抗氧化性能的影响，确定生物素适宜需要量，旨在为罗非鱼饲料配制提供理论依据。

1材料与方法

1.1试验饲料

分别以酪蛋白和明胶为蛋白源，玉米油和豆油为脂肪源，糊精作为糖源配制基础饲料，其配方及基本营养组成见表1。参照Shiau等[10]的研究，在基础饲料中将生物素按6个水平(0.00，0.05，0.10，0.40，0.80和1.60 mg/kg)进行添加，组成试验饲料，以微晶纤维素作为填充剂，使各组试验饲料营养成分基本保持一致。所有原料经粉碎后过孔径0.3 mm的网，混匀，最后加豆油、玉米油和20%的水混匀，用绞肉机将饲料原料挤压成条状，常温条件下避光风干，破碎成直径为2 mm的颗粒饲料。采用高效液相色谱法检测饲料中生物素含量[11]，0.00，0.05，0.10，0.40，0.80和1.60 mg/kg生物素添加组饲料中的生物素含量实测值分别为0.00(未检出)，0.03，0.07，0.31，0.61和1.26 mg/kg。

1.2试验鱼与饲养管理

试验用鱼由广西罗非鱼国家级育种试验场提供。试验鱼购回后进行消毒，然后放入暂养池中，用基础饲料喂养2周，以使其适应试验饲料和试验环境。正式试验前，将试验鱼饥饿24 h后，挑选体格健壮的270尾吉富罗非鱼，平均体质量为(64.04±1.26) g/尾，将其养殖于18个450 L的封闭式循环水养殖桶中，每桶15尾鱼，随后随机分成6组，每组重复3桶，饲喂不同的饲料，饲养期为10周。养殖期间水温(24～32) ℃，pH 6.5～7.0，溶氧质量浓度大于4 mg/L，氨氮质量浓度小于0.05 mg/L。每天投食2次(08:00-09:00；16:00-17:00)；表观饱食投喂，并根据鱼体生长、摄食情况和水温等环境条件来及时调整投喂量，且每天记录鱼摄食及死亡情况。

1.3样品采集

试验结束时，禁食24 h；以养殖桶为单位称质量，并统计成活的鱼尾数；每个养殖桶随机挑取4尾鱼，用于全鱼的粗蛋白、粗脂肪、灰分、水分等常规营养成分含量的测定。随后每个养殖桶再随机取4尾鱼，进行体质量、体长的测定，并从尾静脉采集血液，4 ℃静置5 h后，3 000 r/min离心15 min，取上层血清，用于部分血清生化指标及血清抗氧化酶活性的检测。最后将试验鱼解剖，取肝脏、内脏，并对其称质量；全鱼、血清、肝脏样品保存于-40 ℃的冰箱中。

表 1　基础饲料组成及基本营养组成

注：复合维生素配方：硫胺素盐酸盐.5 g/kg;核黄素.10 g/kg;泛酸钙.10 g/kg;盐酸吡哆醇.4 g/kg;叶酸.1.5 g/kg;肌醇.200 g/kg；L-维生素C-2-磷酸镁.60 g/kg；α-维生素E醋酸酯.50 g/kg;维生素K.4 g/kg;视黄醇醋酸酯.0.4 g/kg；维生素D3.0.000 468 5 g/kg;再用微晶纤维素添加至1 kg。复合矿物盐配方：磷酸二氢钙.135.8 g/kg；乳酸钙.327 g/kg；硫酸亚铁.2.125 g/kg；硫酸镁.137 g/kg；磷酸二氢钠.87.2 g/kg；氯化钠.43.5 g/kg；氯化铝.0.15 g/kg；碘酸钾.0.125 g/kg；氯化钾.75 g/kg；氯化铜.0.1 g/kg；硫酸锰.0.80 g/kg；氯化钴.1 g/kg；硫酸锌.3 g/kg；再用微晶纤维素添加至1 kg。

