王书敬 赵长青
变应性鼻炎(allergic rhinitis,AR)是机体接触变应原后主要由免疫球蛋白E(immunoglobin E,IgE)介导的鼻黏膜非感染性炎性反应。目前认为AR的发病过程包括免疫学致敏和临床致敏2个阶段。机体初次接触变应原时,抗原呈递细胞摄取加工信息,通过活化T细胞启动特异性免疫应答,促进B细胞产生IgE并与肥大细胞(mast cell,MC)表面的 FcεRI结合,完成免疫学致敏过程。再次接触变应原时,机体启动临床致敏过程:MC脱颗粒释放组胺、5羟色胺、类胰蛋白酶等生物活性物质,直接引起AR的速发相症状。同时,MC表面还有其他受体在AR过程中发挥作用(表1),这些受体激活MC后产生不同于IgE介导的免疫性脱颗粒的迟发反应。其中,白介素33受体(IL-33 receptor,IL-33R)、胸腺基质淋巴细胞生成素受体(thymic stromal lymphopoietin receptor,TSLPR)和 Toll样受体 4(Toll-like receptor 4,TLR4)可诱发MC释放Th2相关效应因子(如IL-4、IL-5、IL-13),促使Th0向Th2方向分化,引起Th1/Th2细胞免疫失衡。该过程中释放的Th2相关效应因子将加重AR中以嗜酸性粒细胞(Eosinophil,Eos)浸润为主的慢性炎性反应。本文通过介绍上述受体的结构、表达、功能、对应配体及信号转导通路,旨在初步探讨其在AR中的作用。
IL-33R又名ST2,其结构与IL-1类受体(IL-1R、IL-18R)类似,胞外部分含有3个Ig样结构域,胞内部分包含1个Toll受体样结构域[1]。IL-33R广泛表达于 Th2细胞、MC、Eos、嗜碱性粒细胞(basophil,Bas)、树突细胞(dendrite cell,DC)等免疫细胞中,上述细胞经IL-33R激活后可分泌多种细胞因子。IL-33R与IL-1受体辅助蛋白(IL-1 receptor accessory protein,IL-1RAcP)结合组成异二聚体后,招募下游的衔接蛋白髓样分化因子88(myeloid differentiation factor 88,MyD88),激活信号分子IL-1受体相关激酶(IL-1R-associated kinase,IRAK)和肿瘤坏死因子受体相关因子6(TNF receptor-associated factor 6,TRAF6)最终活化核因子-κB(nuclear factor-kappa B,NF-κB)和激活蛋白-1(activator protein-1,AP-1)[2]。
IL-33是IL-33R的唯一配体,可由非免疫细胞(成纤维细胞、上皮细胞、内皮细胞)及免疫细胞(DC、MC、巨噬细胞)产生。气道炎症过程中,变应原刺激上皮细胞引起细胞损伤并释放大量的IL-33。MC通过IL-33R识别环境中的IL-33并与之结合,在活化NF-κB的同时转录多种促炎基因并合成相应细胞因子(如 IL-1β、IL-5、IL-6、IL-8、IL-10、IL-13、TNF-α、MCP-1、PGD2、GM-CSF)及趋化因子(如 CCL1、CCL2、CCL3、CCL17、CCL22、CXCL8)[3-5]。这些因子同MC释放的脂质介质一起引发中性粒细胞募集、DC活化与迁移、Th0细胞分化等基础性炎性反应[6]。其中,由Th0细胞分化而成的Th2细胞及其释放的Th2相关效应因子(IL-4、IL-5、IL-13)将加剧AR发病过程中IgE介导的变态反应及以 Eos浸润为主的炎性反应[7]。Haenuki等[8]的研究发现AR小鼠的鼻黏膜中IL-33水平明显高于正常对照组。在实验条件下,使用IL-33拮抗剂可明显减轻鼠AR相关症状[9]。另外,血清学研究也显示AR患者IL-33水平明显增加[10]。以上均说明IL-33及其受体IL-33R参与了AR的疾病过程。
TSLPR属于造血细胞因子受体家族,其结构为I型细胞因子受体的异二聚体,由IL-7α亚单位和TSLPα链组成,其中TSLPα链是TSLPR的特异性亚单位[11]。TSLPR表达于B细胞、T细胞、MC、Eos及DC表面,但与其配体胸腺基质淋巴细胞生成素(thymic stromal lymphopoietin,TSLP)亲和力非常低,只有在IL-7受体α链的作用下,TSLPR才可与TSLP形成高亲和力的受体复合物,并在激活Btk、Lyn及Tec激酶后诱导非受体型蛋白酪氨酸磷酸酶6(protein-tyrosine phosphatase,nonreceptor-type 6,Ptpn6)及11(protein-tyrosine phosphatase,nonreceptor-type 11,Ptpn11)等蛋白磷酸酶的磷酸化,完成信号转导过程[12]。
