龙 琴综述,刘靳波审校
(泸州医学院,四川泸州 646000)
·综 述
细菌分子生物学分型技术研究进展*
龙 琴综述,刘靳波△审校
(泸州医学院,四川泸州 646000)
病原菌; 分子分型; 应用
细菌分型主要用于研究各菌株之间的克隆关系、确定感染源和感染途径、防止和控制病原菌的流行、预防交叉感染、明确致病力强的菌株和制定有效的控制措施等[1]。传统的细菌分型方法依赖于细菌表型特征鉴定,如生化反应、血清学特点等,存在分辨率低、重复性差、操作繁琐、耗时费力等局限性[2]。近年来,随着分子生物学的发展,基因分型技术已广泛应用于病原菌流行病学研究、医院感染控制、公共卫生防治等领域,采用的技术较多,包括质粒指纹图谱分析、脉冲场凝胶电泳技术、限制性内切酶技术等。选择合适的分型方法十分重要。本文就近年来常用的分子生物学分型方法的原理、优势、局限性、应用及研究进展等综述如下。
质粒指纹图谱分析根据质粒DNA电泳条带所构成的特征性图谱对细菌进行分型,包括质粒图谱分析和质粒限制性内切酶图谱分析,主要应用于细菌耐药基因流行传播的分析,常用于葡萄球菌属和肠杆菌属细菌[3]。Shahkarami等[4]对106株金黄色葡萄球菌进行分析,发现75株携带不同数量的质粒,且与耐药表型无关。该方法优点是操作相对简单、耗时少、费用低,缺点在于质粒在某些因素作用下不稳定,可导致自发丢失、获得及转移[5];其次,质粒图谱分析不能区分不含质粒的细菌,而质粒指纹图谱区分细菌流行株和非流行株的能力有限。
脉冲场凝胶电泳(PFGE)和限制性酶切片段长度多态性分析(PFLP)均利用不同的限制酶切割染色体DNA,产生不同长度的酶切片段,通过电泳和Southern杂交技术将病原菌分型。现以PFGE为例进行简要介绍。
自1984年Schwartz等[6]首次采用PFGE技术成功分离酿酒酵母染色体DNA以来,PFGE以其重复性好、分辨力强而被认为是细菌分子分型的“金标准”。其基本原理是通过电场的不断改变,使包埋在凝胶中的DNA分子的泳动方向发生改变,小分子DNA比大分子DNA泳动快,呈现特异的电泳图谱,DNA条带的密集度一定程度上反映了细菌基因组DNA浓度及DNA分子的大小,最终达到分型的目的。目前,PFGE已成功应用于多种病原菌的流行病学研究。有研究对30株肠球菌进行分析,结果显示PFGE在分辨能力及重复性方面优于其他分型方法[7]。然而,该方法耗时长、操作复杂,且电泳图谱分析易受操作人员技术水平的影响,给不同实验室间的比较带来一定困难[8]。其次,PFGE分析费用高,所需设备价格昂贵,难以推广。再者,PFGE检测结果显示的是病原菌电泳条带,而不是其DNA序列,在分析结果时必须根据其他流行病学资料或其他分子分型资料等进行合理的解释[9-10]。此外,Davis等[9]研究发现其对大小相似的片段分辨力不高。另有研究发现PFGE不适宜用来分析有广泛基因重组现象的细菌[11]。
PCR是一种广泛应用的DNA体外扩增合成技术。在PCR基础之上已衍生出多种用于细菌基因分型方法。
3.1 扩增片段长度多态性分析技术(AFLP) AFLP最早应用于植物学方面的研究,现已普遍应用于细菌分型领域[12]。该方法的基本原理是:基因组DNA用可产生粘性末端的限制性内切酶消化,产生大小不同的酶切片段,再与具有共同粘性末端的寡核苷酸双链接头连接成DNA模板,用与接头互补的带有选择性碱基的核苷酸序列为引物进行PCR扩增,再将扩增的酶切片段进行电泳,产生扩增片段长度不同的多态性带型,通过带型的差异对细菌进行分型和鉴定[13]。该方法具有多态性丰富,不需要知道被测细菌的全基因组序列,不受环境影响,无复等位效应等优点。有研究利用3种方法对110株肠炎沙门菌进行分子分型,认为AFLP与PFGE分型能力相当,且更适于沙门菌地区性疫情调查[14]。Donnarumma等[15]研究表明,AFLP对鲍曼不动杆菌鉴定和分型的重复性高于90%。此外,AFLP是针对细菌全基因组的限制性酶切,在调查细菌流行病学和监控医院感染情况方面更权威[16]。有研究利用AFLP对1961~1993年的45株霍乱弧菌进行分析,发现不同时期霍乱弧菌的流行病学特征及1991年非洲东南部和西部地区的流行疫源明显不同[17]。但是AFLP已申请专利,试剂盒价格昂贵;同时,该方法所用引物取决于接头,对接头技术要求较高且操作繁琐。