Note：The vitamin premix formulation:Thiamin hydrochloride.5 g/kg;Riboflavin.10 g/kg;Calcium pantothenate.10 g/kg;Pyridoxine hydrochloride.4 g/kg;Folic acid.1.5 g/kg;Inositol.200 g/kg;L-ascorbyl-2-monophosphate-Mg.60 g/kg;α-tocopheryl acetate.50 g/kg;Menadione.4 g/kg;Retinol acetate.0.4 g/kg;Cholecalciferol.0.000 468 5 g/kg.All ingredients were diluted with Micro-cellulose to 1 kg.The mineral premix formulation:Ca(H2PO4)2·H2O.135.8 g/kg;Ca(CH3CHOHCOO)2·5H2O.327 g/kg;FeSO4·6H2O.2.125 g/kg;MgSO4·7H2O.137 g/kg;NaH2PO4.87.2 g/kg;NaCl.43.5 g/kg;AlCl3·6H2O.0.15 g/kg;KI.0.15 g/kg;KCl.75 g/kg;CuCl2·2H2O.0.1 g/kg;MnSO4·H2O.0.80 g/kg;CoCl2·6H2O.1 g/kg;ZnSO4·7H2O.3 g/kg.All ingredients were diluted with Micro-cellulose to 1 kg.

1.4测定指标与方法

根据以下公式计算成活率、体质量增长率、特定生长率、饲料效率、肝体比、脏体比、肥满度。成活率(SR)=S1/S0×100%；体质量增长率(WGR)=(W1-W0)/W0×100%；特定生长率(SGR)={ln(W1)-ln(W0)}/t×100%；饲料效率(FE)=Wz/Fz；肝体比(HIS)=WH/W×100%；脏体比(VSI)=WV/W×100%；肥满度(CF，g/cm3)=W/L3。其中，S1为试验结束时鱼尾数，S0为试验开始时鱼尾数；W1为试验末平均体质量(g)，W0为初始平均体质量(g)；t为养殖时间(d)；Wz为每个养殖桶总增体质量，Fz为每个养殖桶投喂饲料总量；WH为肝质量(g)，W为鱼体质量(g)，WV为内脏质量(g)，L为体长(cm)。

全鱼和饲料的水分含量采用103 ℃恒温干燥失重法测定；粗蛋白、粗脂肪和灰分含量分别采用凯氏定氮法、索氏抽提法、马福炉灰化法测定。血清甘油三酯(TG)、总胆固醇(TCHO)浓度以及白蛋白(ALB)和总蛋白(TP)质量浓度采用Sysmex全自动生化分析仪(CHEMIX-800)测定。血清球蛋白(GLO)质量浓度为总蛋白(TP)与白蛋白(ALB)质量浓度的差值。血清超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶 (CAT) 活性和丙二醛(MDA)浓度采用南京建成生物工程研究所的试剂盒进行测定。SOD活性定义为每毫升反应液中SOD抑制率达50%时所对应的SOD量为一个SOD活性单位；CAT活性定义为每mL血清或血浆每秒分解1 μmol H2O2的量为一个活性单位。

1.5数据处理

所有试验数据采用Spass 18.0统计软件中One-way ANOVA方差分析和Tukey’s均值多重比较法进行差异显著性分析，试验结果均以“平均值±标准差”表示，当P<0.05时为差异显著。

