白治苗,卢玉凤,杨 眉,年 研,哈春芳
(1.宁夏医科大学临床医学院,银川750004;2.宁夏医科大学总医院妇产科,银川750004;3.榆林市第二医院,陕西719000)
尿激酶型纤溶酶原激活物(urokinase plasmino-gen activator,uPA)是尿激酶型纤溶酶原激活系统(简称uPA系统)的一个重要组成部分,主要在细胞外基质、基底膜等多种成分的降解中发挥作用,是维持细胞外基质动态平衡的一种关键因子[1-2]。在正常情况下,uPA存在于人或动物的血液、尿中,其本质是一种丝氨酸蛋白酶,具有将无活性的纤溶酶原转化成有活性的纤溶酶的作用,从而激活体内的纤溶系统,但纤溶酶原激活物抑制物-1(PAI-1)能特异性地抑制uPA的活性,从而保证了机体细胞外基质的动态平衡。子宫内膜异位症(endometriosis,EMs)简称内异症,容易引起女性,尤其是育龄期妇女下腹坠胀痛、月经失调、性交痛,以及不孕等症状的常见良性疾病。但EMs却有着类似恶性肿瘤的黏附、种植、侵袭及远处转移等生物学行为。该病的病因与发病机制尚不明确,目前被普遍接受的是1921年Sampson提出的子宫内膜种植学说,于经期时子宫内膜腺上皮细胞及间质细胞随经血逆流,经输卵管进入盆腔并种植于卵巢和邻近的腹膜。这一学说在动物实验中已被证实,但经血中的腺上皮、间质细胞是如何黏附并种植于腹膜细胞外基质中的,目前尚不清楚。因此,推测原位内膜uPA的活性增强,PAI-1的抑制作用不足,使经血中的内膜碎片降解腹膜细胞外基质的能力增加,为子宫内膜的异位黏附、种植创造了条件。本研究试图通过免疫组织化学和RT-PCR检测uPA蛋白、mRNA在EMs患者在位、异位及正常内膜组中的表达,由此阐述uPA在EMs发病机制中的可能作用。
1.1 一般资料 收集2013年1月至2014年9月于宁夏医科大学总医院妇产科因EMs行手术治疗并于术中或术后确诊的病理存档石蜡标本及新鲜组织各35例,纳入病例组。按照美国生育协会(AFS)修正EMs分期法(1985),所有病例组患者均处于Ⅱ期。收集同年因子宫肌瘤经手术治疗并排除EMs的正常子宫内膜30例作为对照组。纳入标准:所有病例组及对照组患者于手术前月经周期均正常,病例组于术中或术后证实为EMs,两组近3个月均未接受过激素类药物的治疗,无不孕、子宫内膜非典型性增生、宫颈上皮内瘤变、生殖道炎症等其他妇科器质性疾病,患者年龄在25~45岁,平均(30.50±4.98)岁。
1.2 主要试剂 兔抗人uPA多克隆抗体由美国abcam生物公司生产(稀释浓度分别为1∶100),兔超敏二步法免疫组织化学检测试剂PV-6001,DAB显色试剂盒均由北京中杉生物工程公司生产。RT-PCR所需引物由上海生工生物工程技术服务有限公司合成,cDNA反转录核,免疫荧光定量试剂盒均购置于Thermo公司。
1.3 方法
1.3.1 免疫组织化学 所有标本均由病理科证实,由甲醛浸泡过夜,10%甲醛固定,程序脱水、石蜡包埋,3~4μm厚度连续切片,65℃烤箱烤片过夜,脱蜡、水洗、抗原修复、一抗孵育过夜、PBS冲洗、二抗孵育2h、显色、梯度乙醇脱水、二甲苯透明及中性树胶封片,以PBS缓冲液代替一抗作为阴性对照。
1.3.2 RT-PCR步骤 引物根据引物设计原则,采用引物设计软件 Primer Premier 5 设 计,上游引 物:5′-GGG AGC AGA GAC ACT AAC GAC-3′,下 游 引 物:5′-CTT ACA CTC ACA GCC CAC ACA-3′,由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。
1.3.3 操作步骤(1)内膜组织中总 RNA提取:称取约50 mg在位或异位内膜组织置于含有液氮的匀浆器中,加入1mL预冷的TRIZOL充分匀浆后将裂解液移入1.5mL EP管,4℃,12 000r/min,离心10min,取上层裂解液加入0.2mL氯仿,混匀,冰浴5min,4℃,12 000r/min,离心10min,取上层水相加0.5mL异丙醇,颠倒混匀后冰浴10min,4℃,12 000 r/min,离心10min,小心去除上清液,加入1mL 75%乙醇,4℃,7 500r/min离心5min,弃去上清液,让沉淀RNA自然干燥5~10min.(2)RNA定量:用无RNA酶的水溶解RNA沉淀至20μL,取2μL于750紫外分度计测量RNA纯度及浓度,将终浓度稀释为1μg/μL。(3)反应条件:94℃ 预变性3 min,1个循环,94℃ 变性30s,55℃退火30s,72℃延伸1 min,各35个循环,72℃终反应5min。
