不同品质鱼粉对黄颡鱼幼鱼生长性能、饲料利用及肝脏抗氧化能力的影响

黄文文 李 弋 周歧存

(宁波大学海洋学院,鱼类营养实验室，宁波315211)



不同品质鱼粉对黄颡鱼幼鱼生长性能、饲料利用及肝脏抗氧化能力的影响

黄文文 李 弋 周歧存*

(宁波大学海洋学院,鱼类营养实验室，宁波315211)

本试验旨在探讨不同品质鱼粉对黄颡鱼幼鱼生长性能、饲料利用及肝脏抗氧化能力的影响。试验选用初始体重为(0.90±0.02) g的黄颡鱼幼鱼270尾，随机分为3组，每组3个重复，每个重复放养30尾。3组试验鱼分别投喂添加进口鱼粉(秘鲁蒸汽鱼粉)、国产鱼粉(山东荣成鱼粉)、混合鱼粉(进口鱼粉∶国产鱼粉=1∶1)的等氮等脂试验饲料，进行为期10周的投喂试验。结果表明：国产鱼粉组黄颡鱼幼鱼的增重率和特定生长率最高，混合鱼粉组次之，进口鱼粉组最低，3组间差异显著(P<0.05)。各组黄颡鱼幼鱼的饲料效率、蛋白质效率、肥满度、肝体比及脏体比无显著差异(P>0.05)。血清中总胆固醇含量以混合鱼粉组最高，显著高于进口鱼粉组(P<0.05)，进口鱼粉、混合鱼粉组血清中高密度脂蛋白含量显著高于国产鱼粉组(P<0.05)，进口鱼粉组血清中低密度脂蛋白含量显著低于混合鱼粉、国产鱼粉组(P<0.05)。血清总蛋白、葡萄糖、甘油三酯含量及碱性磷酸酶活性各组间无显著差异(P>0.05)。进口鱼粉组肝脏超氧化歧化酶、过氧化氢酶和谷胱甘肽过氧化物酶活性及丙二醛含量显著高于国产鱼粉组(P<0.05)，而肝脏总抗氧化能力在各组间无显著差异(P>0.05)。混合鱼粉组黄颡鱼幼鱼肌肉多不饱和脂肪酸含量显著高于进口鱼粉、国产鱼粉组(P<0.05)，而肌肉饱和脂肪酸与单不饱和脂肪酸含量各组间无显著差异(P>0.05)。由此得出，在本试验条件下，相对于进口鱼粉，饲料中添加国产鱼粉可以提高黄颡鱼幼鱼的生长性能和肝脏抗氧化能力；投喂混合鱼粉有助于黄颡鱼幼鱼肌肉中多不饱和脂肪酸的积累。

黄颡鱼；鱼粉；生长性能；肝脏抗氧化能力；脂肪酸

黄颡鱼(Pelteobagrusfulvidraco)属鲶形目，鲿科，黄颡鱼属，俗称黄姑鱼、黄骨鱼等，属温水性底层鱼类，其含肉率高、肉质细嫩、无肌间刺、味道鲜美、营养丰富，是我国常见的淡水经济鱼类，深受人们的喜爱，近年来我国的养殖规模不断扩大[1]。鱼粉因其蛋白质含量高，氨基酸、脂肪酸、维生素和矿物质含量丰富，适口性好，易被水产动物消化吸收等优点被广泛应用于水产饲料中，是养殖鱼类饲料的主要蛋白质来源[2-4]。近年来，由于鱼粉资源短缺造成价格上涨，在保证养殖动物正常生长的前提下，水产饲料为降低成本不得不降低饲料中鱼粉的添加量。因此，养殖鱼类饲料中所添加的鱼粉质量有保证至关重要，这使得开展鱼粉品质对黄颡鱼生长、饲料利用等影响的研究更加具有意义。