2结果与分析

2.1生物素对吉富罗非鱼幼鱼生长、饲料利用及形态学指标的影响

经过10周养殖试验，罗非鱼生长性能见表2。由表2可知，随饲料生物素水平的提高，罗非鱼体质量增长率呈逐渐增大的趋势，0.07～1.26 mg/kg生物素添加组试验鱼体质量增长率显著高于0.00 mg/kg生物素添加组(P<0.05)，0.00与0.03 mg/kg 生物素添加组无显著差异(P>0.05)，0.07，0.31，0.61和1.26 mg/kg生物素添加组之间差异不显著(P>0.05)。0.00与0.03 mg/kg生物素添加组试验鱼特定生长率显著低于其余各组(P<0.05)，0.07，0.31，0.61和1.26 mg/kg生物素添加组之间差异不显著(P>0.05)。0.03和0.07 mg/kg 生物素添加组试验鱼饲料效率显著高于 1.26 和0.00 mg/kg生物素添加组(P<0.05)，0.00 与0.31～1.26 mg/kg生物素添加组无显著差异(P>0.05)，0.03，0.07，0.31和0.61 mg/kg生物素添加组之间差异不显著(P>0.05)。罗非鱼成活率不受饲料生物素含量影响(P>0.05)。饲料添加生物素可明显提高罗非鱼的肥满度，0.07 mg/kg生物素添加组试验鱼肥满度显著高于0.00和0.03 mg/kg生物素添加组(P<0.05)，与0.31，0.61和1.26 mg/kg生物素添加组差异不显著(P>0.05)。0.61 mg/kg生物素添加组罗非鱼肝体比显著高于0.00～0.31 mg/kg生物素添加组(P<0.05)，与 1.26 mg/kg生物素添加组差异不显著(P>0.05)。罗非鱼脏体比在生物素添加水平为0.61 mg/kg时达到最大，显著高于其余各组。根据饲料生物素含量(x)与罗非鱼体质量增长率(y)的关系，经折线模型回归分析得回归方程y=714.63(x-0.08)+328.78(R2=0.909 5,图1)。由图1可知，罗非鱼获得最佳生长时对饲料中生物素的需要量为0.08 mg/kg。

表 2　生物素对吉富罗非鱼幼鱼生长、饲料利用及形态学指标的影响

注：同列数据后标不同小写字母者表示有显著性差异(P<0.05)。下表同。

Note：Different lowercase letters indicate significant difference (P<0.05).The same below.

图 1生物素含量(x)对吉富罗非鱼幼鱼体质量增长率(y)的回归分析

Fig.1Regression analysis between biotin levels (x) and mass gain rate (y) of juvenile GIFT tilapia

2.2生物素对吉富罗非鱼幼鱼体成分的影响

从表3可见，经过10周生长试验，饲料添加生物素对全鱼水分和粗蛋白含量无显著影响(P>0.05)，但对全鱼粗脂肪和灰分含量有显著影响(P<0.05)。0.07 mg/kg生物素添加组全鱼粗脂肪含量显著高于0.00，0.03和1.26 mg/kg生物素添加组(P<0.05)，与0.31和0.61 mg/kg生物素添加组无显著差异(P>0.05)。1.26 mg/kg生物素添加组全鱼灰分含量显著高于0.00 mg/kg生物素添加组(P<0.05)，与其他组间无显著差异(P>0.05)。

表 3　生物素对吉富罗非鱼幼鱼体成分的影响

2.3生物素对吉富罗非鱼幼鱼血清蛋白及脂质浓度的影响

饲料生物素含量对罗非鱼血清TP、ALB、GLO、TCHO、TG的影响见表4。由表4可知，0.61 mg/kg生物素添加组试验鱼血清TP、GLO和ALB质量浓度显著高于其他组(P<0.05)，其他组间无显著差异(P>0.05)。0.61 mg/kg生物素添加组试验鱼血清TCHO浓度显著高于其余各组(P<0.05)，0.00～0.31 mg/kg生物素添加组试验鱼血清TCHO浓度无显著差异(P>0.05)，0.03～0.07与1.26 mg/kg生物素添加组试验鱼血清TCHO浓度无显著差异(P>0.05)。0.61和1.26 mg/kg生物素添加组罗非鱼血清TG浓度总体显著高于其他组(P<0.05)，其他组间无显著差异(P>0.05)。

