高效液相色谱法测定14种人参皂苷的研究

陈书华+朴文香+白龙律+迟美丽+金恩华+马正赫+武伦鹏

摘要：为准确可靠的定量分析14种人参皂苷，本文通过对高效液相色谱条件进行优化，确定了测定人参皂苷的HPLC条件，结果表明，最佳分析条件流动相为乙氰和水；C18柱；检测波长：203纳米；流速：1.0 毫升/分。该分析方法可以达到很好的分离效果，通过精密度、稳定性和回收率的计算，证明该方法具有良好的准确性和稳定性，是一种简单、高效的多种人参皂苷分析方法。

关键词：人参皂苷；高效液相色谱；检测方法

中图分类号： R49 文献标识码：A 文章编号： 1674-0432（2014）-12-22-2

1 材料与方法

1.1 药品及试剂

人参皂苷标准品Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re、Rg1、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD，三七皂苷标准品R1均购自成都曼思特生物科技有限公司；乙氰、甲醇为色谱纯均购自美国TEDIA公司。

1.2 实验仪器

Agilent 1100型高效液相色谱仪购自美国安捷伦公司。

1.3 实验方法

1.3.1 色谱条件 色谱柱：BDS HYPERSIL C18柱（250 毫米×4.6毫米，5微米）；柱温：25℃；检测波长：203纳米；流动相：水（A）和乙氰（B）；流速：1.0 毫升/分；梯度洗脱条件见表2.1。上述条件下标准混合溶液的分离效果见图1.1。

表1.1 高效液相色谱流动相梯度洗脱条件

图1.1 13种人参皂苷和1种三七皂苷混合标准溶液的HPLC图

（1, R1; 2, Rg1; 3, Re; 4, Rh1; 5, Rb1; 6, Rc; 7, F1; 8, Rb2;

9, Rd; 10, F2; 11, Rg3; 12, C-K; 13, Rh2; 14, PPD.）

1.3.2 溶液的配制 分别称取人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1标准品（精确至0.1毫克），溶解于甲醇，得到14种皂苷的混合标准溶液。

1.3.3 标准曲线的绘制 取不同浓度的人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混标溶液，按上述色谱条件测定峰面积，以峰面积为纵坐标，各单体皂苷浓度为横坐标，绘制标准曲线。

1.3.4 精密度实验 精密吸取稀释后的人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混标溶液，重复进样5次，测定含量，记录皂苷峰面积，计算平均值。

1.3.5 稳定性实验 精密吸取稀释后的人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混标溶液，分别于0、2、4、8、10小时进样，测定含量，记录皂苷峰面积，计算平均值。

1.3.6 加样回收率实验 精密称取已知含量的人参根总皂苷，分别精密加入人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1标准品，按照样品溶液制备方法制备，在相同色谱条件下，测定含量并计算回收率。

2 结果与讨论

2.1 标准曲线、线性范围、检出限（LOD）与定量限（LOQ）

以13种人参皂苷和1种三七皂苷的色谱峰面积对浓度作线性回归，由表1.2可看出，呈良好的线性关系，线性相关系数r2值均大于0.998。以峰强度与噪声比（S/N）为3确定最低检出限（LOD），该方法测定14种皂苷的检出限为0.0015~0.006 毫克/毫升；以S/N为10确定最低定量限（LOQ），本方法的定量限为0.005~0.02毫克/毫升。

