IL-8-CXCR1/2信号通路与卵巢上皮癌关系的研究进展①

2016-02-01 14:09王开南
中国免疫学杂志 2016年6期
关键词:上皮卵巢受体

王开南 李 芳

(大连医科大学基础医学院免疫教研室,大连116044)

IL-8-CXCR1/2信号通路与卵巢上皮癌关系的研究进展①

王开南李芳

(大连医科大学基础医学院免疫教研室,大连116044)

CXCR1/2是一类G蛋白偶联受体,CXCR1主要与IL-8结合,而CXCR2可以与多种配体(IL-1~3,Gro-α,β,γ,IL-8)结合,在机体内CXCR1与CXCR2具有协同的作用[1]。CXCR1/2在正常机体内主要表达于中性粒细胞表面,当有外来病原体入侵,在组织局部引起炎症反应,炎症组织释放IL-8等趋化因子,经血液循环与中性粒细胞表面的CXCR1/2结合,从而趋化中性粒细胞迁移至炎症发生部位吞噬和杀灭病原体[2]。此外,IL-8-CXCR1/2信号通路具有显著的促血管生成作用,参与机体内创伤愈合过程[3]。

卵巢上皮癌(Epithelial ovarian cancer,EOC)是起源于卵巢上皮细胞的高度恶性肿瘤,位居全球女性死亡原因第五位[4],在我国EOC的发病率和死亡率也在逐年上升,在各种妇科恶性肿瘤中其发病率位居第二位,死亡率位居第一位。由于卵巢上皮癌位于盆腔深部,早期通常无症状,不易察觉,目前缺乏对EOC的早期诊断手段,当患者出现临床症状就诊时大多已至晚期,癌细胞大量转移,使得临床发现的卵巢上皮癌患者多已错过手术根治的最佳时机[5,6]。化疗作为卵巢上皮癌术后和无法手术患者的重要治疗手段,一直是EOC治疗的研究热点。目前常用于EOC治疗的化疗药物如顺铂、环磷酰胺等,具有细胞毒性,在杀死肿瘤细胞的同时也破坏了正常细胞,引发细胞免疫反应,从而产生严重的免疫炎性损伤,这种副作用往往是剂量相关性的,因此极大地制约了化疗药物的抗癌效果,EOC是化疗敏感的肿瘤,如果可以缓解化疗药物的副作用,增强EOC患者对药物的耐受能力,将会大大提高化疗效果。在EOC患者体内,IL-8-CXCR1/2信号通路过度激活,其拮抗剂可以拮抗体内的免疫炎性反应,从而缓解抗肿瘤药物的副作用。有研究表明CXCR2受体在环磷酰胺所致出血性膀胱炎机制中有重要作用,提示抑制CXCR2受体可以缓解环磷酰胺的副作用[7]。此外,CXCR1/2受体抑制剂G31P能够明显缓解顺铂所致的肾毒性[8]。本文着眼于IL-8-CXCR1/2信号通路与卵巢上皮癌之间的相互作用,期待找到更加有效的卵巢上皮癌治疗的新靶点。

1IL-8、CXCR1/2在卵巢上皮癌患者体内高表达

肿瘤在机体中能否生长、甚至转移,关键在于肿瘤细胞的增殖、黏附、迁移、血管生成和免疫逃避的能力[5]。有研究显示,肿瘤细胞可合成并分泌大量IL-8,与自身或其他肿瘤细胞表面的CXCR1/2受体结合,从而促进肿瘤组织血管生成、肿瘤细胞增殖和转移。CXCR1/2受体在卵巢癌、前列腺癌、肝细胞癌、鼻咽癌、肾细胞癌等恶性肿瘤中均高表达,且与肿瘤的增殖、转移和血管生成有关[9-11]。最早在2000年,Karin等[12]检测了26例卵巢组织(其中4例正常卵巢组织;22例卵巢癌样本)中IL-8及其受体CXCR1/2的表达情况,结果显示IL-8、CXCR1/2在EOC的上皮细胞和基质中都呈高表达,并且在良性、交界性、恶性卵巢肿瘤中表达水平都有不同程度的增高[12]。此后,又陆续有实验研究表明在EOC组织、EOC腹腔转移产生的腹水、患者血浆中IL-8水平均升高[13,14]。