表 4　生物素对吉富罗非鱼幼鱼血清蛋白及脂质浓度的影响

2.4生物素对吉富罗非鱼幼鱼血清抗氧化性能的影响

饲料生物素含量对罗非鱼血清抗氧化性能的影响见表5。由表5可见，随饲料生物素含量的提高，吉富罗非鱼血清SOD活性呈先升后降的趋势，0.31 mg/kg 生物素添加组血清SOD活性最大，显著高于其余各组(P<0.05)，0.03，0.61和1.26 mg/kg生物素添加组之间无显著差异(P>0.05)。0.03～0.31 mg/kg生物素添加组血清MDA浓度显著低于0.00 mg/kg生物素添加组(P<0.05)，0.00，0.61和1.26 mg/kg生物素添加组之间无显著差异(P>0.05)。随饲料生物素含量的提高，罗非鱼血清CAT活性呈先升高后稳定的趋势，0.03～1.26 mg/kg生物素添加组血清CAT活性均显著高于0.00 mg/kg生物素添加组(P<0.05)。

表 5　生物素对吉富罗非鱼幼鱼血清抗氧化性能的影响

3讨论

3.1生物素对吉富罗非鱼幼鱼生长性能的影响

已经有很多研究证明，生物素是大多数鱼类生长发育必需的维生素，鱼类食物中缺乏生物素时会引起各种缺乏症。生物素缺乏时，日本尖吻鲈[3]表现为厌食、生长减缓、死亡率高、皮肤变黑；印度鲶[4]死亡率高，食欲下降，皮肤变黑；斑马鱼[12]生长减缓，骨骼畸形，鳃细胞萎缩与破裂，肝糖源含量升高；而草鱼[5]、奥尼罗非鱼[10]并没有出现上述缺乏相关症状。在本试验中，各组罗非鱼也均未表现出上述明显的缺乏症，仅0.00 mg/kg组罗非鱼出现了生长减缓、饲料效率降低、肥满度下降等现象。前人在大黄鱼[13]、鲈鱼[13]、皱纹盘鲍[14]上的研究发现，肠道内存在微生物可以合成部分生物素。本试验在吉富罗非鱼上未发现明显的生物素缺乏症的原因，可能是由于肠道内微生物合成了生物素，满足了其部分需求，也有可能和本试验的周期较短有关。

Shiau等[10]在纯化饲料中添加不同水平的生物素投喂奥尼罗非鱼幼鱼(0.98～4.60 g/尾)8周，结果发现0.1 mg/kg生物素添加组试验鱼生长最快，而0.00 mg/kg生物素添加组生长最慢。在幼建鲤[2]、印度鲶[4]、草鱼[5]、鲈鱼[13]等的研究上也有类似的结果。在本试验中，当饲料生物素添加量为 0.07 mg/kg及以上时，各生物素添加组鱼体质量增长率与特定生长率均显著高于0.00 mg/kg生物素添加组，表明饲料中添加适量的生物素对罗非鱼幼鱼的生长有促进作用，这可能与添加生物素后试验鱼的摄食量及饲料效率提高有关。前人对幼建鲤的研究表明，当饲料生物素水平从0.01 mg/kg提高至0.151 mg/kg时，幼建鲤的采食量、饲料效率分别提高86.22%和80.08%[2]。本试验中，除1.26 mg/kg生物素添加组外，其余各组的饲料效率也均较0.00 mg/kg生物素添加组有不同程度的提高。

生物素对大多数鱼类的生长是必需的，但不同种类的需要量却不相同，如幼建鲤为0.15 mg/kg[2]，日本尖吻鲈为0.046 mg/kg[3]，印度鲶为0.25 mg/kg[4]，草鱼为0.40 mg/kg[5]，斑马鱼为 0.51 mg/kg[12]。不同试验得到的养殖鱼类对生物素的需求量不尽相同，这与养殖对象的种类、生长阶段、养殖环境、评价依据等有关[13]。