表1.2 回归分析、检出限和定量限

2.2 精密度

精密吸取稀释后的14种皂苷混标溶液，重复进样5次，以峰面积计算，14种皂苷峰面积的相对标准偏差（RSD）均小于2%，结果见表1.3。

2.3 稳定性

精密吸取吸取稀释后的14种皂苷混标溶液，每隔2小时测定1次，以峰面积计算，14种皂苷峰面积的RSD均小于4%，结果见表1.4。

表1.3 精密度实验结果表1.4 稳定性实验结果2.4 加样回收率实验 14种皂苷的回收率为85.0%~118.8%，结果见表1.5。表1.5 加样回收率实验结果 注：回收率（%）=（实际测得含量-样品含量）/加入标准品含量×100% ND：Not detected.3 结语 本文通过对高效液相色谱条件进行优化，确定了测定人参皂苷及其转化产物的HPLC条件为：色谱柱：BDS HYPERSIL C18柱（250毫米×4.6毫米，5微米）；柱温：25℃；检测波长：203纳米；流动相：水（A）和乙氰（B），梯度洗脱；流速：1.0毫升/分。通过精密度、稳定性和回收率的计算，证明该方法具有良好的准确性和稳定性，是一种简单、高效的多种人参皂苷分析方法。参考文献 [1] Kim HS, Lee JH, Goo YS, Nah SY. Effect of ginsenosides on Ca2+ channels and membrane capacitance in rat adrenal chromaffin cells[J]. Brain Res Bull, 1998, 46(3): 245-251. [2] 张崇禧,郑友兰,张春红,罗维莹,鲍建材,刘刚.不同方法提取人参总皂苷工艺的优化研究[J].人参研究,2003,4：5-8. [3] Akao T, Kida H, Kanaoka M, Hattori M, Kobashi K. Intestinal bacterial hydrolysis is required for the appearance of compound K in rat plasma after oral administration of ginsenoside Rb1 from Panax ginseng [J]. J Pbarm Pharmacol, 1998, 50(10): 1155-1160. [4] 马吉胜,周秋丽,费晓方,孙晔,王本祥.真菌对人参皂苷Rb1及人参二醇系皂苷的代谢作用[J].药学学报,2001,36(8)：603-605. [5] Suda K, Murakami K, Murata J, Hasegawa H, Saiki I. An intestinal bacterial metabolite (M1) of ginseng protopanaxadiol saponins inhibits tumor-induced neovascularization [J]. Journal of Traditional Medicines,2000,17(4): 144-150. [6] 董淑华,陈波,马忠泽,侯秀云,陈英杰.人参皂苷的体内代谢反应研究[J].人参研究,2003,15(1)：2-6. [7] 阎天午,宋承吉,杜秀娟.人参首乌精中人参皂甙含量测定[J].中成药,1993,15(11)：14-16. [8] 王林,赵春杰,王书华.比色法测定君春乐胶囊中人参皂甙的含量[J].中国药学杂志,1995,30(6)：364-367. [9] 刘高峰,张丽梅.薄层扫描法测定肝适宁胶囊人参皂甙Rg1的含量[J].中国中药杂志,1996,21(9)：542. [10] Cui J,et al.Analysis of ginsenosides by chromatography and mass spectrometry,release of 20s-protopanadiol and 20s-protopanaxatriol for quantitation.Anal Biochem,1993,210(2):411. [11] Petersen T G,et al. Utilizing column selectivity in developing a high-performance liquid chromatographic method for ginsenoside assay.J Chromatogr,1990,504:139. [12] Wu C C,et al. Determination of ginsenosides in ginseng crude extracts by high-performance liquid chromatography.J Chromatogr,A 1994,685(2):243. [13] 马鹏,林涛,黄静.古方生脉散制剂中人参皂甙的反相高效液相色谱分离和含量测定[J].华西药学杂志,1995,10(1)：21. 作者简介：陈书华，本科学历，延边朝鲜族自治州产品质量检验所中心实验室，副主任，高级工程师，研究方向：天然活性物质生物转化；朴文香，硕士学历，延边大学，讲师，研究方向：化学工程与工艺；白龙律，硕士学历，延边州产品质量检验所，工程师，研究方向：参茸等产品质量检测；迟美丽，本科学历，国家参茸产品质量监督检验中心，副主任，研究方向：天然活性物质生物转化；金恩华，本科学历，国家参茸产品质量监督检验中心，工程师，研究方向：参茸等产品质量检测；马正赫，大专学历，国家参茸产品质量监督检验中心，助理工程师，研究方向：天然活性物质生物转化。 通讯作者：武伦鹏，博士，国家参茸产品质量监督检验中心，主任，研究方向：天然活性物质生物转化。 网络出版时间：2014-6-12 13:25:58 网络出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/22.1186.S.20140612.1325.003.html