2IL-8-CXCR1/2信号通路与卵巢上皮癌细胞的增殖

CXCR1/2位于细胞表面,患者体内的IL-8与细胞上的CXCR1/2结合后,激活第一信使磷脂酰肌醇-3-羟激酶或磷酸酶C、第二信使苏氨酸激酶(Akt)、蛋白激酶C、 钙离子或丝裂原蛋白激酶,调节细胞周期[13]。在体内,CXCL1类细胞因子IL-8、GRO-1和IL-6与EOC细胞表面CXCR2结合,激活蛋白酶C水解表皮生长因子受体(Epidermal growth factor receptor,EGFR)上的肝素结合表皮细胞生长因子(Heparin-binding epidermal growth factor,HB-EGF),活化EGFR受体,激活MAPK信号通路[15](其中第二信使AKt可激活NF-κB促进癌细胞增殖),增强癌细胞的迁移和侵袭能力[16],从而发挥促进EOC细胞的增殖的作用。当EOC发生腹腔转移时,腹膜间皮细胞产生大量的IL-8、GRO-1和IL-6与EOC细胞表面的CXCR1/2结合,促进癌细胞的增殖和转移,有研究表明这一机制在发生腹腔转移的EOC过程中发挥重要作用[17]。

3IL-8-CXCR1/2信号通路与卵巢上皮癌细胞的转移

在EOC患者体内,IL-8-CXCR1/2信号通路主要通过激活各种炎性趋化因子,建立利于癌细胞增殖转移的微环境来发挥促进EOC细胞转移的作用。IL-8-CXCR1/2信号通路可促进TNF的合成和分泌,TNF是可调节各种炎性趋化因子的重要介导因子,其通过激活核因子(nuclear factor-κB,NF-κB)促进细胞产生大量炎性趋化因子[4]。IL-8-CXCR1/2信号通路增强基质金属蛋白酶-2,9(Matrix metalloprotease-2,MMP-2,9)活性,一方面MMP-2,9可降解基底层细胞主要结构胶原蛋白Ⅳ,有利于肿瘤细胞的扩散,另一方面MMP-2,9可增强血管内皮生长因子的活性,促进新生血管形成,为肿瘤细胞的增殖和转移提供营养条件[13,18]。除此之外,IL-8-CXCR1/2信号通路介导细胞的迁移作用的机制与衔接蛋白-2(Adaptin-2,AP2)有关,AP2与β-抑制蛋白竞争结合细胞内的网格蛋白,阻止β-抑制蛋白与CXCR2-LLKIL结合位点上的丝氨酸残基结合,促进CXCR2的丝氨酸残基磷酸化,从而发挥其促癌细胞转移的作用。细胞多形性也是影响癌细胞转移能力的重要因素之一,IL-8-CXCR1/2信号通路可激活第一信使磷脂酰肌醇-3-羟激酶(Phosphatidy linesl 3-kinase,PI3K),进一步激活二磷酸磷脂酰肌醇(Phosphatidy inositol phospbate-2,PIP2)、三磷酸磷脂酰肌醇(Phosphatidy inositol phosphate-3,PIP3),促进微管蛋白乙酰化,使细胞更易于变形,穿过基底层细胞间隙,向其他组织器官转移[3]。