较其他蛋白质源而言，鱼粉具有营养成分齐全和含量均衡等优点，但不同鱼粉间其品质不同。影响鱼粉质量的因素很多，也较复杂。首先，原料鱼的种类决定了鱼粉的常规营养成分及色泽，选择不同种类的鱼原料，鱼粉的质量也不同[5-6]。其次，原料的新鲜度对鱼粉的质量有很大的影响，有研究认为，在鱼虾饲料中鱼粉生物胺的总量不宜超过2 000 mg/kg，生物胺的产生会对养殖动物产生不良影响[7]。再次，鱼粉的加工工艺及储存条件对鱼粉中蛋白质和脂肪含量有着显著的影响，有研究表明，用品质较好的低温干燥鱼粉投喂鲑鳟类，可以明显促进鲑鳟类的生长且蛋白质消化率高于高温干燥鱼粉[8]，研究者在半滑舌鳎[9]、金头鲷[10]和大菱鲆鱼[11]中也有相同的发现。但有研究认为鱼粉的加工温度对虹鳟和大鳞大麻哈鱼的生长无影响[12]。此外，还有其他因素导致鱼粉质量的差异，研究发现，大西洋鲽[13]、大菱鲆[14]、金头鲷[15]和狼鳚[16]等养殖鱼类饲料中用高新鲜度的鱼粉，其生长和饲料利用效率高于用中、低等新鲜度的鱼粉。目前，对饲料中添加国产鱼粉与进口鱼粉比较的研究较少，因此，本试验比较了国产鱼粉和进口鱼粉对黄颡鱼幼鱼生长、饲料利用、肌肉脂肪酸组成和肝脏抗氧化酶活性等指标的影响，为黄颡鱼饲料中鱼粉的选用提供参考，并为配合饲料鱼粉新鲜度的评价和安全投喂提供基础资料。

1 材料与方法

1.1 试验饲料

本试验所选进口鱼粉为秘鲁蒸汽鱼粉，国产鱼粉为山东荣成鱼粉。2种鱼粉营养成分及新鲜度指标见表1。以鱼粉、菜籽粕、豆粕、玉米蛋白粉为蛋白质源，鱼油和豆油为脂肪源，并补充维生素和矿物质等配制成3种等氮等脂的饲料(粗蛋白质含量为40.00%，粗脂肪含量为8.00%)。3种试验饲料中鱼粉分别为进口鱼粉、混合鱼粉(进口鱼粉∶国产鱼粉=1∶1)、国产鱼粉，并分别标记为PFM、PFM-LFM和LFM，试验饲料组成及营养水平见表2，试验饲料氨基酸组成见表3。饲料原料均粉碎后过60目筛，按照表2配方称取各种饲料原料，微量添加成分采取逐级稀释法混合均匀，添加35%左右的水混匀后，压制成粒径分别为2和3 mm的颗粒饲料。自然风干至含水量约10%，分组收入封口袋置于-20 ℃冰柜冷冻保存备用。

1.2 试验对象及饲养管理

饲养试验于宁波大学鱼类营养研究室淡水养殖基地养殖车间进行，试验所用的黄颡鱼鱼苗购自浙江省嘉兴市。养殖试验前黄颡鱼鱼苗用商品饲料(宁波天邦股份有限公司产品，粗蛋白质含量40%，粗脂肪含量8%)暂养2周，分组前停食24 h，挑选规格基本一致[初始体重为(0.90±0.02) g]的个体270尾，于每个300 L玻璃钢养殖桶中随机放养30尾。每种试验饲料随机投喂3个养殖桶，每天投喂2次，日投喂量为其体重的4%～6%，投喂时间分别为07:00和17:00，投喂后1 h观察其摄食情况，养殖前期每隔1天换水量50%左右，养殖中、后期每天换水量50%～100%。养殖期间每天检查充气和水温情况，若有死亡的鱼，及时取出并称重记录。每2周称重并计数，并据此及时调整随后2周饲料投喂量。试验期间不间断充氧以保证水体中含有足够的溶解氧(>6.0 mg/L)，水温为23.0～29.5 ℃，pH为7.5～8.0。试验养殖期为10周。

表1 2种鱼粉营养成分及新鲜度指标

表2 试验饲料组成及营养水平(干物质基础)