摘要：为准确可靠的定量分析14种人参皂苷，本文通过对高效液相色谱条件进行优化，确定了测定人参皂苷的HPLC条件，结果表明，最佳分析条件流动相为乙氰和水；C18柱；检测波长：203纳米；流速：1.0 毫升/分。该分析方法可以达到很好的分离效果，通过精密度、稳定性和回收率的计算，证明该方法具有良好的准确性和稳定性，是一种简单、高效的多种人参皂苷分析方法。

关键词：人参皂苷；高效液相色谱；检测方法

中图分类号： R49 文献标识码：A 文章编号： 1674-0432（2014）-12-22-2

1 材料与方法

1.1 药品及试剂

人参皂苷标准品Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re、Rg1、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD，三七皂苷标准品R1均购自成都曼思特生物科技有限公司；乙氰、甲醇为色谱纯均购自美国TEDIA公司。

1.2 实验仪器

Agilent 1100型高效液相色谱仪购自美国安捷伦公司。

1.3 实验方法

1.3.1 色谱条件 色谱柱：BDS HYPERSIL C18柱（250 毫米×4.6毫米，5微米）；柱温：25℃；检测波长：203纳米；流动相：水（A）和乙氰（B）；流速：1.0 毫升/分；梯度洗脱条件见表2.1。上述条件下标准混合溶液的分离效果见图1.1。

表1.1 高效液相色谱流动相梯度洗脱条件

图1.1 13种人参皂苷和1种三七皂苷混合标准溶液的HPLC图

（1, R1; 2, Rg1; 3, Re; 4, Rh1; 5, Rb1; 6, Rc; 7, F1; 8, Rb2;

9, Rd; 10, F2; 11, Rg3; 12, C-K; 13, Rh2; 14, PPD.）

1.3.2 溶液的配制 分别称取人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1标准品（精确至0.1毫克），溶解于甲醇，得到14种皂苷的混合标准溶液。

1.3.3 标准曲线的绘制 取不同浓度的人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混标溶液，按上述色谱条件测定峰面积，以峰面积为纵坐标，各单体皂苷浓度为横坐标，绘制标准曲线。

1.3.4 精密度实验 精密吸取稀释后的人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混标溶液，重复进样5次，测定含量，记录皂苷峰面积，计算平均值。

1.3.5 稳定性实验 精密吸取稀释后的人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混标溶液，分别于0、2、4、8、10小时进样，测定含量，记录皂苷峰面积，计算平均值。

1.3.6 加样回收率实验 精密称取已知含量的人参根总皂苷，分别精密加入人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1标准品，按照样品溶液制备方法制备，在相同色谱条件下，测定含量并计算回收率。

2 结果与讨论

2.1 标准曲线、线性范围、检出限（LOD）与定量限（LOQ）

以13种人参皂苷和1种三七皂苷的色谱峰面积对浓度作线性回归，由表1.2可看出，呈良好的线性关系，线性相关系数r2值均大于0.998。以峰强度与噪声比（S/N）为3确定最低检出限（LOD），该方法测定14种皂苷的检出限为0.0015~0.006 毫克/毫升；以S/N为10确定最低定量限（LOQ），本方法的定量限为0.005~0.02毫克/毫升。