4IL-8-CXCR1/2信号通路与卵巢上皮癌组织的血管生成

2000年Salcedo等[19]研究表明内皮细胞上表达的CXCR1/2受体是介导血管生成的主要因素。Krzysztof等[20]将35名EOC腹腔转移患者的腹水进行离心,分别检测上清液和细胞沉淀物中IL-8的含量,并评价每个样本中肿瘤细胞的促血管生成能力:将分离所得的EOC细胞注射如小鼠体内,建立小鼠皮肤血管生成实验模型,结果表明IL-8在上清液中含量高,其浓度与肿瘤细胞促血管生成能力相关。基质金属蛋白酶-1(Matrix metalloprotease-1,MMP-1)是介导癌细胞转移的重要因子,研究表明IL-8-CXCR1/2信号通路的活化可促进MMP的合成与分泌,同时MMP通过激活蛋白酶激活受体-1(Protease activated receptor-1,PAR-1)又反向促进IL-8、GR0-α的分泌,最终可使新生血管及新生血管分支增加四倍,而外源性给予IL-8、GRO-α可促进生成新生血管23倍,血管增长13倍,如应用CXCR1/2受体阻滞剂X1/2pal-i3,可使新生血管生成减少68%,血管长度伸长减少58%[21]。目前表皮生长因子抑制剂(吉非替尼)已经在临床中用于非小细胞肺癌的治疗,并取得了显著疗效,故同样具有促血管生成作用的IL-8-CXCR1/2信号通路可能成为未来EOC治疗的新靶点。

5IL-8-CXCR1/2信号通路与卵巢上皮癌分型、分期的关系

IL-8-CXCR1/2信号通路对不同临床分期及不同病理类型EOC的影响并不相同。Browne等[21]分别对良性、交界性、恶性卵巢上皮性肿瘤组织中CXCR2的表达进行了研究,检测了115例卵巢上皮性肿瘤组织(其中良性21例;交界性25例;恶性69例:包括浆液性囊腺癌、透明细胞囊腺癌、子宫内膜样腺癌、黏液性囊腺癌四种亚型),分析CXCR2受体表达程度与EOC的病理分型、临床分期以及无进展生存年和总生存年的关系:CXCR2在肿瘤组织中的表达水平与恶性EOC的临床分期无明显关系,但在不同病理类型的恶性EOC中表达水平不同,主要在子宫内膜样腺癌(30%的病例中高表达)和浆液性囊腺癌(13.5%的病例中高表达)中高表达。有研究指出,血浆IL-8高水平提示进展期EOC,通过检测患者血浆中IL-8的表达水平可以预测进展期卵巢癌患者生存时间[23,24]。IL-8-CXCR1/2信号通路在EOC组织中的高表达常常和预后差[25]、化疗药物敏感性低相关,IL-8与EOC细胞上的受体CXCR1/2结合后,可以降低顺铂和紫杉醇抑肿瘤机制中半胱天冬蛋白-3(caspase-3)的活性,从而使EOC细胞产生耐药性。CXCR1/2的这种促耐药作用与多重耐药基因(MDR1)、凋亡抑制因子(Bcl-2、Bcl-xL、 XIAP)及PI3 K/Akt 、 Ras/MEK/ERK信号通路有关[14]。Meirong等[26]的研究表明CXCR1/2受体拮抗剂SB22500可以促进CDDP(顺氯氨铂)-耐药的EOC细胞株调亡,且诱导凋亡的程度与SB225002的浓度有关。

6小结及展望

IL-8-CXCR1/2信号通路是人体内重要的炎症反应信号通路,EOC组织作为患者体内异常组织,其与IL-8-CXCR1/2信号通路这一免疫炎症反应通路的相互作用值得探讨。已有大量实验研究表明在EOC患者的血浆中IL-8(以及其他CXCL1类与CXCR1/2结合的细胞因子)水平异常增高,且患者血浆中IL-8水平与EOC的临床分期及病理分型相关。IL-8-CXCR1/2信号通路可活化EGFR受体,进而激活APK信号通路促进EOC细胞增殖;通过调节TNF等炎性细胞因子的合成与分泌,建立肿瘤微环境,增强MMP活性,促进EOC细胞转移;同时增强EGF和MMP的活性都有利于肿瘤新生血管的生成。IL-8-CXCR1/2信号通路主要通过以上三种机制对EOC产生重要的影响。目前具有拮抗CXCR1/2受体作用的物质有X1/2pal-i3、CX43 38、SB225002、G31P,很多研究者已将CXCR2受体的拮抗剂应用于肿瘤治疗的研究中,如卵巢癌、横纹肌肉瘤[21,26-28]。此外IL-8-CXCR1/2信号通路作为一种炎症反应通路,其拮抗剂也可缓解其他抗癌药物的副作用,将有效的化疗药物与IL-8-CXCR1/2信号通路拮抗剂联合应用,可增强抑癌效果,同时减轻药物副作用,是近期卵巢癌治疗的新方向。在不同组织类型的EOC中,IL-8-CXCR1/2信号通路对肿瘤的影响不同,子宫内膜样腺癌中IL-8-CXCR1/2信号通路的活性最高,提示应针对病人的临床类型及分期进行个体化治疗,对于子宫内膜样腺癌EOC患者采取IL-8-CXCR1/2信号通路拮抗剂与其他敏感化疗药物联合应用的治疗方案。综上所述,IL-8-CXCR1/2信号通路不仅在EOC患者体内高表达,具有促进EOC细胞增殖、转移、促进EOC组织及其周围血管生成的作用,并且与其他化疗药物合用,可以减轻药物的副作用,因此,IL-8-CXCR1/2信号通路将成为未来卵巢癌治疗有效的新靶点。

