王万宏,王亚林,卢庆韬
自体骨髓间充质干细胞移植对脑出血患者血清S100β、GFAP的影响
王万宏1,王亚林1,卢庆韬2
(1.唐山市丰南区医院神经外科,河北唐山063300;2.唐山市工人医院分院外科)
非创伤性脑出血最常见的原因为高血压性脑出血。长期的高血压导致脑动脉粥样硬化,脑动脉粥样斑块形成。当遇诱发因素存在时,血压骤然升高,从而导致脑出血发生。大多数脑出血患者都有脑组织损伤和神经功能缺损。促进受损脑组织修复是当前脑出血治疗的主要任务。以往研究表明,自体骨髓间充质干细胞(MSCs)移植能改善神经功能缺损程度并提高日常生活活动能力[1,2],但对脑出血患者脑组织损伤血清标志物的影响尚未见报道。本研究观察自体MSCs移植对脑出血患者血清S100β、胶质纤维酸性蛋白(GFAP)的影响,为脑出血的临床治疗提供参考。
1.1一般资料
选择2010年1月-2013年7月我院收治的脑出血患者60例为研究对象,均行钻孔引流术,术后1周行自体骨髓间充质干细胞移植30例为观察组,行常规治疗30例为对照组。观察组:男18例,女12例;年龄40.5-68.0岁,平均年龄(54.0±6.5)岁;CT定位出血均为基底核区;出血量:20-30ml 10例,30-50ml 13例,>50ml 7例;患肢肌力0级9例,Ⅰ-Ⅱ级12例,Ⅲ-Ⅳ级9例。对照组:男19例,女11例;年龄41.0-67.5岁,平均年龄(54.3±6.2)岁;CT定位出血均为基底核区;出血量:20-30ml 9例,30-50ml 13例,>50ml 8例;患肢肌力0级10例,Ⅰ-Ⅱ级11例,Ⅲ-Ⅳ级9例。两组患者性别、年龄、出血部位、出血量、患肢肌力等资料比较,差异无统计学意义,具有可比性。
1.2纳入及排除标准
纳入标准:①年龄<80岁,发病后有失语、偏瘫、运动障碍等神经功能缺损症状;②有钻孔引流手术指征;③取得患者家属的知情同意,并签署知情同意书。排除标准:①年龄≥80岁,有严重过敏史的过敏体质者;②合并心、肝、肾等其他脏器严重功能障碍者;③凝血机制障碍者;④对MSCs移植治疗期望过高,有不切实际要求者。
1.3骨髓采集
患者进手术室于局部麻醉下行骨髓穿刺术,以髂后上棘为穿刺点,30号骨髓穿刺针进行穿刺,20 ml干燥无菌注射器于两侧髂后上棘共抽取120-180 ml骨髓,注入细胞培养液中,迅速送至无菌细胞培养室。骨髓穿刺术后将患者送入ICU重症监护室,注意监测生命体征[3]。
1.4MSCs的分离和培养
MSCs分离:无菌采集抗凝骨髓120-180ml;消毒采血袋壁及输液管,将试剂A液、B液均加至骨髓液中,静置40min;吸取上层液体转移至离心管,以1 500rpm转速离心10min;弃上清,将适量C液加入各离心管中,吹打混匀细胞制成细胞悬液,离心10min;用吸管将细胞层转移至另一离心管中,加入适量A液,以1 500rpm转速离心5min;弃上清,以1 800rpm离心5min;吸取少量细胞悬液,滴于细胞计数板,显微镜下观察计数。MSCs培养:调整细胞密度为1.0×107/ml接种于细胞培养瓶中,置于37℃,含5%CO2饱和湿度的细胞培养箱;培养至第4d,去除未贴壁的悬浮死细胞,换完全细胞培养液;每3d换液1次,待细胞生长融合达瓶底面积的80-90%时,加入含0.25%胰蛋白酶的消化液2ml至培养瓶中,置于37℃培养箱消化约1min,取出培养瓶,显微镜下观察,见细胞收缩成类圆形的细胞,加入中和胰蛋白酶3ml于培养液中,以防过度消化。把溶液倒入离心管中,加入完全培养液反复吹打,吸弃气泡,以1 500rpm转速离心5min,弃上清,反复吹打后,加入完全培养液5ml,调整细胞数为5×105/ml,移到细胞培养瓶中培养5-7d。按1∶2比例传代,2-3d换液一次,期间观察待细胞基本融合后,用0.25%胰蛋白酶5ml溶解,往培养液中加入完全培养液,吹打制备单细胞悬液[4]。