表1.2 回归分析、检出限和定量限

2.2 精密度

精密吸取稀释后的14种皂苷混标溶液，重复进样5次，以峰面积计算，14种皂苷峰面积的相对标准偏差（RSD）均小于2%，结果见表1.3。

2.3 稳定性

精密吸取吸取稀释后的14种皂苷混标溶液，每隔2小时测定1次，以峰面积计算，14种皂苷峰面积的RSD均小于4%，结果见表1.4。

表1.3 精密度实验结果表1.4 稳定性实验结果2.4 加样回收率实验 14种皂苷的回收率为85.0%~118.8%，结果见表1.5。表1.5 加样回收率实验结果 注：回收率（%）=（实际测得含量-样品含量）/加入标准品含量×100% ND：Not detected.3 结语 本文通过对高效液相色谱条件进行优化，确定了测定人参皂苷及其转化产物的HPLC条件为：色谱柱：BDS HYPERSIL C18柱（250毫米×4.6毫米，5微米）；柱温：25℃；检测波长：203纳米；流动相：水（A）和乙氰（B），梯度洗脱；流速：1.0毫升/分。通过精密度、稳定性和回收率的计算，证明该方法具有良好的准确性和稳定性，是一种简单、高效的多种人参皂苷分析方法。参考文献 [1] Kim HS, Lee JH, Goo YS, Nah SY. Effect of ginsenosides on Ca2+ channels and membrane capacitance in rat adrenal chromaffin cells[J]. Brain Res Bull, 1998, 46(3): 245-251. [2] 张崇禧,郑友兰,张春红,罗维莹,鲍建材,刘刚.不同方法提取人参总皂苷工艺的优化研究[J].人参研究,2003,4：5-8. [3] Akao T, Kida H, Kanaoka M, Hattori M, Kobashi K. Intestinal bacterial hydrolysis is required for the appearance of compound K in rat plasma after oral administration of ginsenoside Rb1 from Panax ginseng [J]. J Pbarm Pharmacol, 1998, 50(10): 1155-1160. [4] 马吉胜,周秋丽,费晓方,孙晔,王本祥.真菌对人参皂苷Rb1及人参二醇系皂苷的代谢作用[J].药学学报,2001,36(8)：603-605. [5] Suda K, Murakami K, Murata J, Hasegawa H, Saiki I. An intestinal bacterial metabolite (M1) of ginseng protopanaxadiol saponins inhibits tumor-induced neovascularization [J]. Journal of Traditional Medicines,2000,17(4): 144-150. [6] 董淑华,陈波,马忠泽,侯秀云,陈英杰.人参皂苷的体内代谢反应研究[J].人参研究,2003,15(1)：2-6. [7] 阎天午,宋承吉,杜秀娟.人参首乌精中人参皂甙含量测定[J].中成药,1993,15(11)：14-16. [8] 王林,赵春杰,王书华.比色法测定君春乐胶囊中人参皂甙的含量[J].中国药学杂志,1995,30(6)：364-367. [9] 刘高峰,张丽梅.薄层扫描法测定肝适宁胶囊人参皂甙Rg1的含量[J].中国中药杂志,1996,21(9)：542. [10] Cui J,et al.Analysis of ginsenosides by chromatography and mass spectrometry,release of 20s-protopanadiol and 20s-protopanaxatriol for quantitation.Anal Biochem,1993,210(2):411. [11] Petersen T G,et al. Utilizing column selectivity in developing a high-performance liquid chromatographic method for ginsenoside assay.J Chromatogr,1990,504:139. [12] Wu C C,et al. Determination of ginsenosides in ginseng crude extracts by high-performance liquid chromatography.J Chromatogr,A 1994,685(2):243. [13] 马鹏,林涛,黄静.古方生脉散制剂中人参皂甙的反相高效液相色谱分离和含量测定[J].华西药学杂志,1995,10(1)：21. 作者简介：陈书华，本科学历，延边朝鲜族自治州产品质量检验所中心实验室，副主任，高级工程师，研究方向：天然活性物质生物转化；朴文香，硕士学历，延边大学，讲师，研究方向：化学工程与工艺；白龙律，硕士学历，延边州产品质量检验所，工程师，研究方向：参茸等产品质量检测；迟美丽，本科学历，国家参茸产品质量监督检验中心，副主任，研究方向：天然活性物质生物转化；金恩华，本科学历，国家参茸产品质量监督检验中心，工程师，研究方向：参茸等产品质量检测；马正赫，大专学历，国家参茸产品质量监督检验中心，助理工程师，研究方向：天然活性物质生物转化。 通讯作者：武伦鹏，博士，国家参茸产品质量监督检验中心，主任，研究方向：天然活性物质生物转化。 网络出版时间：2014-6-12 13:25:58 网络出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/22.1186.S.20140612.1325.003.html

