刘 赟,施 红,林心君,郑晓玲,许 茜
(福建中医药大学,福建福州 350122)
哺乳动物体内已发现四种己糖激酶同工酶,在肝脏中存在的是IV型,称为葡萄糖激酶(GCK),是肝脏葡萄糖磷酸化为6-磷酸葡萄糖步骤的限速酶[1]。GCK影响β细胞胰岛素的合成和分泌,充当刺激胰岛素分泌的葡萄糖感受器,在维持体内葡萄糖平衡中起到关键性的作用[2]。另外,有人提出糖尿病发病的“葡萄糖调定点”学说,认为葡萄糖转运蛋白-2(GLUT-2)和GCK的缺陷使β细胞对细胞外的葡萄糖敏感性降低,即β细胞膜胰岛素释放的“调定点”提高了[3]。本研究通过检测大鼠胰岛细胞GCK、GLUT-2水平,探讨石斛合剂(DC)治疗糖尿病可能的作用机制。
1.1.1 药物与试剂 石斛、黄芪、五味子、丹参、葛根、玄参等;二甲双胍缓释片。
1.1.2 实验动物 健康SPF级Wistar大鼠70只,6月龄,雌性,体重(250±30)g,由上海斯莱克实验动物有限责任公司提供。
1.1.3 实验仪器 乐康全微量血糖检测仪及血糖试纸,武汉俊杰电子有限公司生物组织摊烤片机(JK-5型),德国Leica公司石蜡切片机(RM2245型),日立7180自动生化分析仪等。
Wistar大鼠适应性喂养7d,随机分为两组:正常组15只、造模组55只。根据课题组前期工作研究,正常组给予基础饲料(来自福建中医药大学实验动物中心)喂养,造模组给予高脂高糖饲料(自备:糖15%,猪油10%,胆固醇4%,胆盐0.3%,蛋黄粉10%,基础饲料60.7%),持续喂养1年(自然死亡15只)。造模组腹腔注射低剂量的STZ(20mg/kg),3d后用微量血糖仪筛选出随机血糖≥16.7mmol/L者为成模,其余不成模大鼠腹腔注射低剂量的STZ(20mg/kg),3d后用微量血糖仪筛选出成模大鼠。将2次成模大鼠随机分为模型组(12只)、石斛合剂低剂量组(12只)、石斛合剂高剂量组(12只)、二甲双胍对照组(10只),石斛合剂低、高剂量组灌胃生药含量分别为2.0g/mL、4.0g/mL。检测血糖、GSP,取胰腺组织,免疫组化检测GLUT-2、GCK。
用计算机统计软件SPSS17.0进行处理,计量资料以均数±标准差(±s)表示。
模型组血糖水平、GSP水平显著高于正常组(P<0.01);与模型组比较,石斛合剂低剂量组、高剂量血糖水平、GSP 水平显著降低(P<0.05,P<0.01),二甲双胍对照组血糖水平显著降低(P<0.05)。结果见表1。
表1 大鼠血糖、GSP水平的比较 (mmol/L,±s)
表1 大鼠血糖、GSP水平的比较 (mmol/L,±s)
注:与正常组比较,1)P<0.01;与模型组比较,2)P<0.05,3)P<0.01
组别 n 血糖(己糖激酶法)血糖(血糖仪法) G S P水平正常组 9 5.352±0.181 5.450±0.2061.201±0.049模型组 12 19.224±1.8171) 21.450±2.1641) 1.875±0.8831)二甲双胍对照组 10 15.568±0.3462) 16.681±0.6542) 1.667±0.068石斛合剂低剂量组 12 11.652±0.4923) 12.133±0.8983) 1.568±0.0422)石斛合剂高剂量组 12 8.478±0.3033) 9.000±0.5513) 1.427±0.0573)
正常组在胰岛和腺泡可见到GCK阳性表达,胰岛内细胞染色较均匀且颜色较深,空泡较少;模型组胰岛形态改变,边界不清,在胰岛和腺泡可见到GCK阳性表达,但岛内出现空泡,胰岛内细胞染色不均匀且颜色较浅,部分细胞核呈梭形,细胞形状不规则;二甲双胍对照组在胰岛和腺泡可见到GCK阳性表达,岛内出现部分空泡,胰岛内染色不均匀,部分染色较深;低剂量组在胰岛和腺泡可见到GCK阳性表达,染色较模型组深,岛内出现部分空泡;高剂量组胰岛边界清晰,在胰岛和腺泡可见到GCK阳性表达,染色较模型组深,可见部分空泡。统计表明:模型组GCK阳性面积、积分光密度(IOD)显著低于正常组(P<0.01),高、低剂量组GCK 阳性面积、IOD 显著高于模型组(P<0.05)。结果见表 2、图 1。
表2 大鼠胰岛GCK面积、IOD的比较 (±s)
表2 大鼠胰岛GCK面积、IOD的比较 (±s)
注:与正常组比较,1)P<0.01;与模型组比较,2)P<0.05