参考文献:

[1]Wei J,Peng J,Wang B,etal.CXCR1/CXCR2 antagonism is effective in pulmonary defense against klebsiella pneumoniae infection[J].Bio Med Res Int,2013(2013):720975.

[2]Veenstra M,Ransohoff RM.Chemokine receptor cxcr2:Physiology regulator and neuroinflammation controller?[J].J Neuroimmunol,2012,246(1-2):1-9.

[3]Raman D,Sai J,Hawkins O,etal.Adaptor protein2 (ap2) orchestrates cxcr2-mediated cell migration[J].Traffic (Copenhagen,Denmark),2014,15(4):451-469.

[4]Dong YL,Kabir SM,Lee ES,etal.Cxcr2-driven ovarian cancer progression involves upregulation of proinflammatory chemokines by potentiating nf-kappab activation via egfr-transactivated akt signaling[J].PLoS one,2013,8(12):e83789.

[5]Muralidhar GG,Barbolina MV.Chemokine receptors in epithelial ovarian cancer[J].Int J Mole Sci,2014,15(1):361-376.

[6]Zhang H,Neuhofer P,Song L,etal.Il-6 trans-signaling promotes pancreatitis-associated lung injury and lethality[J]. J Clin Invest,2013,123(3):1019-1031.

[7]Dornelles FN,Andrade EL,Campos MM,etal.Role of cxcr2 and trpv1 in functional,inflammatory and behavioural changes in the rat model of cyclophosphamide-induced haemorrhagic cystitis[J].Bri J Pharmacol,2014,171(2):452-467.

[8]Li L,Khan MN,Li Q,etal.G31p,cxcr1/2 inhibitor,with cisplatin inhibits the growth of mice hepatocellular carcinoma and mitigates highdose cisplatin-induced nephrotoxicity[J].Oncol reports,2015,33(2):751-757.

[9]Yu J,Ren X,Chen Y,etal.Dysfunctional activation of neurotensin/il-8 pathway in hepatocellular carcinoma is associated with increased inflammatory response in microenvironment,more epithelial mesenchymal transition in cancer and worse prognosis in patients[J].PLoS One,2013,8(2):e56069.

[10]Cheng D,Kong H,Li Y.Prognostic value of interleukin-8 and mmp-9 in nasopharyngeal carcinoma[J].Eur Archives Otorhinolaryngol,2014,271(3):503-509.

[11]Grepin R,Guyot M,Giuliano S,etal.The cxcl7/cxcr1/2 axis is a key driver in the growth of clear cell renal cell carcinoma[J].Cancer Res,2014,74(3):873-883.

[12]Ivarsson K,Ekerydh A,Fyhr IM,etal.Upregulation of interleukin-8 and polarized epithelial expression of interleukin-8 receptor a in ovarian carcinomas[J].Acta obstetricia et gynecologica Scandinavica,2000,79(9):777-784.

[13]Wang Y,Xu RC,Zhang XL,etal.Interleukin-8 secretion by ovarian cancer cells increases anchorage-independent growth,proliferation,angiogenic potential,adhesion and invasion[J].Cytokine,2012,59(1):145-155.

[14]Wang Y,Qu Y,Niu XL,etal.Autocrine production of interleukin-8 confers cisplatin and paclitaxel resistance in ovarian cancer cells[J].Cytokine,2011,56(2):365-375.

