邵迎春,杨 慧,钱 琤,王 贝,丁庆莉,韩 娟,刘亭亭,刘 芳,任传路
(解放军第一○○医院检验科,江苏苏州 215007)
肝素和乙二胺四乙酸二钾对TSGF检测的影响
邵迎春,杨 慧,钱 琤,王 贝,丁庆莉,韩 娟,刘亭亭,刘 芳,任传路△
(解放军第一○○医院检验科,江苏苏州 215007)
目的探讨抗凝剂肝素、乙二胺四乙酸二钾(EDTA-K2)对检测血标本恶性肿瘤特异性生长因子(TSGF)的影响。方法选取2014年1~6月恶性肿瘤患者50例(恶性肿瘤组)和体检健康者50例(健康对照组),均采用肝素、EDTA-K2、分离胶采集3份外周血,离心分离后用全自动生化分析仪进行检测。结果与健康对照组比较,恶性肿瘤患者TSGF水平升高,差异有统计学意义(P<0.05)。在恶性肿瘤组与健康对照组,与分离胶采血相比,肝素抗凝血TSGF水平均偏低(P<0.05),EDTA-K2抗凝血TSGF水平均偏高(P<0.05)。结论检测TSGF时尽量选用分离胶管采集血液标本。
恶性肿瘤特异度生长因子; 肝素; 乙二胺四乙酸二钾; 分离胶
肿瘤特异度生长因子(TSGF)是恶性肿瘤及周边毛细血管大量扩增产生的一类多肽物质,在进行肿瘤筛查的体检人群中应用广泛[1]。研究表明,TSGF与其他肿瘤标志物联合检测,可大大提高早期肿瘤检出率[2]。本文采用速率法对用抗凝剂肝素、乙二胺四乙酸二钾(EDTA-K2)及分离胶采集的血液进行TSGF检测,以明确使用抗凝剂是否对TSGF检测结果产生影响。
1.1 一般资料 2014年1~6月解放军一零零医院诊断明确且暂未治疗的初诊肿瘤患者50例设为恶性肿瘤组,男32例,女18例;平均年龄(65.6±5.7)岁;其中血液系统肿瘤8例,消化系统肿瘤10例,呼吸系统肿瘤9例,妇科肿瘤7例,动脉及生殖系统肿瘤12例,其他肿瘤4例。另选取同期体检健康者50例设为健康对照组,男29例,女21例,平均年龄(63.5±4.9)岁。排除检验室检查中有异常指标,影像学检查异常者。
1.2 仪器与试剂 BS-800全自动生化分析仪(迈瑞公司)。试剂均购自福建新大陆生物技术股份有限公司,主要成分:R1[磷酸二氢钠、乙二胺四乙酸二钠(EDTA-Na2)、凯松、4-羟乙基哌嗪乙磺酸(HEPPS)];R2(显色剂、凯松、枸橼酸钠、甘油)。
1.3 方法 所有研究对象均分别抽取3份血液,分别采用肝素抗凝、EDTA-K2抗凝及分离胶,离心后采用生化仪速率法检测TSGF水平,具体方法参照文献[3]。以上均排除明显黄疸、脂血及溶血标本。
1.4 统计学处理 采用SPSS19.0统计软件进行数据处理与统计分析;计量资料以表示,组间比较采用两独立样本t检验或配对t检验;以P<0.05为差异有统计学意义。
2.1 两组TSGF表达水平比较 恶性肿瘤组患者肝素抗凝、EDTA-K2抗凝及分离胶采血的TSGF表达水平均高于健康对照组,差异均有统计学意义(P<0.05),提示恶性肿瘤患者TSGF表达水平升高。见表1。
2.2 不同采血方法TSGF检测结果比较 在恶性肿瘤组与健康对照组,肝素抗凝血TSGF水平均低于分离胶采血,EDTAK2抗凝血TSGF水平均高于分离胶采血,差异均有统计学意义(P<0.05)。见表2。
表1 不同采血方法两组TSGF表达水平比较(,U/mL)
*:P<0.05,与健康对照组比较。
组别肝素EDTA-K2分离胶恶性肿瘤组77.52±13.58*85.86±11.15*82.3±10.38*健康对照组40.27±5.23 47.28±4.98 45.21±4.41
