宋 晶 郭家娟 李相军崔英子 魏 岩 (长春中医药大学附属医院,吉林 长春 3002)
不同浓度的糜酶对自发性高血压大鼠心肌肥厚细胞的构建
宋晶郭家娟李相军1崔英子魏岩(长春中医药大学附属医院,吉林长春130021)
〔摘要〕目的探讨糜酶对自发性高血压大鼠(SHR)心室肥厚模型的最佳诱导时间及浓度。方法将肥厚心肌细胞分为对照组(加无血清DMEM培养液)和实验组。实验组分别给予糜酶(chymase)7. 5、15、30和60 μg/L 4个浓度组,分别培养24、48 h,诱导小鼠心肌细胞肥大,测定培养液中AngⅡ浓度、β-actin和ANP基因表达以评价模型是否成功。结果实验组中糜酶浓度为30 μg/L,培养48 h后培养液中AngⅡ浓度明显高于对照组(P<0. 05);并且糜酶浓度为30 μg/L,培养48 h后培养液中细胞β-actin和ANP基因表达高于对照组(P<0. 05)。结论糜酶浓度在30 μg/L、培养48 h为诱导SHR心肌肥厚的最佳浓度及时间。
〔关键词〕糜酶;自发性高血压大鼠;心肌肥厚
1吉林大学药学院
第一作者:宋晶(1987-),女,在读硕士,主要从事心血管疾病研究。
左心室肥厚是原发性高血压(EH)导致靶器官损伤中最严重的类型,会引发恶性心律失常、心肌梗死、心衰等连锁反应。研究表明,抑制左心室肥厚会抑制这种连锁反应的发生,从而减少心血管事件的发病率和死亡率〔1〕。肾素-血管紧张素系统(RAS)在调节容量超负荷或压力超负荷导致的心肌肥厚中起重要作用〔2〕;心肌细胞肌蛋白合成,导致心肌细胞肥大,从而发生心肌肥厚。血管紧张素(Ang)Ⅱ是目前最强的促心肌细胞肌蛋白合成因子〔3〕。而在心脏组织中,糜酶(Chymase)是AngⅡ形成的主要酶类之一,β-actin和ANP基因表达为心肌肥厚的重要标志。检测AngⅡ及相关信号分子基因、蛋白的表达,多层次、多角度系统研究糜酶AngⅡ途径干预心室肥厚机制,可以进一步丰富以心室肥厚为重要病理环节的心血管治疗研究思路。
1. 1材料纯化肥大细胞糜酶(Merck公司); AngⅡ放射免疫
分析试剂盒(上海伟寰生物科技有限公司);心肌细胞株H9c2(上海艾研生物科技有限公司);血清DMEM培养液(上海杰美基因医药科技有限公司)
1. 2方法将大鼠心肌细胞分为对照组(加无血清DMEM培养液)和不同剂量糜酶刺激组,后者将糜酶加入到无血清DMEM培养液中致糜酶终浓度为7. 5、15、30和60 μg/L,分别培养24 h和48 h后检测各组培养上清AngⅡ含量及细胞β-actin和ANP基因表达。
1. 2. 1 AngⅡ浓度测定用AngⅡ放射免疫分析试剂盒测定。将细胞(105个/孔)接种于24孔板,培养48 h,每孔吸取800 μl培养液,加入装有20 μl预冷的糜酶培养液(浓度分别为7. 5、15、30和60 μg/L)的管中,离心5 min(4℃,300 r/min),取上清液,采用AngⅡ放射免疫分析试剂盒测定。
1. 2. 2采用逆转录Real-time PCR法检测各组细胞β-actin、ANP基因
1. 2. 2. 1 PCR反应引物ANP基因:正向序列5'-gga gcc tgc gaa ggt caa-3',反向序列5'-tat ctt cgg tac cgg aag ctg t-3';β-actin:正向序列5'-ccc gcg agt aca acc ttc t-3',反向序列5'-cgt cat cca tgg cga act-3'。