[15]Bolitho C,Hahn MA,Baxter RC,etal.The chemokine cxcl1 induces proliferation in epithelial ovarian cancer cells by transactivation of the epidermal growth factor receptor[J].Endocrine-related cancer,2010,17(4):929-940.

[16]Dong YL,Kabir SM,Lee ES,etal.Cxcr2-driven ovarian cancer progression involves up-regulation of pro-inflammatory chemokines by potentiating NK-κB activation via EGFR-transactivated akt signaling[J].Bio Med Res Int,2013,2013:720975.

[17]Mikula-Pietrasik J,Sosinska P,Kucinska M,etal.Peritoneal mesothelium promotes the progression of ovarian cancer cells in vitro and in a mice xenograft model in vivo[J].Cancer Letters,2014,355(2):310-315.

[18]Zarogoulidis P,Katsikogianni F,Tsiouda T,etal.Interleukin-8 and interleukin-17 for cancer[J].Cancer Investigation,2014,32(5):197-205.

[19]Salcedo R,Resau JH,Halverson D,etal.Differential expression and responsiveness of chemokine receptors (cxcr1-3) by human microvascular endothelial cells and umbilical vein endothelial cells[J].FASEB,2000,14(13):2055-2064.

[20]Gawrychowski K,Szewczyk G.The angiogenic activity of ascites in the course of ovarian cancer as a marker of disease progression[J]. Disease Markers,2014,Doi:10.1155/2014/683757.

[21]Agarwal A,Tressel SL,Kaimal R,etal.Identification of a metalloprotease-chemokine signaling system in the ovarian cancer microenvironment:Implications for antiangiogenic therapy[J].Cancer Res,2010,10(14):5880-5890.

[21]Browne A,Sriraksa R,Guney T,etal.Differential expression of il-8 and il-8 receptors in benign,borderline and malignant ovarian epithelial tumours[J].Cytokine,2013,64(1):413-421.

[23]Bonneau C,Rouzier R,Geyl C,etal.Predictive markers of chemoresistance in advanced stages epithelial ovarian carcinoma[J].Gynecologic oncol,2015,136(1):112-120.

[24]Trabert B,Pinto L,Hartge P,etal.Pre-diagnostic serum levels of inflammation markers and risk of ovarian cancer in the prostate,lung,colorectal and ovarian cancer (plco) screening trial[J].Gynecologic oncol,2014,135(2):297-304.

[25]Yang G,Rosen DG,Liu G,etal.Cxcr2 promotes ovarian cancer growth through dysregulated cell cycle,diminished apoptosis,and enhanced angiogenesis[J].Clin Cancer Res,2010,16(15):3875-3886.

[26]Du M,Qiu Q,Gruslin A,etal.Sb225002 promotes mitotic catastrophe in chemo-sensitive and -resistant ovarian cancer cells independent of p53 status in vitro[J].PLoS One,2013,8(1):e54572.

[27]Ha H,Bensman T,Ho H,etal.A novel phenylcyclohex-1-enecarbothioamide derivative inhibits cxcl8-mediated chemotaxis through selective regulation of cxcr2-mediated signalling[J].Bri J Pharmacoly,2014,171(6):1551-1565.

[28]Liu X,Peng J,Sun W,etal.G31p,an antagonist against cxc chemokine receptors 1 and 2,inhibits growth of human prostate cancer cells in nude mice[J].Tohoku J Exp Med,2012,228(2):147-156.

[收稿2015-06-21修回2015-08-11]

(编辑许四平)

doi:10.3969/j.issn.1000-484X.2016.06.031

作者简介:王开南(1994年-),女,在读硕士,主要从事细胞因子与肿瘤研究,E-mail:854624115@qq.com。

通讯作者及指导教师:李芳(1958年-),女,博士,教研室主任,教授,博士生导师,辽宁省免疫学会常务理事,博士,主要从事细胞因子在疾病中的作用研究。

中图分类号R392.3

文献标志码A

文章编号1000-484X(2016)06-0904-04

①本文为国家自然科学基金(30772023)资助项目。

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