1)维生素预混料为每千克饲料提供The vitamin premix provided the following per kg of diets：VA 2 mg，VB1100 mg，VB260 mg，VB6120 mg，VB120.2 mg，VC 105 mg，VD30.15 mg，VE 100 mg，VK340 mg，生物素 biotin 2.5 mg，叶酸 folic acid 4.0 mg，泛酸钙 calcium pantothenate 150 mg，烟酸 nicotinic acid 400 mg，肌醇 inositol 2 000 mg。

2)每千克矿物质预混料含有Contained the following per kg of mineral premix：Fe (as ferric citrate) 12 mg，Zn (as zinc sulfate) 32 mg，Mn (as manganese sulfate) 20 mg，Cu (as copper sulfate) 25 mg，I (as potassium iodide) 0.10 mg，Mg (as magnesium sulphate) 350 mg，K (as monopotassium phosphate) 1 000 mg，Na (as monosodium phosphate) 300 mg，Ca (as calcium lactate) 65 mg，Co (as cobalt dichloride) 5 mg，Se (as sodium selenite) 0.3 mg。

3)营养水平均为实测值。Nutrient levels were all measured values。

表3 试验饲料的氨基酸组成(干物质基础)

续表3氨基酸Aminoacids饲料DietsPFMPFM⁃LFMLFM必需氨基酸总量ΣEAA16．1115．6915．87非必需氨基酸NEAA谷氨酸Glu6．826．816．98酪氨酸Tyr1．141．141．15半胱氨酸Cys0．330．360．37脯氨酸Pro2．202．152．14天门冬氨酸Asp3．363．373．39甘氨酸Gly1．871．841．85丙氨酸Ala2．011．992．02丝氨酸Ser1．751．731．73非必需氨基酸总量ΣNEAA17．2817．2317．49氨基酸总量ΣAA33．3932．9233．35

1.3 样品采集

试验结束前24 h停止投喂，取样前每桶单独称重并计数，计算增重率(weight gain rate，WGR)、特定生长率(specific growth rate，SGR)、存活率(survival rate，SR)、饲料效率(feed efficiency，FE)及蛋白质效率(protein efficiency ratio，PER)。每个养殖桶随机抽取3尾鱼分别测其体长、体重，然后剥离内脏团和肝脏称重，以计算肥满度(condition factor,CF)、肝体比(hepatosomatic index，HSI)和脏体比(viscerosomtic index，VSI)；随后剥离肌肉置于封口袋，用于肌肉脂肪酸组成的测定。另随机取3尾鱼，剥离肝脏于1.5 mL离心管中，用于肝脏抗氧化指标的检测。用注射器抽取每个养殖桶中5～8尾鱼的血液注入1.5 mL离心管中，于4 ℃下静置过夜后5 000 r/min离心10 min，取上清液保存于-80 ℃备用，用于血清生化指标的分析。

1.4 指标测定

饲料常规营养成分分析：水分含量的测定采用105 ℃常压干燥法；粗蛋白质含量的测定采用微量凯氏定氮法；粗脂肪含量的测定采用索氏抽提法；粗灰分含量的测定采用550 ℃马福炉灼烧法。饲料样品中氨基酸(除色氨酸外)含量采用高速氨基酸自动分析仪(Model 835-50，日本日立公司)进行测定。肌肉脂肪酸组成分析采用QP2010气相色谱-质谱分析仪进行测定，用面积归一法求得各脂肪酸的相对百分含量。

新鲜度指标分析：挥发性盐基氮(VBN)含量采用在半微量定氮法的基础上利用凯氏定氮仪进行蒸馏滴定的方法测定；酸价(AV)采用中性乙醚-乙醇混合溶剂浸泡并用碱性溶液滴定的方法测定；组胺含量采用紫外可见分光光度法进行测定。

血清生化指标分析：总蛋白(total protein，TP)、葡萄糖(glucose，GLU)、总胆固醇(total cholesterol，TC)、甘油三酯(triglyceride，TG)、高密度脂蛋白(high density lipoprotein，HDL-C)和低密度脂蛋白(low density lipoprotein，LDL-C)含量及碱性磷酸酶(alkaline phosphatase，AKP)活性均由宁波大学附属医院使用日立7600-110型全自动生化分析仪测定。