摘要：为准确可靠的定量分析14种人参皂苷，本文通过对高效液相色谱条件进行优化，确定了测定人参皂苷的HPLC条件，结果表明，最佳分析条件流动相为乙氰和水；C18柱；检测波长：203纳米；流速：1.0 毫升/分。该分析方法可以达到很好的分离效果，通过精密度、稳定性和回收率的计算，证明该方法具有良好的准确性和稳定性，是一种简单、高效的多种人参皂苷分析方法。

关键词：人参皂苷；高效液相色谱；检测方法

中图分类号： R49 文献标识码：A 文章编号： 1674-0432（2014）-12-22-2

1 材料与方法

1.1 药品及试剂

人参皂苷标准品Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re、Rg1、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD，三七皂苷标准品R1均购自成都曼思特生物科技有限公司；乙氰、甲醇为色谱纯均购自美国TEDIA公司。

1.2 实验仪器

Agilent 1100型高效液相色谱仪购自美国安捷伦公司。

1.3 实验方法

1.3.1 色谱条件 色谱柱：BDS HYPERSIL C18柱（250 毫米×4.6毫米，5微米）；柱温：25℃；检测波长：203纳米；流动相：水（A）和乙氰（B）；流速：1.0 毫升/分；梯度洗脱条件见表2.1。上述条件下标准混合溶液的分离效果见图1.1。

表1.1 高效液相色谱流动相梯度洗脱条件

图1.1 13种人参皂苷和1种三七皂苷混合标准溶液的HPLC图

（1, R1; 2, Rg1; 3, Re; 4, Rh1; 5, Rb1; 6, Rc; 7, F1; 8, Rb2;

9, Rd; 10, F2; 11, Rg3; 12, C-K; 13, Rh2; 14, PPD.）

1.3.2 溶液的配制 分别称取人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1标准品（精确至0.1毫克），溶解于甲醇，得到14种皂苷的混合标准溶液。

1.3.3 标准曲线的绘制 取不同浓度的人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混标溶液，按上述色谱条件测定峰面积，以峰面积为纵坐标，各单体皂苷浓度为横坐标，绘制标准曲线。

1.3.4 精密度实验 精密吸取稀释后的人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混标溶液，重复进样5次，测定含量，记录皂苷峰面积，计算平均值。

1.3.5 稳定性实验 精密吸取稀释后的人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混标溶液，分别于0、2、4、8、10小时进样，测定含量，记录皂苷峰面积，计算平均值。

1.3.6 加样回收率实验 精密称取已知含量的人参根总皂苷，分别精密加入人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1标准品，按照样品溶液制备方法制备，在相同色谱条件下，测定含量并计算回收率。

2 结果与讨论

2.1 标准曲线、线性范围、检出限（LOD）与定量限（LOQ）

以13种人参皂苷和1种三七皂苷的色谱峰面积对浓度作线性回归，由表1.2可看出，呈良好的线性关系，线性相关系数r2值均大于0.998。以峰强度与噪声比（S/N）为3确定最低检出限（LOD），该方法测定14种皂苷的检出限为0.0015~0.006 毫克/毫升；以S/N为10确定最低定量限（LOQ），本方法的定量限为0.005~0.02毫克/毫升。