1.4 结果判定标准(1)采用OLYMPUS.BX51正置荧光显微镜观察染色结果,uPA以细胞质或基底膜中出现黄色或棕黄色颗粒为阳性表达。用image pro-plus 6.0专业图像分析软件对uPA蛋白的表达情况进行半定量分析,计算出每张切片的平均光密度值(IOD)。(2)RT-PCR 结果判定,用 BIO-RAD凝胶扫描系统分析摄像,用Roche-Lightcycler 96对产物半定量分析,以正常内膜、内异症在位内膜和异位内膜中uPA/GADPH mRNA表示相对量结果。
1.5 统计学处理 采用SPSS17.0统计学软件进行分析,计量资料用±s表示,采用单因素方差分析、两独立样本t检验等统计方法,以P<0.05为差异有统计学意义。
2.1 uPA蛋白在3组中表达的结果 uPA蛋白主要表达于子宫内膜腺上皮细胞、间质细胞的细胞质及基底膜中,极少数表达于血管内皮细胞中,见图1。其中uPA蛋白在EMs异位内膜组中的表达明显高于EMs在位内膜组、正常内膜组,EMs在位内膜组中的表达高于正常内膜组,其差异均具有统计学意义(P<0.05),见图2。
图1 uPA蛋白在3组内膜中的表达(SP×400)
图2 uPA蛋白在3组内膜中的表达
图3 uPA蛋白在3组内膜增生期、分泌期中的表达
2.2 uPA蛋白在3组内膜中增生期与分泌期的表达 uPA蛋白在3组内膜中的增生期与分泌期中的表达无明显差异(P>0.05),见图3。
2.3 uPA mRNA在3组内膜中的相对表达量 其中uPA mRNA在EMs异位内膜组中的表达明显高于EMs在位内膜组、正常内膜组,在EMs在位内膜组中的表达高于正常内膜组,其差异均有统计学意义(P<0.05),见图4。
图4 uPA mRNA在3组内膜中的表达
EMs发生可能要经过3个阶段即异位内膜的黏附、侵袭及血管形成,但异位内膜侵袭并破坏周围正常器官组织除了需要辨别、黏附的能力,还需要酶类,如蛋白水解酶,来降解细胞外基质、基底膜等细胞成分。在异位内膜的侵袭及转移过程中,存活及生长需要大量的微血管形成以保证其营养供应,而uPA在此过程中起着至关重要的作用。
uPA是一种丝氨酸蛋白水解酶,以无活性的单链(scuPA)和有活性的双链(tc-uPA)两种形式存在。当细胞合成和分泌的sc-uPA与其特异性受体uPAR结合后,scPA被酶解成具有纤溶酶原激活剂活性的双链形式tc-uPA,而大量有活性的uPA的聚集使纤溶酶原转变成纤溶酶,降解细胞外基质和基底膜等多种成分,且可上调uPAR的表达[3]。此外,uPA与uPAR结合可激活细胞内的信号传递途径,调节细胞增殖、远处转移和浸润等生物学行为[4]。国内有研究发现在癌变组织器官中uPA/uPAR高表达,也表明肿瘤细胞的侵袭、迁移与uPA/uPAR降解细胞外成分和激活细胞信号密切相关[5]。国外学者也在细胞和动物恶性肿瘤模型水平通过小干扰RNA或相关拮抗剂下调uPA和uPAR的表达,发现可以有效抑制恶性肿瘤细胞的侵袭、迁移及增殖[6-7]。EMs在病理上虽是良性疾病,但却有着类似于恶性肿瘤的种植、侵袭及远处转移的生物学行为。本研究结果表明,uPA蛋白在EMs患者异位内膜腺上皮、间质细胞中的表达明显高于EMs在位内膜及正常子宫内膜,uPA mRNA在EMs患者异位、在位内膜中的表达也明显增强,且在整个月经周期中持续表达,无明显的波动性,与陈露等[8]的研究结果uPA的高表达使其降解细胞周围基质及基底膜的能力增强,为异位内膜的黏附、侵袭、转移及形成异位病灶提供了必要条件的观点基本一致。国内学者的研究表明,在很大程度上肿瘤细胞中uPA的表达水平与其降解细胞外基质、基底膜等细胞组分及其侵袭转移能力密切相关[9]。因EMs的发病机制与恶性肿瘤相似,结合本研究的结果,发现该观点与EMs中uPA表达高低和异位内膜侵袭性关系的密切程度相吻合。此外,本实验结果还表明uPA蛋白在EMs患者异位内膜及在位内膜的血管内皮细胞中亦有表达,因此猜测uPA蛋白可能在异位内膜的血管形成中发挥至关重要的作用。uPA降解细胞外基质蛋白和基底膜,促使血管内皮细胞在周围组织间移动、增殖、聚集,更容易形成血管腔,为异位的内膜提供营养供应。国外学者的研究发现子宫内膜间质细胞释放uPA/PAI-1复合物,而该复合物可促使人血管内皮细胞的迁移,进一步支持uPA在EMs发病机制中的作用[10]。综上所述,uPA与EMs发病阶段中的异位内膜的黏附、侵袭及血管生成密切相关。