TSLP主要由上皮细胞、基质细胞生成,同时MC、DC也有生成TSLP的能力。AR中,变应原与鼻黏膜上皮细胞、MC接触后,分别通过β连环蛋白途径及caspase-1/NF-κB通路促使这2种细胞分泌TSLP[13-14]。TSLP又通过MC表面的TSLPR诱发MC 释放 IL-5、IL-13、GM-CSF[15]。其中,IL-5 和 IL-13 作为 Th2相关效应因子具有增强Eos介导的炎性反应和IgE介导的免疫反应的能力,而GM-CSF除可引起Eos炎性反应外还能够促进Th2细胞的致敏[14]。研究显示:AR患者鼻黏膜中TSLP表达增高,阻断TSLP后可减轻气道变应性炎症状况[16-17]。Zhu[18]和Mou等[16]的研究发现:AR患者鼻黏膜中的TSLP水平与症状严重程度存在相关性,提示TSLPR及其配体TSLP可以作为AR的潜在治疗靶点。
TLR4是一种模式识别受体,属Toll样受体家族,是目前变应性疾病中研究较多的一种受体。TLR4与其他Toll样受体结构相似,其膜外区由富集亮氨酸的重复序列组成,胞质区则包含一段保守序列——TIR区域(Toll/interleukin-1 receptor domain)[19]。TLR4 与配体脂多糖(lip polysaccharide,LPS)结合可激活信号通路MyD88和β干扰素TIR结构域衔接蛋白(TIR-domain-containing adaptor inducing interferon-β,TRIF),最终活化NF-κB[20]。TLR4几乎表达于所有的细胞系,在骨髓单核细胞中尤其多见。
实验条件下,用LPS刺激小鼠骨髓源性MC可引起多种细胞因子(如 IL-1β、IL-5、IL-6、IL-10、IL-13、TNF-α)及趋化因子(CCL3、CXCL2)的分泌,但人 MC 只分泌 TNF-α、CCL1 及 IL-5,且上述两过程均不伴MC脱颗粒[21]。目前人们普遍接受的是:在包括AR在内的气道高反应性疾病中,MC根据LPS剂量的高低分别发生不同的反应[22]。低剂量的LPS仅促使MC释放IL-1β、IL-6两种促炎因子;而高剂量的LPS通过TLR4与MC结合后,使MC高表达红系特异核蛋白转录因子GATA-1并大量转录Th2相关效应因子IL-4、IL-5、IL-13。IL-4作用于Th2细胞后,增加其表达的GATA-3进一步引起IL-5、IL-13的释放[23]。IL-4、IL-5、IL-13共同大量释放的结果即为放大以Eos浸润为主的气道炎性反应。
虽然关于TLR4表达水平与AR关系的研究较多,但结果各异。Fransson等[24]和 Ekman等[25]发现 AR 患者鼻黏膜、外周血和骨髓中TLR4表达均增高;Lauriello等[26]却发现AR患者鼻黏膜TLR4的表达较正常人显著减少。采用TLR4兴奋剂CRX-675治疗AR的临床试验发现:兴奋TLR4仅可改善鼻黏膜充血状况[27]。因此,AR患者体内TLR4的表达水平是增加或是减少仍需进一步验证。此外,Hussein等[28]的研究证实TLR4基因的变异与AR的严重程度具有相关性。表1分别列举了与肥大细胞相关的表面受体及其功能。
表1 与变应性鼻炎相关的肥大细胞表面受体
续表1 与变应性鼻炎相关的肥大细胞表面受体
AR主要靠药物治疗,其中抗组胺药及鼻用糖皮质激素发挥重要作用。虽然抗组胺药能够拮抗MC脱颗粒释放的组胺,鼻用糖皮质激素可抑制AR病程中存在的慢性炎性反应,但是这两种药物均未解决AR发病的源头——Th1/Th2细胞免疫失衡以及包括MC、Eos在内的多种免疫细胞浸润。本文所述的MC表面受体,即 IL-33R、TSLPR及TLR4,能够促使MC产生Th2相关效应因子,促发且维持Th2细胞偏向、强化鼻黏膜的慢性炎性反应,故以其为靶点治疗AR有进一步探讨的意义。
[1]Dinarello CA.An IL-1 family member requires caspase-1 processing and signals through the ST2 receptor[J].Immunity,2005,23(5):461-462.
[2]Mirchandani A S,Salmond R J,Liew F Y.Interleukin-33 and the function of innate lymphoid cells[J].Trends in immunology,2012,33(8):389-396.
[3]Nakae S,Morita H,Ohno T,et al.Role of interleukin-33 in innatetype immune cells in allergy[J].Allergol Int,2013,62:13-20.
[4]Ohno T,Morita H,Arae K,et al.Interleukin‐33 in allergy[J].Allergy,2012,67(10):1203-1214.
[5]Rogala B,Glück J.The role of interleukin-33 in rhinitis[J].Curr Allergy Asthma Rep,2013,13(2):196-202.