肝脏抗氧化指标分析：超氧化物歧化酶(superoxide dismutase，SOD)、过氧化氢酶(catalase，CAT)、谷胱甘肽过氧化物酶(glutathione peroxidase，GSH-Px)活性，总抗氧化能力(total antioxidant capacity，T-AOC)及丙二醛(malondialdehyde，MDA)含量均采用南京建成生物工程研究所生产的相关试剂盒测定，相应操作均参照说明书进行。

1.5 计算公式

WGR(%)=100×(终末均重-

初始均重)/初始均重；

SGR(%/d)=100×(ln终末体重-

ln初始体重)/饲养天数；

PER=(终末体重-初始体重)/蛋白质摄入量；

FE=(终末总重+死亡总重-初始总重)/

(投饲总量×饲料干物质含量)；

CF(g/cm3)=100×体重/体长3；

HSI(%)=100×肝脏重/体重；

VSI(%)=100×内脏团重/体重。

1.6 数据处理与分析

数据均以平均值±标准差(mean±SD)表示。用SPSS 17.0软件对所有数据进行单因素方差分析(one-way ANOVA)，当组间有显著差异(P<0.05)时，进行Duncan氏法多重比较。以P<0.05作为差异显著性判断标准。

2 结果与分析

2.1 进口鱼粉与国产鱼粉品质分析

由表1可知，在鱼粉营养成分分析中，国产鱼粉除粗蛋白质含量之外，粗脂肪、粗灰分含量均高于进口鱼粉，必需氨基酸总量低于进口鱼粉；在新鲜度指标分析中，国产鱼粉中的VBN含量和AV均高于进口鱼粉，组胺含量却低于进口鱼粉。

2.2 饲料中添加不同鱼粉对黄颡鱼幼鱼生长性能、饲料利用及形体指标的影响

由表4可知，WGR和SGR在各组之间具有显著差异(P<0.05)，其中LFM组最高，PFM-LFM组次之，PFM组最低。FE和PER在各组之间均无显著差异(P>0.05)。由表5可知，PFM-LFM组的CF最高，HSI和VSI最低，但各组之间差异均未达到显著水平(P>0.05)。

2.3 饲料中添加不同鱼粉对黄颡鱼幼鱼血清生化指标的影响

由表6可知，血清中TC含量以PFM-LFM组最高，显著高于PFM组(P<0.05)，与LFM组差异不显著(P>0.05)。PFM、PFM-LFM组血清中HDL-C含量显著高于LFM组(P<0.05)，PFM组血清中LDL-C含量显著低于PFM-LFM、LFM组(P<0.05)。血清中TP、GLU和TG含量及ALP活性各组间均无显著差异(P>0.05)。

表4 饲料中添加不同鱼粉对黄颡鱼幼鱼生长性能及饲料利用的影响

同行数据肩标无字母或相同字母表示差异不显著(P>0.05)，不同小写字母表示差异显著(P<0.05)，不同大写字母表示差异极显著(P<0.01)。下表同。

In the same row, values with no letter or the same letter superscripts mean no significant difference (P>0.05), while with different small letter superscripts mean significant difference (P<0.05), and with different capital letter superscripts mean significant difference (P>0.01). The same as below.

表5 饲料中添加不同鱼粉对黄颡鱼幼鱼形体指标的影响

表6 饲料中添加不同鱼粉对黄颡鱼幼鱼血清生化指标的影响

2.4 饲料中添加不同鱼粉对黄颡鱼幼鱼肝脏抗氧化指标的影响

由表7可知，与LFM组相比，肝脏SOD、CAT和GSH-Px活性及MDA含量在PFM组均显著增加(P<0.05)。此外，PFM-LFM组的肝脏SOD活性与PFM组无显著差异(P>0.05)，但显著高于LFM组(P<0.05)；PFM-LFM组的肝脏MDA含量显著低于PFM组(P<0.05)，但显著高于LFM组(P<0.05)；PFM-LFM组的肝脏CAT活性显著低于PFM组(P<0.05)，与LFM组差异不显著(P>0.05)；PFM-LFM组肝脏GSH-Px活性与PFM、LFM组均无显著差异(P>0.05)。肝脏T-AOC在各组之间均无显著差异(P>0.05)。