组别 n 面积(像素) IOD正常组 9 2627.500±204.527 1874.000±357.660模型组 12 737.000±60.9291) 319.667±21.7941)二甲双胍对照组 10 753.167±56.108 302.500±20.322石斛合剂低剂量组 12 1247.500±129.7602) 503.500±44.1992)石斛合剂高剂量组 12 1217.167±133.1032) 457.667±29.4472)
正常组在胰岛和腺泡可见到阳性表达,胰岛内细胞染色较均匀且颜色较深,空泡较少;模型组胰岛形态改变,边界不清,在胰岛和腺泡可见到阳性表达,但岛内出现空泡,部分细胞核呈梭形,细胞形状不规则;二甲双胍对照组在胰岛和腺泡可见到阳性表达,胰岛边界不清,部分染色较深,部分细胞核呈梭形;低剂量组在胰岛和腺泡可见到阳性表达,且染色较均匀,岛内出现部分空泡;高剂量组在胰岛和腺泡可见到阳性表达,且染色较均匀,空泡较少。统计表明:模型组GLUT-2阳性面积、IOD显著低于正常组(P<0.01),低、高剂量组 GLUT-2阳性面积、IOD 显著高于模型组(P<0.05,P<0.01)。结果见表 3、图2。
图1 胰腺GCK免疫组化
图2 胰腺GLUT-2免疫组化
表3 大鼠胰岛GLUT-2面积、IOD的比较 (±s)
表3 大鼠胰岛GLUT-2面积、IOD的比较 (±s)
注:与正常组比较,1)P<0.01;与模型组比较,2)P<0.05,3)P<0.01
组别 n 面积(像素) I O D正常组 913430.167±1687.8681665.000±148.657模型组 124666.333±772.1071) 421.833±46.4781)二甲双胍对照组 103188.667±411.536 542.333±68.373石斛合剂低剂量组 129160.667±372.8082) 1425.500±208.6623)石斛合剂高剂量组 1214370.667±2886.4323) 1336.333±233.4753)
通过以往的研究发现,石斛合剂可降低血糖、提升大鼠GLP-1含量[4-5]。另有研究表明GLP-1能促进胰腺转录因子及葡萄糖激酶(GK)、GLUT-2的基因表达,改善糖脂毒性对β细胞功能的影响,抑制β细胞凋亡[6]。高血糖可下调葡萄糖通过膜上的GlUT-2在β细胞中的表达,从而减少糖的转运,使胰岛素分泌减少。
本实验用免疫组化方法检测GCK,高、低剂量组GCK阳性面积及IOD显著高于模型组,说明石斛合剂能保护胰岛细胞,并促进部分胰岛细胞分泌GCK,从而起到一定的代偿作用;高、低剂量组GLUT-2阳性面积、IOD显著高于模型组,说明石斛合剂可以对胰岛起到保护作用,减少胰岛内空泡的形成,从而更好地发挥其分泌的作用。综上所述,石斛合剂的作用机制可能是促进GCK和GLUT-2在胰腺的表达,从而达到治疗糖尿病的目的。
[1]Matschinsky F M.Glucokinase,glucose homeostasis,and diabetes mellitus[J].Curt Diab Rep,2005,5(3):171-176.
[2]翁建甲,黄知敏.早发型糖尿病的研究进展[J].广东医学杂志,2003,24(2):126-127.
[3]Gammeltoft S,Kahn C R.Hormone signaling via membanae receptors[M]∥Larry Jameson J,De Groot L J.Endocrinology.3rd.Philadelphia:Saunders,1955:17-65.
[4]施红,林求诚,陈国强,等.石斛合剂对2型糖尿病的临床疗效观察[J].中药新药与临床药理,2002,13(6):348-350.
[5]余文珍,施红,郑燕芳,等.石斛合剂对衰老糖尿病大鼠血清GLP-1水平的影响[J].海南医学院学报,2006,12(3):196-199.
[6]Federici M,Hribal W,Perego L,et al.High glucose causes apoptosis in cultured human pancreatic islets of langerhans[J].Diabetes,2001,50(6):1290.