表2 不同采血方法TSGF检测结果比较(,U/m L)
*:P<0.05,与恶性肿瘤组分离胶比较;#:P<0.05,与健康对照组分离胶比较。
组别肝素EDTA-K2分离胶恶性肿瘤组-3.73±2.96*+3.01±2.14*0.00±0.00健康对照组-3.94±3.07#+3.11±2.37#0.00±0.00
恶性肿瘤已经成为继心、脑血管疾病以外,严重威胁人类健康的疾病之一,其治疗的关键是早期发现、早期诊断和早期治疗,以降低其病死率[4]。TSGF对肿瘤的检测具有早期性和广谱性,是与其他肿瘤标志物不相关的独立物质,具有肿瘤特异度而不具备脏器特异度,可为恶性肿瘤的早期诊断提供科学依据[5]。本室前期研究发现不同抗凝剂对检测结果确实存在较大影响[6]。因此本文研究了肝素和EDTA-K2对TSGF检测的影响。
本研究结果显示,与健康对照组比较,恶性肿瘤患者TSGF表达水平明显升高(P<0.05),与文献报道相符,这说明TSGF对恶性肿瘤具有较好的鉴别诊断价值。该试剂检测TSGF的原理是EDTA-Na2与TSGF进行叠加偶联反应,反应剩余的EDTA-Na2与显色剂反应,在570 nm测得吸光度值,通过公式换算得出TSGF水平。肝素抗凝血与分离胶采血比较,TSGF表达水平明显降低(P<0.05),这可能是肝素只是增强了抗凝血酶Ⅲ与凝血酶的亲和力,加速凝血酶的失活,并未消耗血中的钙离子。因此血中钙离子与检测试剂中的EDTANa2反应产生螯合物从而降低了检测试剂中EDTA-Na2的浓度,导致TSGF的检测结果偏低。EDTA-K2抗凝血与分离胶采血比较,TSGF表达水平明显升高(P<0.005),这可能是EDTA-K2与检测试剂中的EDTA-Na2化学性质相似,可以参与反应,相当于间接增加了检测试剂中EDTA-Na2的浓度,导致TSGF表达明显升高。因此检测TSGF时应尽量用分离胶管采集。另外,本室前期研究发现,采用全自动生化仪速率法检测TSGF时,标本应尽量在分离血清后4 h内完成检测,或置于-20℃冰箱冷冻保存,否则可能会导致TSGF检测水平下降,偏离真实结果[3]。
综上所述,由于TSGF对临床有很大的应用价值,因此在检测TSGF时应尽量排除其他干扰因素的影响。研究发现肝素和EDTA-K2对TSGF的检测具有干扰,所以在TSGF检测时应尽量选用分离胶管采血。
[1]王海枫,梁茱.恶性肿瘤特性生长因子(TSGF)的检测在肿瘤诊断中的应用[J].福建医药杂志,2000,22(1):90-91.
[2]刘陶文.肿瘤相关物质群(TSGF)联合检测法的应用研究进展[J].肿瘤防治研究,2003,30(1):78-79.
[3]文静,任传路,丁庆莉.检测时间对速率法检测恶性肿瘤特异度生长因子结果的影响[J].国际检验医学杂志,2013,34(22):3001-3002.
[4]王志贤,马玲.血清TSGF测定及其临床应用价值[J].实用浙江临床医学,2010,12(1):27-28.
[5]杨菁,王东.恶性肿瘤相关物质群在大肠癌辅助诊断中的临床价值[J].南方医科大学学报,2007,27(10):1577-1579.
[6]丁庆莉,韩娟,王海刚,等.3种抗凝血剂对化学发光法定量检测乙肝标志物结果的影响[J].现代预防医学,2013,40(2):336-337.
10.3969/j.issn.1673-4130.2015.10.057
A
1673-4130(2015)10-1446-02
2015-02-22)
△通讯作者,E-mail:clu_ren@126.com。