血液不合格标本的分析及对策

王 光，董 莉

（内蒙古医科大学附属医院检验科，内蒙古呼和浩特010050）

随着科技的发展，大多实验室已经具有了先进的分析仪器、完善的分析中、后阶段的管理方法和体系。但分析前阶段的影响因素却难以掌握和控制。在试验误差中，分析前误差占46%～68%［1］。因此，分析前质量控制对减少试验误差起决定性作用。在所有标本中，由于血液标本的特殊性，标本量大（几乎占全部标本的90%），为有创检查。因此，血液标本的质量尤为重要［2］。就此，笔者对本科室2009年1月至2011 年12月共2 457 800份血标本中的8 482份不合格标本进行回顾性分析，旨在探讨降低标本不合格率的对策。

1 资料与方法

1.1 一般资料 所有血液标本来源于本院2009 年1 月至2011年12月的各病房住院患者，排除肉眼可见有凝块的抗凝血，可能为不合格标本的待离心后决定。标本所涉及检验项目覆盖全部检验项目。

1.2 方法

1.2.1 不合格标本分类 包括凝血标本（显性凝血标本、隐性凝血标本）、溶血标本、血细胞附壁、脂血标本、用错容器的标本、量少等几类。

1.3 统计学处理 应用SPSS13.0软件进行统计分析，年度总不合格标本量的比较，采用t检验，P＜0.05为差异有统计学意义；相同因素导致的不合格率的比较，采用χ2检验；P＜0.05为差异有统计学意义。

2 结 果

2.1 不合格标本类型的分布 按照不合格原因所占比例由大到小，依次为凝血标本、溶血标本、用错容器、脂血、量少，见表1。

表1 血液不合格标本的类型分布

2.2 三年来不合格标本的变化趋势 三年来不合格标本的不合格率呈逐年下降的趋势，见表2；导致不合格标本的原因的构成比例有所变化，用错容器、脂血、量少所占百分率各年份间比较差异有统计学意义（P＜0.05）。见表3。

表2 年度总不合格标本量

表3 相同因素导致的不合格量的比较［n（%）］

2.3 不合格标本形成的时段分布 全年不合格率为0.32%左右，但以2、9月最高，分别为0.38%、0.42%，见图1。

图1 不合格标本形成的时段分布图

3 讨 论

3.1 不合格标本产生原因的分析 标本凝集主要原因是血液标本分装量超过了采血管标示的容量，导致抗凝剂剂量不足；血液黏度高的患者，选择的采血针型号过小［3］，采血速度过慢，抗凝管没有混匀，混匀方式错误等。溶血的主要原因是血液采集量不足，采血管的内剩余负压造成血细胞被压迫而被破坏；用注射器采血转装于真空采血管时，未卸下针头（血液在一定压力下，通过狭小的针头时受挤压，血细胞变性或破裂）；抗凝管在混匀时方法不得当，破坏血细胞；使用干粉抗凝剂的接触面处溶解热核反应热过高导致细胞破裂。血细胞附壁的原因是离心力相对过小或离心时间短。对此标本一般是加大离心力和延长离心时间，而不作为不合格标本退回，因此不分析不合格率。脂血标本是患者脂类代谢紊乱或采血前三日内食高脂肪饮食。

3.2 血液不合格标本对结果影响 凝血标本主要影响各种凝血因子的测定、纤维蛋白定量以及血细胞分析，使血小板极度下降，红细胞、白细胞计数下降。溶血标本主要影响红细胞内外浓度悬殊的测定，如钾离子。由于新生儿和婴幼儿静脉采血困难，容易造成标本溶血，容易干扰血清中钾离子浓度、镁离子浓度、心肌酶谱等多种生化指标的检测，造成结果的假性增高［4－6］；以辣根过氧化物酶作为标记物的实验，可因为该酶作用于具酶活性的血红蛋白因导致非特异性显色，从而出现假阳性［7］，如酶陪免疫吸附法（ELISA）法测定乙肝表面抗原（HbsAg）等。脂血标本检测会使采用比浊方法的测定结果升高，原因是乳糜微粒增加了浊度。分析前质量控制不仅是现代实验室的重要工作内容之一，而且也是医院质量管理体系的一个重要组成部分。检验人员的非可控性、辨别质量缺陷的隐蔽性、错误结果责任的难确定性是质量管理保证的特点［8］。这些因素可直接影响检验结果的准确性和可靠性，进而造成患者生理和心理伤害，延长诊疗周期，延误诊断时机，减低患者的满意度和增加医疗成本。就此次不合格标本的分析，笔者有针对的提出以下策略。（1）对自身工作的改进。首先加强业务学习和搞好培训工作，在对临床做好宣传的同时更要提高服务意识，建立详细的标本接收手续，严格遵守《不合格标本拒收制度》，并做好解释工作。（2）加强对医护人员的培训。护理人员是检验标本分析前操作过程中的主要执行者，因此护理人员必须了解生物学、采血因素到标本运输、储存等多种非疾病因素对检验结果的影响［9］。这就需要对护理人员进行专门培训，定期讲授相关知识，让她们熟悉不同检验项目采集标本的具体要求；特别是针对每年2、9月不合格标本高发时段，对新进临床的员工、实习生有针对性地进行培训，加强护士的静脉采血技术，提高其静脉采血技能和采血的成功率，特别是加强对年轻护士操作技能的锻炼，从而避免标本的采集量不足、抗凝标本凝块、溶血等不合格标本的产生［10］。

3.3 加强与临床沟通 主动走出实验室，深入临床科室，加强沟通，特别是了解采集情况，对临床正确采集标本进行指导和帮助［11］。通过以上方法的实施，三年来不合格量逐渐下降；并且通过对医护人员的培训，在抗凝剂的使用上效果最为明显，使容器使用不合格标本量明显下降；脂血、量少的不合格率也下降；但凝血标本下降不明显，溶血标本基本未改变，就其原因可能包括患者自身因素和器材使用有关的因素。

总之，为建立分析前阶段质量保证提供保障。在实际工作中，检测前的质量控制很重要，标本的规范化采集又是结果准确性的保证，但对标本的采集又偏偏难以控制。所以说临床检验的全面质量管理，已不仅局限于测定中的质量控制，更重要的是分析前的质量控制。

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