总之,本研究结果显示uPA mRNA及蛋白在EMs患者异位内膜与在位内膜的腺上皮、间质细胞中呈高表达,一方面激活纤溶酶降解细胞外基质及基底膜,使异位内膜细胞更易侵袭及转移;另一方面uPA mRNA及蛋白在EMs患者异位内膜与在位内膜的血管内皮细胞细胞中表达,诱导微血管的形成为异位内膜的黏附提供营养。二者共同促进EMs的形成,为EMs的发病机制拓展一条新的思路,更为寻找EMs有效的药物治疗靶点提供依据,但uPA在EMs的发病机制中的具体作用仍不清楚,本课题组下一步希望通过uPA的激活剂及抑制剂干预EMs患者在位内膜腺上皮细胞后采用Transwell、RT-PCR、Western blot等试验方法检测uPA蛋白、mRNA的表达及细胞侵袭性的变化进一步验证uPA在EMs发生、发展中的作用。
[1]Zorio E,Gilabert-Estellés J,España F,et al.Fibrinolysis:the key to new pathogenetic mechanisms[J].Curr Med Chem,2008,15(9):923-929.
[2]Dutta S,Bandyopadhyay C,Bottero V,et al.Angiogenin interacts with the plasminogen activation system at the cell surface of breast cancer cells to regulate plasmin formation and cell migration[J].Mol Oncol,2014,8(3):483-507.
[3]Jarvinen HM,Laakkonen L,Haiko J,et al.Human singlechain urokinase is activated by the omptins PgtE of Salmonella enterica and Pla of Yersinia pestis despite mutations of active site residues[J].Mol Microbiol,2013,89(3):507-517.
[4]Choong PF,Nadesapillai AP.Urokinase plasminogen activator system:a multifunctional role in tumor progression and metastasis[J].Clin Orthop Relat Res,2003(415Suppl):S46-58.
[5]詹灵凌,吕小平,李山,等.肝硬化患者血浆uPA、uPAR水平与肝纤维化和癌变的相关性[J].临床检验杂志,2008,26(2):144-145.
[6]Nowicki TS,Zhao H,Darzynkiewicz Z,et al.Downregulation of uPAR inhibits migration,invasion,proliferation,FAK/PI3K/Akt signaling and induces senescence in papillary thyroid carcinoma cells[J].Cell Cycle,2011,10(1):100-107.
[7]Xu X,Cai Y,Wei Y,et al.Identification of a new epitope in uPAR as a target for the cancer therapeutic monoclonal antibody ATN-658,a structural homolog of the uPAR binding integrin CD11b(αM)[J].PLoS One,2014,9(1):e85349.
[8]陈露,申爱荣,胡孟彩,等.子宫内膜异位症患者内膜组织中uPA与PAI-1蛋白的表达[J].郑州大学学报:医学版,2014,49(2):251-254.
[9]Liu WD,Bo YZ,Fan Y,et al.Effect of Bcl-xL gene expression silenced by RNA interference on invasion of human colorectal cancer cells[J].J BUON,2014,19(4):925-929.
[10]Braza-Boils A,Marí-Alexandre J,Gilabert J,et al.MicroRNA expression profile in endometriosis:its relation to angiogenesis and fibrinolytic factors[J].Hum Reprod,2014,29(5):978-988.