Shiau等[10]以体质量增长率为评价指标，得出初始体质量为(0.98±0.01) g/尾的奥尼罗非鱼幼鱼的生物素需要量为0.06 mg/kg。而本试验以体质量增长率为评价指标时，通过折线模型可以得到罗非鱼幼鱼((64.04±1.26) g/尾)获得最大生长时对饲料生物素最低的需要量为0.08 mg/kg。以上2种不同规格鱼类对生物素的需要量基本相近，这与不同规格鱼类对维生素需求不同的观点不一致。一般认为，养殖动物的生长阶段和生理特征不同，对维生素的需求也不同；幼鱼期由于代谢率高、生长快，因而对维生素的需要量高于成鱼[1]。本试验中， (64.04±1.26) g/尾的吉富罗非鱼对饲料生物素需要量与(0.98±0.01) g/尾的奥尼罗非鱼相近，究其原因可能与饲料脂肪能起到节约饲料生物素含量有关。Poston等[15]、Kitamura等[16]发现，饲料脂肪可以节约湖鳟、虹鳟对饲料生物素的需要量。本试验饲料的粗脂肪含量为66.4 g/kg，Shiau等[10]研究中饲料的粗脂肪含量为103.3 g/kg，因此推断饲料脂肪在一定程度上节约了奥尼罗非鱼幼鱼对饲料生物素的需要量。

3.2生物素对吉富罗非鱼幼鱼体成分的影响

本试验结果表明，饲料添加一定量生物素可以提高鱼体粗脂肪和灰分含量，对鱼体粗蛋白和水分含量无显著影响；除0.03 mg/kg生物素添加组外，其余各组鱼体粗脂肪含量均高于0.00 mg/kg生物素添加组，这可能与饲料中添加生物素可以提高脂肪酸合成相关酶活性，进而促进脂肪合成有关[17]。在对印度鲶[4]、奥尼罗非鱼[10]的研究上均发现，投喂生物素组鱼的肝脏中乙酰-CoA羧化酶和丙酮酸羧化酶活性显著高于0.00 mg/kg生物素添加组，同时0.00 mg/kg生物素添加组的鱼体粗脂肪含量也显著低于添加生物素组的鱼，这进一步揭示了饲料添加生物素可以促进鱼体脂肪合成。本试验中，0.61 mg/kg生物素添加组鱼体粗蛋白含量达到最大，但各组之间无显著差异，该结果与对草鱼[5]、奥尼罗非鱼[10]、斑马鱼[12]、鲈鱼[13]等的研究结果一致。

3.3生物素对吉富罗非鱼幼鱼血清蛋白及脂质浓度的影响

在蛋白质代谢过程中，生物素主要作为丙酰辅酶A羧化酶的辅酶，作用于蛋氨酸、异亮氨酸、苏氨酸等，使其经琥珀酰辅酶A进入柠檬酸循环，为多种氨基酸的转移和脱羧所必需[18]。Atwal等[19]研究表明，生物素缺乏会显著抑制氨酰基-tRNA与核糖体的结合，从而抑制蛋白质的合成。本试验中，吉富罗非鱼血清TP、ALB、GLO质量浓度变化趋势基本一致，均以不添加生物素组最低，以 0.61 mg/kg生物素添加组最大。造成本试验0.00 mg/kg生物素添加组血清TP、ALB质量浓度较其他组低的原因，可能是由于0.00 mg/kg生物素添加组罗非鱼体内生物素不足引起了蛋白质的合成障碍，从而导致该组鱼血清TP、ALB质量浓度较低。GLO主要为免疫球蛋白。本试验中，0.61 mg/kg生物素添加组鱼血清GLO质量浓度显著高于0.00 mg/kg生物素添加组，其余各组GLO质量浓度也均高于 0.00 mg/kg生物素添加组，说明饲料添加一定量生物素可以提高罗非鱼血清GLO质量浓度。对幼建鲤[2]的研究表明，生物素添加量为0.054，0.151，0.33，1.54和2.68 mg/kg时，血清IgM极显著高于添加量为0.028和0.01 mg/kg生物素添加组。在本试验中还发现，0.61 mg/kg生物素添加组鱼血清TG、TCHO浓度显著升高，从健康角度考虑，TG、TCHO浓度升高可能导致多种心血管疾病，特别是二者浓度均高者其脂肪肝发生率也最高[20]。而国内外关于生物素对罗非鱼血液TP、ALB、GLO、TG、TCHO浓度的影响尚无相关研究，本试验中，各生物素添加组以上指标测定值是否在正常范围内还有待进一步研究。