表7 饲料中添加不同鱼粉对黄颡鱼幼鱼肝脏抗氧化指标的影响

2.5 饲料中添加不同鱼粉对黄颡鱼幼鱼肌肉脂肪酸组成的影响

由表8可知，在各组黄颡鱼幼鱼肌肉中饱和脂肪酸(SFA)主要以C16∶0(棕榈酸)和C18∶0(硬脂酸)为主，其含量在各组间无显著差异(P>0.05)；单不饱和脂肪酸(MUFA)则主要以C18∶1(n-9)(油酸)和C18∶1(n-6)(亚油酸)为主，其含量在各组间亦无显著差异(P>0.05)；多不饱和脂肪酸(PUFA)含量以PFM-LFM组最高，PFM组次之，LFM组最低，组间差异显著(P<0.05)。PFM-LFM、LFM组的肌肉C20∶5(n-3)(DHA)含量无显著差异(P>0.05)，但均显著低于PFM组(P<0.05)。PFM-LFM组的肌肉C22∶6(n-3)(EPA)含量显著高于其他组(P<0.05)。

3 讨 论

鱼粉是动物饲料的重要组成成分，在本试验中，同时检测了其AV、VBN和组胺3个新鲜度指标。AV是指鱼粉中脂类物质在热、水分、氧、内源或外源脂肪酶作用下，水解生成游离脂肪酸的多少[17]。VBN是指鱼类样品浸液在弱碱性下能与水蒸气一起蒸馏出来的总氮量，包括氨和低级胺类，是酶和细菌分解氨基酸、蛋白质等其他含氮物质所产生的分解代谢产物。组胺是组氨酸遇到富含组氨酸脱羧酶的细菌污染后引起的鱼肉或鱼粉中的游离组氨酸脱羧反应产生的一种生物胺。相对于组胺，VBN含量检测方法相对较为简单，因此实际生产中很多饲料企业常用单一的VBN含量作为评价鱼粉新鲜度的指标。有研究表明：VBN与组胺含量之间不存在显著性相关关系，在检测鱼粉新鲜度时，需同时考虑VBN和组胺含量2个指标，才能客观全面的评价鱼粉的真实新鲜度[18]。

表8 饲料中添加不同鱼粉对黄颡鱼幼鱼肌肉脂肪酸组成的影响

作为水产动物最佳蛋白质源的鱼粉不但具有较好的氨基酸模式、不饱和脂肪酸等营养成分，还具有水产动物喜爱的味道。而新鲜的原料鱼经过自身酶解、微生物以及自然氧化等作用后，原有的蛋白质、脂肪等营养成分都会不同程度的损坏[18]。本试验中，相对于进口鱼粉，国产鱼粉能显著地提高黄颡鱼幼鱼的生长性能，且对形体指标无不良影响。在此之前，研究者在多种养殖鱼类如大西洋鲽[13]、大菱鲆[14]、金头鲷[15]和狼鳚[16]以及虾类(对虾[19-20])中发现腐败鱼粉由于其自身营养成分品质的下降和降解产生的一些对养殖动物有害物质会导致养殖动物的生长性能下降等。有研究表明，组胺等对不同脊椎动物的影响程度不同[21-22]。Albrektsen等[23]和Mundheim等[24]分别在大西洋鳕鱼和鲑鱼的中研究表明，相较于优质鱼粉饲料，低质鱼粉饲料降低了其生长和饲料效率，但却有较高的摄食率。本试验中，国产鱼粉虽然在品质上总体较进口鱼粉差，但其低组胺含量使其并不影响黄颡鱼的生长、饲料利用等，甚至优于进口鱼粉，说明鱼粉中组胺含量对黄颡鱼幼鱼生长性能的影响较大。首先，进口鱼粉中较高的组胺含量导致饲料风味减弱，并通过其受体影响黄颡鱼对食物的摄入量，研究表明在饲料中添加组胺和腐胺可以降低虹鳟的摄食率[25]；其次，已知组胺是鱼粉中含量较高并有潜在毒性的几种生物胺之一，组胺所带来的毒性影响因子可能会影响黄颡鱼的重要组织和功能结构，如影响胃肠道肌肉收缩等，Fairgrieve等[26]与Watanabe等[27]在用组胺含量高的鱼粉饲喂虹鳟时发现其胃产生了严重的生理病变。此外，2种鱼粉间的组合能够增加蛋白质和氨基酸等的互补作用[28]，从而互相补偿提高了黄颡鱼幼鱼的生长性能。

