王 彬,李晓齐,曹 红,陈福勇,王永强,郑世军
(中国农业大学动物医学院 农业生物技术国家重点实验室,北京 海淀 100193)
禽白血病J亚群病毒GP85蛋白单克隆抗体的制备与鉴定
王 彬,李晓齐,曹 红,陈福勇,王永强,郑世军
(中国农业大学动物医学院 农业生物技术国家重点实验室,北京 海淀 100193)
为制备能够区分禽白血病A亚群和J亚群病毒的单克隆抗体,将J亚群病毒gp85基因构建到原核表达载体上,并在大肠杆菌BL21中表达携带His标签的禽白血病J亚群GP85融合蛋白,用复性纯化的融合蛋白作为免疫原免疫BALB/c小鼠。4次免疫后取免疫小鼠的脾细胞与骨髓瘤细胞(SP2/0)进行融合,经过3次亚克隆后获得1株稳定分泌针对GP85蛋白的杂交瘤细胞株,命名为3B6。经间接ELISA测定,小鼠腹水效价为6.4×105,亲和力解离常数(kD)为2.18× 10-9,这株单抗的亚型为IgG1。通过Western Blot和IFA实验证实该株单抗是针对J亚群病毒蛋白GP85的特异性抗体。初步确定此株单克隆抗体的抗原识别区位于GP85蛋白N端的1-50位氨基酸。该株单抗的制备为ALV-J病毒抗原检测以及致病机理的研究奠定了基础。
禽白血病病毒;GP85;单克隆抗体
J亚群禽白血病是由J亚群禽白血病病毒引起的一类以生长抑制、免疫抑制和骨髓细胞癌变为特征的传染性肿瘤性疾病[1],主要引起肉鸡的骨髓细胞瘤[2]。J亚群禽白血病自1988年首次发现以来在世界范围内广泛传播[3]。经垂直传播感染的雏鸡容易发生免疫抑制,降低其对其他病原的抵抗力和疫苗的免疫效果,引起更严重的危害[4]。
Pol基因编码病毒的整合酶与反转录酶;env基因编码病毒囊膜蛋白GP85和GP37。GP85为病毒囊膜表面糖蛋白,通过与宿主细胞表面的受体结合引起GP37构象的改变,进而引起病毒与宿主细胞的膜融合[9]。同时gp85基因编码的蛋白是禽白血病
J亚群病毒的特异性抗原蛋白,可以作为检测禽白血病J亚群病毒特异性抗体的诊断抗原[10]。各种亚型禽白血病病毒的gag和pol同源性为96%~97%,而A-E亚群病毒与J亚群病毒在gp85基因上的同源性为40%左右[11],这为制备可以用于区分临床常见的外源性禽白血病病毒ALV-A和ALV-J提供了可能。本研究成功制备抗J亚群病毒GP85蛋白的单克隆抗体,可以用于鉴别ALV-A和ALV-J病毒,并且为进一步研究ALV的致病机理奠定了基础。
1.1 质粒、菌种、毒株、细胞与实验动物 质粒pGEX-6P-1-gp85、pET-32a-gp85,ALV-J gp85基因,GP85-His,GP85-GST,DH5-α、BL21,DF-1细胞、SP2/0细胞、禽白血病J亚群病毒CAUHM01株和A亚群病毒BJY01株均由本实验室保存;6-8周龄雌性BALB/c小鼠,购自北京维通利华实验动物技术有限公司。
1.2 主要试剂及仪器 限制性内切酶、LA Taq酶和DNA连接酶,购自TaKaRa公司;His单克隆抗体;高纯单克隆抗体、抗GST单克隆标体,购自Abmart公司;山羊抗小鼠IgG二抗,购自北京鼎国昌盛生物技术有限责任公司;兔抗鸡IgG二抗,购自北京博奥森生物技术有限公司;DMEM高糖培养基,购自Gibco公司;标准胎牛血清,购自Hy⁃clone公司;弗氏完全佐剂、弗氏不完全佐剂、HAT、HT和 Mouse Monoclonal Antibody Isotyping Reagents,均购自Sigma公司;Centrifuge5810R型低温冷冻高速离心机,购自Eppendorf公司;Alpha ImagerTM2200型凝胶成像分析仪,购自美国Alpha公司;KoDak医学X光显影机102型,购自美国KoDak公司;Sunrise 96孔酶标仪,购自TECAN公司;XDS-1B倒置显微镜,购自重庆光学仪器厂。
1.3 抗GP85单克隆抗体的制备 用纯化得到的GP85-His蛋白免疫小鼠[14]。小鼠血清效价大于1∶10 000时,无菌状态下取免疫小鼠的脾脏,分离脾细胞与SP2/0细胞融合,随后进行阳性克隆筛选、亚克隆[15]。
1.4 抗GP85单克隆抗体的鉴定
1.4.1 单克隆抗体亚型鉴定 按照Sigma公司的Mouse Monoclonal Antibody Isotyping Reagents鉴定试剂盒说明书进行亚型鉴定。
1.4.2 单克隆抗体特异性鉴定 诱导表达ALVGP85、CIAV-VP2、REV-GP90、IBDV-VP4、ARV-V原核蛋白并进行SDS-PAGE电泳,以制备的抗GP85单抗为一抗,进行Western Blot检测。
1.4.3 单克隆抗体亲和力鉴定 参照文献[16]进行亲和力解离常数(kD)的测定。