[6]Lunderius-Andersson C,Enoksson M,Nilsson G.Mast cells respond to cell injury through the recognition of IL-33[J].Frontiers Immunol,2012,3:82.
[7]Kamekura R,Kojima T,Takano K,et al.The role of IL-33 and its receptor ST2 in human nasal epithelium with allergic rhinitis[J].Clin Exp Allergy,2012,42(2):218-228.
[8]Haenuki Y,Matsushita K,Futatsugi-Yumikura S,et al.A critical role of IL-33 in experimental allergic rhinitis[J].J Aller Clin Immunol,2012,130(1):184-194.
[9]Kim YH,Yang TY,Park CS,et al.Anti-IL-33 antibody has a therapeutic effect in a murine model of allergic rhinitis[J].Allergy,2012,67(2):183-190.
[10]Sakashita M,Yoshimoto T,Hirota T,et al.Association of serum interleukin-33 level and the interleukin-33 genetic variant with Japanese cedar pollinosis[J].Clin Experi Allergy,2008,38(12):1875-1881.
[11]Borowski A,Vetter T,Kuepper M,et al.Expression analysis and specific blockade ofthe receptorforhuman thymic stromal lymphopoietin(TSLP)by novel antibodies to the human TSLPRα receptor chain[J].Cytokine,2013,61(2):546-555.
[12]Zhong J,Kim MS,Chaerkady R,et al.TSLP signaling network revealed by SILAC-based phosphoproteomics[J].MolCell Proteomics,2012,11(6):M112.
[13]Moon PD,Jeong HJ,Kim HM.Effects of schizandrin on the expression of thymic stromal lymphopoietin in human mast cell line HMC-1[J].Life Sciences,2012,91(11-12):384-388.
[14]史剑波,李祖望,李华斌.变应性鼻炎的发病机制研究进展[J].中国医学文摘·耳鼻咽喉科学,2010,25(4):181-184.
[15]Wang YH,Liu YJ.Thymic stromal lymphopoietin,OX40-ligand,and interleukin-25 in allergic responses[J].Clin Experiment Allergy,2009,39(6):798-806.
[16]Mou Z,Xia J,Tan Y,et al.Overexpression of thymic stromal lymphopoietin in allergic rhinitis[J].Acta Oto-laryngologica,2009,129(3):297-301.
[17]Seshasayee D,Lee WP,Zhou M,et al.In vivo blockade of OX40 ligand inhibits thymic stromal lymphopoietin driven atopic inflammation[J].J Clin Investi,2007,117(12):3868-3878.
[18]Zhu DD,Zhu XW,Jiang XD,et al.Thymic stromal lymphopoietin expression is increased in nasal epithelial cells of patients with mugwort pollen sensitive-seasonal allergic rhinitis[J].Chin Med J(English),2009,122(19):2303-2307.
[19]Ahmed A,Redmond HP,Wang JH.Links between Toll-like receptor 4 and breast cancer[J].OncoImmunology,2013,2(2):e22945.
[20]Ahmed S,Maratha A,Butt A Q,et al.TRIF-mediated TLR3 and TLR4 signaling is negatively regulated by ADAM15[J].J Immunol,2013,190(5):2217-2228.
[21]Sandig H,Bulfone-Paus S.TLR signaling in mast cells:common and unique features[J].Frontiers immunol,2012,3:185.
[22]Nigo YI,Yamashita M,Hirahara K,et al.Regulation of allergic airway inflammation through Toll-like receptor 4-mediated modification of mast cell function[J].Proceed Nat Acad of Sci USA,2006,103(7):2286-2291.
[23]Yamashita M,Nakayama T.Progress in allergy signal research on mast cells:regulation of allergic airway inflammation through toll-like receptor 4-mediated modification of mast cell function[J].J Pharmacol Sci,2008,106(3):332-335.
[24]Fransson M,Adner M,Erjeflt J,et al.Up-regulation of Toll-like receptors 2,3 and 4 in allergic rhinitis[J].Respir Res,2005,6:100.
[25]Ekman AK,Virtala R,Fransson M,et al.Systemic up-regulation of TLR4 causeslipopolysaccharide-induced augmentation ofnasal cytokine release in allergic rhinitis[J].Int Arch Allergy Immunol,2012,159(1):6-14.
[26]Lauriello M,Micera A,Muzi P,et al.TLR4 and TLR9 Expression in Different Phenotypes of Rhinitis[J].Int J Otolaryngol,2012,2012:925164
[27]Casale TB,Kessler J,Romero FA.Safety of the intranasal toll-like receptor 4 agonist CRX-675 in allergic rhinitis[J].Ann Allergy Asthma Immunol,2006,7(4):454-456.
[28]Hussein YM,Awad HA,Shalaby SM,et al.Toll-like receptor 2 and Toll-like receptor 4 polymorphisms and susceptibility to asthma and allergic rhinitis:a case-control analysis[J].Cell Immunol,2012,274(1/2):34-38.