1. 2. 2. 2提取心肌细胞总RNA使用0. 25%胰蛋白酶-EDTA对心肌细胞进行消化后,Hank液重悬细胞并转至10 ml离心管中;悬浮培养细胞则直接转到离心管中; 2 000 r/min离心10 min;加入Hank液,再离心、洗涤各两次,去除上清液,冰浴(之后各项操作均在冰浴中进行)。收获细胞(5×106/L),并将其移入到1. 5 ml Ep管内。加入1 ml TRIzol试剂,混合均匀,放置于室温中5 min;加入0. 2 ml氯仿,振摇时间为15 s,室温下放置3 min; 4℃、10 000 r/min离心5 min,吸取上层水相转移至新Ep管中,加入0. 5 ml的异丙醇,放置于室温中10 min; 4℃条件下进行低温离心,10 000 r/min离心10 min,加入75%的1 ml乙醇,进行摇振,再对其充分洗涤和沉淀,4℃、5 000 r/min离心5 min,弃上清液,真空干燥处理,沉淀重悬于100 μl的无RNase水中。保存于-70℃条件下备用;并用紫外分光光度计检测RNA浓度和纯度。
1. 2. 2. 3 PCR扩增依照PCR反应试剂盒说明书步骤操作,将上游引物和下游引物各1 μl,Superscript/Tag混合物1 μl,待测RNA 1 μg,纯水50 μl混合均匀,再加入30 μl石蜡。反应条件: 55℃15 min,94℃12 min,1个循环; 94℃15 s,55℃30 s,72℃1 min,35个循环; 72℃10 min,1个循环。
1. 2. 2. 4 PCR产物电泳制取1. 5%琼脂糖凝胶(含溴乙锭0. 3 mg/ml),取PCR产物10 μl进行电泳,电泳后将凝胶取出,将其放置于紫外分析仪内进行观察并对其进行定量分析,用待测基因/GAPDH比值代表待测ANP基因和β-actin mRNA的相对水平。
1. 3统计学方法采用SPSS18. 0软件行单因素方差分析、t检验。
糜酶浓度为30 μg/L,培养时间24 h、48 h时,AngⅡ浓度与对照组比较均有显著差异(P<0. 05),同浓度糜酶培养48 h与培养24 h AngⅡ浓度比较有统计学意义(P<0. 05);糜酶浓度为30 μg/L,培养时间24 h、48 h时,细胞中β-actin、ANP的含量与对照组比较均有显著差异(P<0. 05);相同浓度糜酶培养48 h与培养24 h,细胞中ANP含量比较有统计学意义(P<0. 05)。见表1。
表1 测得培养液中AngⅡ、β-actin、ANP的浓度(x±s)
RAS系统在调节前后负荷导致的心肌肥厚中起重要作用〔2〕,其中AngⅡ占主导地位。近年来研究证实,人类心肌局部AngⅡ主要来源于血管紧张素转换酶(ACE)和糜酶两条途径,在人体心脏80%的AngⅡ通过糜酶产生。多项研究证实,糜酶在心室肥厚、心肌纤维化及心衰的发生、发展中起重要作用〔4〕。大量研究表明,β-actin作为Wnt/β-actin信号通路的关键成员在介导信号转导过程中调控细胞的增殖和凋亡〔5〕。ANP基因表达为心肌肥厚的重要标志,在正常心肌组织中表达量很低,如果检测到其表达量明显增加,为病理性心肌肥大的可靠指标。本研究同时以β-actin和ANP基因两种指标作为研究对象,使研究结果更加严谨可靠。而实验结果说明不同浓度的糜酶刺激心肌细胞,使细胞内AngⅡ浓度增高,细胞中肥大基因(β-actin、ANP)表达,导致心肌细胞肥大。而细胞内AngⅡ浓度、β-actin与ANP的基因表达与糜酶浓度以及培养时间密切相关。通过测定实验指标,糜酶浓度在30 μg/L、培养48 h时,为最佳诱导浓度及时间。
左心室肥厚为高血压患者中最常见的并发症之一,严重影响人类的生活质量,将血压维持在正常水平,可有效减少并发症;去除引起并发症的诱因,可减少并发症的发生,同时亦可通过此法,将血压维持在正常水平。本实验为临床上治疗高血压、减少高血压引起的心肌肥厚提供了良好的理论依据。
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〔2015-02-19修回〕
(编辑徐杰)
通讯作者:郭家娟(1978-),女,博士,副主任医师,硕士生导师,主要从事心血管疾病研究。
基金项目:教育部科学技术研究重点项目(211041)
〔文章编号〕1005-9202(2015)20-5751-02;
doi:10. 3969/j. issn. 1005-9202. 2015. 20. 030
〔文献标识码〕A
〔中图分类号〕R544