1.4.4 Western Blot鉴定 将DF-1细胞以5×104个/孔接种于24孔板中,待细胞密度达到30%~40%时,以ALV-J或ALV-A病毒接种细胞,并设置相应的阴性对照。7 d后收取细胞裂解总蛋白,进行Western Blot鉴定。
1.4.5 间接免疫荧光试验(IFA)鉴定 按照1.4.4所述方法进行病毒感染,参照文献[17]进行间接免疫荧光试验。
1.4.6 抗原识别区分析 将gp85基因按180个碱基的间距分别从N端和C端进行截短,构建到pET-28a载体上,进行原核表达。用Western Blot方法鉴定3B6株单抗抗原表位识别区域。
2.1 抗GP85单克隆抗体的制备与亚型鉴定 小鼠经3次免疫,用间接ELISA方法测定小鼠血清效价为1∶12 800。加强免疫后,取免疫小鼠的脾细胞与SP2/0细胞进行融合,经过3次亚克隆,获得1株能稳定分泌抗GP85早抗的杂交瘤细胞株,命名为3B6。将杂交瘤细胞注射到经产BALB/c母鼠腹腔内制备腹水,间接ELISA测定小鼠腹水效价为6.4×105,用Sigma公司的ELISA亚型鉴定试剂盒检测表明,此株单克隆抗体的亚型为IgG1。
2.2 抗GP85单克隆抗体特异性检测与亲和力鉴定 抗GP85单克隆抗体可以识别ALV-GP85蛋白,不识别CIAV-VP2、REV-GP90、IBDV-VP4、ARV-σB蛋白(图1A),表明获得的单克隆抗体具有良好的特异性。亲和力检测结果表明,此株单抗的亲和力解离常数(kD)为2.12×10-9(图1B),属于高亲和力的单抗。
2.3 抗GP85单克隆抗体识别ALV-JGP85蛋白
用Western Blot方法检测ALV-J感染DF-1细胞(图2A),试验结果表明,该株单抗能特异性识别ALV-J亚群病毒感染细胞产生的GP85蛋白。以间接免疫荧光试验检测,结果同样表明该株单抗能特异性识别ALV-J亚群病毒感染DF-1细胞产生的GP85蛋白,不能识别ALV-A亚群病毒感染DF-1细胞产生的GP85蛋白(图2B)。以上试验结果表明,3B6株单抗能较好的区分ALV-J亚群和A亚群病毒。
图1 抗GP85单克隆抗体特异性和亲和力测定A:单克隆抗体的特异性分析;B:3B6株单抗亲和力测定
图2 单抗3B6株识别ALV-J感染产生的GP85蛋白A:禽白血病J亚群GP85蛋白的Western Blot检测;B:禽白血病J亚群和A亚群病毒GP85蛋白的IFA检测
2.4 单克隆抗体抗原识别区的确定 用抗His标签抗体作为一抗,Western Blot检测表明GP85截短蛋白均可以表达(图3B)。以3B6单克隆抗体为一抗,通过Western Blot分析3B6株抗体识别的抗原表位所在区域为GP85蛋白N端第1-50位氨基酸(图3C、D)。
禽白血病J亚群自从20世纪80年代被发现以来,表现出很强的流行性和致病性。西方国家在禽白血病的净化上取得了很大成功[18],然而禽白血病在我国却长期存在,目前不仅在肉鸡中存在广泛传播,并且在产蛋鸡群中也出现了流行[19]。禽白血病目前没有有效的疫苗,也无特效的治疗药物,对白血病进行快速检测就显得尤为重要。我国流行的禽白血病主要由A、B亜群和J亚群病毒引起,近几年J亚群禽白血病出现流行趋势增强及危害程度日趋严重的状况[20]。为解决这些问题,我们针对ALVJGP85蛋白制备单克隆抗体,探索建立快速检测禽白血病的方法,并区分A亚群和J亚群禽白血病病毒。
禽白血病的A、B、C、D、E、J6个亚群的gag和pol基因高度保守,同源性在90%[21]以上,而env基因的同源性在40%左右[22],并且env中的gp85基因编码的蛋白是禽白血病J亚群的特异性抗原蛋白[23],所以我们研制禽白血病J亚群特异性抗体时选择了GP85蛋白。虽然国内很多实验室都成功研制了抗GP85蛋白的单克隆抗体[24-27],但gp85基因存在易发生变异的2个高变区和3个可变区,同时GP85蛋白存在多个抗原表位,再者不同抗体的亲和力不同,使用范围和目的也就不同,因此制备针对不同毒株GP85蛋白的单克隆抗体仍具有重要意义。
图3 单抗抗原表位识别区分析A:gp85基因截短模式图(△1-△6);B:抗His标签单克隆抗体检测GP85截短蛋白的表达;C:抗GP85单克隆抗体检测抗体识别区;D:抗GP85单克隆抗体识别区模式图
我们将克隆的ALV-J gp85基因与NCBI上传的20个ALV-A gp85基因进行序列比对,发现同源性在30%~40%,氨基酸同源性高的区域主要集中在gp85基因的N端和C端。为了保证GP85蛋白的免疫活性,我们在表达GP85蛋白免疫小鼠时并没有将GP85蛋白进行截短表达,而是在表达筛选蛋白GP85-GST时去除了N端50个和C端30个与禽白血病A亚群病毒同源性较高的氨基酸序列,保证除去与禽白血病A亚群GP85蛋白有连续4个氨基酸以上相同的氨基酸序列,这样筛选出的单克隆抗体不会识别与ALV-A GP85相同的抗原表位,进一步保证了研制的单克隆抗体的群特异性。IFA检测结果也表明,该株单抗可以很好的区分ALV-A病毒和ALV-J病毒。本研究并对所制备的抗GP85单克隆抗体的亚型、特异性、亲和力和抗原表位做了详细分析,为ALV致病机理的研究以及快速检测试剂盒的研发奠定了基础