表1.2 回归分析、检出限和定量限

2.2 精密度

精密吸取稀释后的14种皂苷混标溶液，重复进样5次，以峰面积计算，14种皂苷峰面积的相对标准偏差（RSD）均小于2%，结果见表1.3。

2.3 稳定性

精密吸取吸取稀释后的14种皂苷混标溶液，每隔2小时测定1次，以峰面积计算，14种皂苷峰面积的RSD均小于4%，结果见表1.4。

表1.3 精密度实验结果表1.4 稳定性实验结果2.4 加样回收率实验 14种皂苷的回收率为85.0%~118.8%，结果见表1.5。表1.5 加样回收率实验结果 注：回收率（%）=（实际测得含量-样品含量）/加入标准品含量×100% ND：Not detected.3 结语 本文通过对高效液相色谱条件进行优化，确定了测定人参皂苷及其转化产物的HPLC条件为：色谱柱：BDS HYPERSIL C18柱（250毫米×4.6毫米，5微米）；柱温：25℃；检测波长：203纳米；流动相：水（A）和乙氰（B），梯度洗脱；流速：1.0毫升/分。通过精密度、稳定性和回收率的计算，证明该方法具有良好的准确性和稳定性，是一种简单、高效的多种人参皂苷分析方法。参考文献 [1] Kim HS, Lee JH, Goo YS, Nah SY. Effect of ginsenosides on Ca2+ channels and membrane capacitance in rat adrenal chromaffin cells[J]. Brain Res Bull, 1998, 46(3): 245-251. [2] 张崇禧,郑友兰,张春红,罗维莹,鲍建材,刘刚.不同方法提取人参总皂苷工艺的优化研究[J].人参研究,2003,4：5-8. [3] Akao T, Kida H, Kanaoka M, Hattori M, Kobashi K. Intestinal bacterial hydrolysis is required for the appearance of compound K in rat plasma after oral administration of ginsenoside Rb1 from Panax ginseng [J]. J Pbarm Pharmacol, 1998, 50(10): 1155-1160. [4] 马吉胜,周秋丽,费晓方,孙晔,王本祥.真菌对人参皂苷Rb1及人参二醇系皂苷的代谢作用[J].药学学报,2001,36(8)：603-605. [5] Suda K, Murakami K, Murata J, Hasegawa H, Saiki I. An intestinal bacterial metabolite (M1) of ginseng protopanaxadiol saponins inhibits tumor-induced neovascularization [J]. Journal of Traditional Medicines,2000,17(4): 144-150. [6] 董淑华,陈波,马忠泽,侯秀云,陈英杰.人参皂苷的体内代谢反应研究[J].人参研究,2003,15(1)：2-6. [7] 阎天午,宋承吉,杜秀娟.人参首乌精中人参皂甙含量测定[J].中成药,1993,15(11)：14-16. [8] 王林,赵春杰,王书华.比色法测定君春乐胶囊中人参皂甙的含量[J].中国药学杂志,1995,30(6)：364-367. [9] 刘高峰,张丽梅.薄层扫描法测定肝适宁胶囊人参皂甙Rg1的含量[J].中国中药杂志,1996,21(9)：542. [10] Cui J,et al.Analysis of ginsenosides by chromatography and mass spectrometry,release of 20s-protopanadiol and 20s-protopanaxatriol for quantitation.Anal Biochem,1993,210(2):411. [11] Petersen T G,et al. Utilizing column selectivity in developing a high-performance liquid chromatographic method for ginsenoside assay.J Chromatogr,1990,504:139. [12] Wu C C,et al. Determination of ginsenosides in ginseng crude extracts by high-performance liquid chromatography.J Chromatogr,A 1994,685(2):243. [13] 马鹏,林涛,黄静.古方生脉散制剂中人参皂甙的反相高效液相色谱分离和含量测定[J].华西药学杂志,1995,10(1)：21. 作者简介：陈书华，本科学历，延边朝鲜族自治州产品质量检验所中心实验室，副主任，高级工程师，研究方向：天然活性物质生物转化；朴文香，硕士学历，延边大学，讲师，研究方向：化学工程与工艺；白龙律，硕士学历，延边州产品质量检验所，工程师，研究方向：参茸等产品质量检测；迟美丽，本科学历，国家参茸产品质量监督检验中心，副主任，研究方向：天然活性物质生物转化；金恩华，本科学历，国家参茸产品质量监督检验中心，工程师，研究方向：参茸等产品质量检测；马正赫，大专学历，国家参茸产品质量监督检验中心，助理工程师，研究方向：天然活性物质生物转化。 通讯作者：武伦鹏，博士，国家参茸产品质量监督检验中心，主任，研究方向：天然活性物质生物转化。 网络出版时间：2014-6-12 13:25:58 网络出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/22.1186.S.20140612.1325.003.html