李英夫,李明军,廉晓宇,宣兆博,鲁艳梅,涂丽莉
(佳木斯大学附属第一医院神经外科,黑龙江 佳木斯 154003)
Wistar大鼠SHG-44脑胶质瘤动物模型建立①
李英夫,李明军,廉晓宇,宣兆博,鲁艳梅,涂丽莉
(佳木斯大学附属第一医院神经外科,黑龙江 佳木斯 154003)
目的:建立Wistar大鼠SHG-44脑胶质瘤模型,为胶质瘤药物的药效学研究提供实验基础。方法:采用立体定向技术,将体外培养的SHG-44胶质瘤细胞浓缩悬液,5×106/10μL接种于Wistar大鼠的右侧尾状核区,种植后连续观察大鼠的生存状态,并于7d行MRI扫描,将未成瘤的大鼠去除,分别于7d、14d、21d、自然死亡几个区间观察大鼠的生存状态,21d处死和自然死亡的大鼠,取脑制作病理切片,HE染色,光镜下观察。结果:1周内均较活泼,全部正常,术后1~2周表现为表现为精神萎靡,反应迟钝,食欲不振,活动减少,体重下降,步态不稳,2周后上述症状加重,逐渐有死亡的大鼠。HE染色可明显观察到大鼠脑胶质瘤的形成。结论:建立的Wistar大鼠SHG-44脑胶质瘤动物模型可靠稳定, 其肿瘤生长特性及病理特征与人脑胶质瘤相似,可作为临床胶质瘤研究的理想模型。
脑胶质瘤模型;Wistar大鼠;SHG-44; 病理学
神经胶质瘤发病率高,是颅内常见的恶性肿瘤,约占颅内肿瘤的35.26%~60.96%[1,2],胶质瘤是恶性肿瘤之一,威胁着人类的健康, 目前胶质瘤的治疗以手术治疗为主,术后给予放疗和化疗,以及其它方面的治疗,包括基因治疗、免疫治疗等,但是胶质瘤的预后较差,随着胶质瘤研究的逐渐深入,需要建立稳定的胶质瘤模型,是临床药效学评估的基础,C6胶质瘤细胞来源于Wistar大鼠的额叶,SHG-44来源于人胶质瘤细胞,从生物学特性上看,更接近于人的胶质瘤细胞,将SHG-44细胞接种于Wistar大鼠右侧尾状核区,肿瘤细胞植入成功,血脑屏障也逐渐建立,因此Wistar大鼠SHG-44脑胶质瘤模型更接近于人类的脑胶质特性,这是更理想的胶质瘤模型,本课题组参照其它相关文献[3~6],成功建立Wistar大鼠SHG-44脑胶质瘤模型,现将具体情况报道如下。
1.1 实验材料
SHG-44细胞株,Wistar雄性大鼠,体重160~200g。试剂主要包括:F12K培养基、胎牛血清、马血清, 10%甲醛平衡灌注固定液胎牛血清。主要仪器包括:超净工作台,脑立体定向仪,倒置显微镜,MCO175 型二氧化碳培养箱, 25μL微量注射器,台式冷冻离心机。
1.2 实验方法
1.2.1SHG-44细胞悬液制备
SHG-44来源于人额叶星形胶质瘤的稳定培养,具有特异性标志胶质酸性纤维蛋白(GFAP),SHG-44是目前较理想的细胞株,能够稳定的培养,并在Wistar大鼠尾状核区成功植入,将复苏成功的SHG-44细胞株,放于50cm2培养瓶中接种,DMEM培养基中含有10%灭活的胎牛血清,还含有链霉素100mg/mL、青霉素100U/mL、NaHCO33.7g/L,培养瓶置于5%CO2的培养箱中,温度恒定于37℃,SHG-44细胞满瓶后,将培养液倾倒出去,0.25%胰酶消化培养瓶中的SHG-44细胞,显微镜下观察SHG-44细胞,当细胞开始皱缩时,加入营养液,并反复吹打,使SHG-44细胞脱壁,并用离心机离心5min,离心转数为1000r/min,将上清液弃出,制成106细胞/瓶的细胞悬液,接种于25cm2培养瓶中。
1.2.2 动物模型制作前准备
全实验过程每周两次注射地塞米松,0.15mg腹腔内注射,接种前3d,每日给予地塞米松,剂量为100g体重1mg,给药方式为灌胃,降低排斥反应,用10%水合氯醛麻醉,给药剂量为每100克体重0.4mL,剪去穿刺点周围毛,面积约1.0cm×1.5cm。
1.2.3 模型制作
植入靶点为右侧尾状核区,穿刺点为矢状缝右旁开3.5mm和前囟中点前1.0mm,麻醉满意后,将Wistar大鼠固定于立体定向仪上,剪去穿刺点周围毛,高效碘消毒,铺无菌洞巾,切开内眦连线与正中矢状面交点向后1mm,定位预先穿刺点,牙科钻颅骨钻孔,直径1.2mm,用1mm微量注射器针头刺破硬膜,向下垂直进入硬膜下6mm, 再后撤1mm,将细胞悬液1×106/20μL,以每分钟1μL的速度缓慢注入右侧尾状核区,穿刺针停留5min,骨蜡封闭骨孔,缝合头皮。