3.4生物素对吉富罗非鱼幼鱼血清抗氧化性能的影响

4结论

在本试验条件下，饲料中添加生物素可以提高吉富罗非鱼幼鱼生长性能，改善饲料利用效率，其获得最佳生长速度时对饲料中生物素的需要量为 0.08 mg/kg。

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Effects of dietary biotin on growth,body composition and serum biochemical indices of juvenile GIFT Tilapia

WU Jin-ping1,WEN Hua2,JIANG Ming2,LIU Wei2,WU Fan2,TIAN Juan2,HUANG Feng2,REN Chun3

(1CollegeofFisheriesandLifeScience,ShanghaiOceanUniversity,Shanghai200090,China;2YangtzeRiverFisheriesResearchInstitute,ChineseAcademyofFisherySciences,Wuhan,Hubei430223,China;3CollegeofFisheries,HuazhongAgricultureUniversity,Wuhan，Hubei430070,China)

Abstract:【Objective】 This study investigated the influences of dietary biotin on growth, body composition and serum biochemical indices of juvenile GIFT tilapia to detect the suitable amount of biotin in diet. 【Method】 A total of 270 juvenile GIFT tilapia (Oreochromis niloticus) with initial body weight of (64.04±1.26) g were randomly divided into six groups,with 3 replicates per group (n=15 fish/replicate).Each group was fed on diet containing 0.00 (control group),0.03,0.07,0.31,0.61,and 1.26 mg/kg biotin for 10 weeks,respectively.Weight gain rate (WGR),specific growth rate (SGR),body composition,and serum biochemical indices of juvenile GIFT tilapia were detected and analyzed.【Result】 The supplementary dietary biotin improved WGR,feed efficiency (FE),and condition factor (CF) (P<0.05).Moisture and crude protein contents of whole body were not affected by dietary biotin (P>0.05).The serum total protein (TP),albumin (ALB),and globulin(GLO) in 0.61 mg/kg group were significantly higher than that in the control group (P<0.05).Serum total cholesterol (T-CHO) and triglyceride (TG) in 1.26 mg/kg group were significantly higher than that in the control group (P<0.05).The activities of serum superoxide dismutase (SOD) and catalase (CAT) reached the peak when the fish was fed with biotin at 0.07 mg/kg and 0.31 mg/kg levels,respectively.Serum maleic aldehyde (MDA) in 0.03-0.31 mg/kg group was significantly lower than the control group (P<0.05).【Conclusion】 The proper amount for dietary biotin for GIFT tilapia was 0.08 mg/kg.

Key words：GIFT tilapia (Oreochromis niloticus);biotin;growth;body composition;serum biochemical index

DOI：网络出版时间:2016-01-0810:2210.13207/j.cnki.jnwafu.2016.02.003

[收稿日期]2014-06-30

[基金项目]现代农业产业技术体系专项(CARS-49)；2010年公益性行业(农业)科研专项(201003020)；中央级公益性科研院所基本科研业务费专项(2011JBFA21)

[作者简介]吴金平(1989-)，男，湖北武汉人，在读硕士，主要从事鱼类维生素营养研究。[通信作者]文华(1965-)，男，湖北荆州人，研究员，主要从事水产动物营养与饲料研究。E-mail：wenhua.hb@163.com

[中图分类号]S965.125

[文献标志码]A

[文章编号]1671-9387(2016)02-0015-08