3.2 随机引物扩增DNA多态性分析(RAPD) RAPD基于较短的随机序列引物(通常为10 bp),在低退火温度下与染色体DNA序列有较好的亲和力,通过扩增未知序列染色体DNA和比较扩增产物的多态性,在克隆水平上比较DNA的差异,从而对细菌进行分型鉴定。Trancassini等[18]用该方法将分离自囊性纤维化患者的57株木糖氧化无色杆菌分为2型。Sachse等[19]研究表明RAPD可作为肺炎克雷伯菌快速分型筛选方法。该技术无需预知待检细菌的基因组核苷酸序列,经济且简便易行,对样品DNA的质量要求不高,但是检测重复性易受退火温度、循环次数等因素的影响。
3.3 重复序列PCR(rep-PCR) rep-PCR是通过扩增细菌基因组中广泛分布的短重复序列,即基因外重复回文序列(REP),获得菌株特异性图谱[20]。Percin等[21]应用该方法将多粘菌素耐药鲍曼不动杆菌分为3个不同的克隆型,发现多粘菌素与万古霉素在体外存在协同作用。Gulbudak等[22]将rep-PCR成功应用于院内鲍曼不动杆菌流行病学研究。另有研究研究表明与其他PCR技术相比,rep-PCR具有耗时短,所需DNA量小等优点[23]。法国生物梅里埃公司近年来开发的DiversiLab系统亦基于rep-PCR原理。该系统可在4 h之内完成样品同源性自动化分析,还可以得到树状图、凝胶图像、矩阵图等报告,具有高效、快速、易操作等特点[24]。但是,rep-PCR的分辨力取决于待检菌株中存在的重复序列数目,且试剂、反应条件及凝胶电泳条件都可能影响实验结果[25]。
随着DNA测序技术的发展,细菌分子分型技术日益趋向于基于细菌DNA序列本身的差异。以下介绍2种发展较快的DNA测序技术。
4.1 多位点序列分型(MLST) MLST是由Maiden等研究设计,最初用于研究自然变异的脑膜炎奈瑟球菌[26]。该方法通过PCR扩增多个管家基因内部片段并进行序列分析,不同的细菌对应不同的序列型(ST),通过比较ST而对细菌进行分型。该技术可通过网络实现实验室间数据共享及比较,具有简便快捷、实验室间可比性强、可直接对临床标本进行分析等优点[27]。Mezzatesta等[28]研究发现,PFGE和MLST对鲍曼不动杆菌分型具有同样的分辨力和可重复性。Simmonds等[29]将该方法成功应用于社区百日咳杆菌分型。其缺点在于管家基因的变异决定了分辨力,且不适用于同血清型菌株间的比较。此外,该方法依赖基因测序,成本较高,影响其推广普及。
4.2 高通量测序技术 高通量测序技术又称“下一代”测序技术或深度测序,能同时对几十万到几百万条DNA分子进行序列测定[30]。该技术具有检测速度快,覆盖度广及产出巨大等特点[31]。Snyder等[32]的研究表明,该技术对医院感染暴发流行的分析优势较大。但其局限性也不容忽视。首先,虽然测序速度较高,但错误率也相应较高[33],对获得的大量数据进行处理和分析也难题之一。此外,该技术不适合小规模测序,且测序仪价格昂贵。
综上所述,不同的分型方法各有优劣。选择何种分型方法,不仅取决于方法的分辨能力、重复性、经济及劳动成本,还取决于实验室资源及实验者本身的操作技能和知识水平。
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1673-4130(2015)10-1423-03
2015-01-02)
四川省泸州市科技局科研项目(2013CDLZ-S15)。 作者简介:龙琴,女,主管检验师,主要从事临床微生物学检验研究。△
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