胆固醇代谢是脂质代谢的重要部分，肝脏中TC含量的升高说明肝脏细胞功能发生障碍，机体脂质代谢出现紊乱。HDL-C和LDL-C是一种血脂蛋白，LDL-C易引起胆固醇在血管中沉积，并与其他物质一起堵塞血管；HDL-C能将肝脏外的胆固醇运输到肝脏分解排出体外[29]。在本试验中，PFM组的肝脏TC含量显著低于其他组；LFM组的肝脏LDL-C含量显著高于其他组，且其肝脏HDL-C含量显著低于其他组，这说明进口鱼粉对提高黄颡鱼幼鱼机体脂质代谢能力，降低血脂含量具有显著促进作用。SOD与CAT是生物体抗氧化酶系的重要组成酶类，对生物体内活性氧自由基的清除起着关键的作用；MDA则是脂质过氧化反应中的最终产物，可导致机体细胞的损伤[1]；GSH-Px是机体广泛存在的一种重要的过氧化物分解酶，能将有毒的过氧化物还原成无毒的羟基化合物，从而保护细胞膜的结构及功能不受过氧化物的干扰及损害。T-AOC是用于衡量机体抗氧化系统功能状况的综合性指标[30]。在机体抗氧化酶系中SOD、CAT和GSH-Px活性及MDA含量的高低间接反映了机体清除自由基能力的强弱[31]。本试验中，PFM组肝脏SOD、CAT和GSH-Px活性及MDA含量显著高于LFM组，PFM-LFM组处于中间水平，说明进口鱼粉较国产鱼粉具有高清除自由基能力。这与国产鱼粉中VBN含量和AV高于进口鱼粉有较大关系，同时鱼粉间的组合能够发挥单一鱼粉所没有的优缺点互补的潜力。

动物体内能够合成饱和脂肪酸和单不饱和脂肪酸，但不能合成油酸和C18∶3(n-3)(亚麻酸)等，将动物维持正常生长发育需要而体内又不能合成的脂肪酸称为必需脂肪酸(油酸、亚麻酸、花生四烯酸等)[32]。油酸可降低血液中TC和有害胆固醇，单不饱和脂肪酸能降低LDL-C含量和冠状心脏病发生的几率，多不饱和脂肪酸(特别是EPA和DHA)具有防治高血脂、高血压、血栓性病和心脏病等，还有助于人脑的发育和提高免疫功能[33]。本试验结果表明：3组试验鱼肌肉中油酸含量为26.16%～27.43%，单不饱和脂肪酸含量在各组间无显著差异，但PFM-LFM组的PUFA及EPA+DHA含量最高，其次是PFM组，这说明不同品质鱼粉的组合使用对提高黄颡鱼幼鱼肌肉中多不饱和脂肪酸的积累和改善其肉质有显著作用。

在过去人们普遍认为国产鱼粉较进口鱼粉的应用效果差。但近年来，随着鱼粉加工工艺及设备、储存条件等的改善，国产鱼粉在品质上得到了较大的提升，赢得了不少饲料企业的青睐[34]。由本试验结果也可以看出，国产鱼粉在黄颡鱼幼鱼的生长、饲料利用以及形体指标上均有较好的养殖效果。