1.2.4 观察指标
7d时进行头部MRI检查,将成瘤的大鼠作为实验对象,分别于接种后的7d、14d、21d、自然死亡的几个时间点观察大鼠的生存状态,包括如下几个方面:饮食情况;肢体是否有活动障碍;颅神经是否有功能确实;以及视觉反应;全身抽搐和持续时间等。21d处死大鼠和死亡的大鼠进行H-E染色,光镜下观察[5]。
2.1 脑瘤鼠行为学表现为
大鼠术后1d逐渐恢复饮食及活动,2d后基本恢复到术前状态,1周内均较活泼,全部正常,术后1~2周表现为表现为精神萎靡,反应迟钝,食欲不振,活动减少,体重下降,步态不稳,2周后上述症状加重,逐渐有死亡的大鼠。移植的Wistar大鼠动物50只,颅内出血致死4%(2/50),感染致死6%(3/50),意外伤害致死2%(1/50),颅内成瘤21只,成瘤率42%。
2.2 组织病理学
以多聚甲醛灌注主动脉,取肿瘤组织,甲醛固定,制成标本,用HE染色,显微镜下表现为核大、染色较深,并在肿瘤中心区切片可见坏死区,边界不清。
胶质瘤为中枢神经系统的恶性肿瘤,如何提高其治疗效果,延长患者生命,科研工作者和神经外科医生在不断的探索,VottorionM等认为[7],理想的脑胶质瘤动物模型应具备以下特点:具备恶性胶质瘤细胞的生物特性;体外培养能生长;成瘤的时间较短,能够测定肿瘤的生长率,动物生存期稳定;肿瘤模型与人脑胶质瘤相似的生长特性;用于治疗的模型须能够模拟人脑胶质瘤临床治疗过程。本课题组用立体定向方法将SHG-44细胞植入到Wistar大鼠右侧尾状核区域,成功建立Wistar大鼠脑胶质瘤模型,大鼠成瘤后可出现明显的行为学改变,有较典型的症状。H-E染色,光镜下观察肿瘤呈侵袭性生长,建立的Wistar大鼠SHG-44胶质瘤动物模型基础上,观察大鼠的行为学改变,为抗胶质瘤药物的药效学研究提供了借鉴,更好的选择时间窗。
脑胶质瘤原位移植瘤动物模型的成功建立,应从以下几个方面严格操作,现做如下总结,模型制作过程,要求操作精细,控制好细胞数量、细胞增殖活力、靶点的确定、进针的速度和深度以及与靶点脑组织接触时间,细胞注射速度等方面严格操作,首先保证细胞的数量和活力,接种SHG-44大鼠脑胶质瘤细胞活力应>90%,达不到标准不能操作,接种前将细胞悬液置于恒温摇床中,温度恒定于37℃,留置时间不超过90min,接种前轻轻摇晃,以保证细胞悬液均匀,接种细胞的数量是影响模型成功率的关键,要保证细胞的数量,其次,穿刺针进入不能过深,也不能过浅,过深会导致大鼠死亡,过浅细胞 会向外溢出,把握好进针深度,是模型能否成功的关键因素之一,注射SHG-44悬液要把握好注射速度,保证细胞悬液植入在脑内,缓慢退针后,骨腊封闭骨孔,通常在肿瘤生长较慢的时期,进行对比实验能更好地判定治疗效果[8]。成瘤的大鼠,7d大鼠脑内肿瘤己经形成,但其生存状态良好;7~14d随诊肿瘤的生长,大鼠表现为食欲减退、反应下降,14d后上述症状明显,部分大鼠出现偏瘫、眼眶淤血、精神萎靡、体重下降较快。从以上观察看,进行药效学观察的时间点选在接种后10~14d为好。总之,按照上述方法进行的脑胶质瘤模型的制备,可以达到临床脑胶质瘤药效学研究的要求,因此,Wister大鼠SHG-44脑胶质瘤模型是可靠的动物模型。
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黑龙江省卫计委课题项目,编号:2014-222。
李英夫(1979~)男,黑龙江明水人,硕士,主治医师。
李明军(1965~)男,黑龙江佳木斯人,学士,主任医师。E-mail:liyingfu79@sohu.com。
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1008-0104(2015)02-0024-02
2015-01-02)