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Development and identification ofmonoclonalantibodies against Avian Leukosis Virus(ALV)subgroup JGP85
WANG Bin,LIXiao-qi,CAOHong,CHEN Fu-yong,WANG Yong-qiang,ZHENG Shi-jun
(State Key Laboratory of Agrobiotechnology,College of VeterinaryMedicine,China AgriculturalUniversity,Beijing 100193,China)
To develop monoclonal antibodies(McAbs)that can distinguish avian leukemia subgroup A virus from subgroup J virus,we cloned gp85 gene into prokaryotic expression vectors pET-32a and pGEX-6P-1.The expression vectors were transformed into E.coli BL21 for expression of GP85.The purified and refolded fusion protein GP85-Hiswas used as an immunogen to vacci⁃nate BALB/cmice.Then,we fused myeloma cells SP2/0 with splenocytes from the immunized BALB/cmice after four times of im⁃munization.A fter three rounds of subcloning,we obtained a hybridoma cell clone that stably secreted McAbs against GP85 and named 3B6.Antibody titers were 6.4×105as examined by indirect ELISA in ascite fluid ofmice inoculated intraperitoneally with monoclonal antibody-producing hybridoma cells.The dissociation constant(kD)of themonoclonal antibody was determined to be 2.18×10-9and the isotypewas IgG1.Specific recognition of GP85 by anti-GP85monoclonal antibodywas validated by Western Blot and indirect Fluorescence Antibody assay.The epitope in GP85 thatwas recognized by 3B6 was located between 1 to 50 aa as dem⁃onstrated by Western Blot.The McAb will be helpful to the examination of ALV-J antigen and to elucidate the pathogenesis of ALV.
ALV;GP85;monoclonalantibody
s:WANG Yong-qiang;ZHENG Shi-jun
S852.65+9.3
A
0529-6005(2015)11-0023-04
2014-08-04
国家自然科学基金(#31272543);现代农业产业技术体系建设专项资金(#NYCYTX-41)
王彬(1988-),男,博士生,主要从事病原与宿主相互作用机制的研究,E-mail:6942362@163.com
王永强,E-mail:vetwyq@cau.edu.cn;郑世军,E-mail:sjzheng@cau.edu.cn