4 结 论

本试验中，相对于进口鱼粉，饲料中添加国产鱼粉更有利于提高黄颡鱼幼鱼的生长性能和肝脏抗氧化能力；2种不同品质鱼粉间的组合有助于黄颡鱼幼鱼肌肉中多不饱和脂肪酸的积累。

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*Corresponding author, professor, E-mail: zhouqicun@nbu.edu.cn

(责任编辑 菅景颖)

Effects of Different Quality Fish Meal on Growth Performance,Feed Utilization and Liver Antioxidant Capacity of Juvenile Yellow Catfish (Pelteobagrusfulvidraco)

HUANG Wenwen LI Yi ZHOU Qicun*

(LaboratoryofFishNutrition,SchoolofMarineSciences,NingboUniversity,Ningbo315211,China)

A 10-week feeding trial was conducted to evaluate the effects of different quality fish meal on growth performance, feed utilization and liver antioxidant capacity of juvenile yellow catfish (Pelteobagrusfulvidraco). A total of 270 juvenile yellow catfish with an initial body weight of (0.90±0.02) g were randomly divided into 3 groups with 3 replicates per group and 30 yellow catfish for each replicate. Three iso-nitrogenous and iso-lipid diets were formulated to contain different fish meal, such as imported fish meal (Peru steam fish meal), local fish meal (fish meal produced inRongchengofShandong) and mixed fish meal (imported fish meal∶local fish meal=1∶1), respectively. The results showed that weight gain rate (WGR) and specific growth rate (SGR) in the local fish meal group were the highest, those in the mixed fish meal group took second place, and those in the imported fish meal group were the worst, there were signifant differences among 3 groups (P<0.05). There were no significant differences in feed efficiency (FE), protein efficiency ratio (PER), condition factor (CF), hepatosomatic index (HSI) and viscerosomtic index (VSI) of juvenile yellow catfish among all groups (P>0.05). Serum total cholesterol (TC) conent in the mixed fish meal group was the highest, and significantly higher than that in the imported fish meal group (P<0.05); serum high density lipoprotein (HDL-C) content in the imported and mixed fish meal groups was significantly higher than that in the local fish meal group (P<0.05); serum low density lipoprotein (LDL-C) content in the imported fish meal group was significantly lower than that in the mixed and local fish meal groups (P<0.05). Total protein (TP), glucose (GLU) and triglyceride (TG) contents and alkaline phosphatase (AKP) activity in serum were not significantly different among all groups (P>0.05). Fish fed the diet containing imported fish meal had higher superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT) and glutathione peroxidase (GSH-Px) activities and malondialdehyde (MDA) content in liver than fish fed the diet containing local fish meal (P<0.05); however, there was no significant difference in liver total antioxidant capacity (T-AOC) among all groups (P>0.05). Muscle polyunsaturated fatty acid (PUFA) content in mixed fish meal group was significantly higher than that in the imported and local fish meal groups (P<0.05), but muscle saturated fatty acid (SFA) and monounsaturated fatty acid (MUFA) contents were not significantly different among all groups (P>0.05). Thus, relative to imported fish meal, the diet supplemented with local fish meal can improve growth performance and liver antioxidant capacity of juvenile yellow catfish under this experimental conditions; feeding the diet containing the mixed fish meal can help to increase accumulation of PUFA in muscle.[ChineseJournalofAnimalNutrition, 2015, 27(12)：3744-3753]

yellow catfish (Pelteobagrusfulvidraco); fish meal; growth performance; liver antioxidant capacity; fatty acids

10.3969/j.issn.1006-267x.2015.12.013

2015-06-17

国家海洋局海洋公益性行业专项(201305013)；浙江省高校重中之重(一级)学科建设项目

黄文文(1990—)，女，安徽宿州人，硕士研究生，从事水产动物营养与饲料研究。E-mail: huangwenwenzj@126.com

*通信作者：周歧存，教授，博士生导师，E-mail: zhouqicun@nbu.edu.cn

S963

A

1006-267X(2015)12-3744-10