1.5 MSCs的移植
患者躺于平板床上,取左侧卧位,屈髋屈膝,头尽量曲向前胸,背部与床面垂直;穿刺点选择3-4腰椎棘突间隙。常规消毒,铺无菌洞巾,以2%利多卡因3ml行局部浸润麻醉,麻醉至椎间韧带,以9号穿刺针以垂直背部方向自穿刺点刺入约5cm左右,待针尖抵抗感消失,缓慢拔出针芯。无色透明的脑脊液流出表示穿刺成功,将MSCs细胞悬液5ml缓慢注入蛛网膜下腔,穿入针芯,拔出穿刺针,无菌纱布覆盖,胶布固定,嘱患者去枕平卧6h。
1.6血清S100β、GFAP检测方法
采用双抗体夹心酶联免疫吸附法(ELISA)检测血清S100β、GFAP,试剂盒均购自北京尚柏生物工程公司,严格按试剂盒说明进行操作。具体步骤:自密封袋中取出ELISA板并标记;分别加入10μl标准品、10μl血清于板孔中,轻轻混匀,每孔加入200μl抗体,混匀30s,37℃温育30min;洗涤反应板5次,每孔加入100μl HRP,混匀10s,37℃温育30min;洗涤反应板5次,每孔加入200μl TNB显色液,混匀后室温温育20min;每孔加入100μl终止液,轻轻混匀30s,30min内在450nm处读OD值;制标准曲线,确定血清样品S100β、GFAP浓度。
1.7统计学处理
采用SPSS18.0软件包进行统计,计量资料结果以均数±标准差(x—±s)表示,组间比较采用t检验,以P<0.05为差异有统计学意义。
2.1自体MSCs移植对脑出血患者血清S100β的影响对照组和观察组患者血清S100β蛋白含量在干预1d、4d、7d均呈递减趋势(P<0.05);干预前及干预后1d观察组患者血清S100β蛋白与对照组差异无统计学意义,干预后4d、7d值均低于对照组(P<0.05),见表1。
表1 自体MSCs移植对脑出血患者血清S100β的影响(x—±s,n=30)
2.2自体MSCs移植对脑出血患者血清GFAP的影响两组干预后1d、4d、7d血清GFAP呈时间依赖性降低(P<0.05);观察组干预后4d、7d血清GFAP值均低于对照组,见表2。
脑出血发病率较高,占急性脑血管疾病的20%- 30%,其中高血压性脑出血是非创伤性脑出血的最常见原因。研究表明,在脑出血早期阶段,某些血清生化标志物可用来判断神经功能损害程度及范围,甚至优于CT及MRI等影像学检查[5]。星形胶质细胞是中枢神经系统分布最广的细胞,不仅能支持、营养神经元,而且参与宿主防御及组织修复。GFAP为星形胶质细胞中的主要的中间丝蛋白[6]。S100β蛋白存在于神经胶质细胞、星型细胞、少突胶质细胞中。当中枢神经受损时,S100β和GFAP溢出并通过血脑屏障进入血液。两者参与中枢神经系统损伤后的病理变化,可作为中枢神经系统损伤早期病情监测的血清标志物。
表2 自体MSCs移植对脑出血患者血清GFAP的影响(x—±s,n=30)
MSCs来源于中胚层,是一种多潜能干细胞,对中枢神经系统损伤或创伤修复具有一定作用。李计成[7]等对20例脑出血患者实施自体MSCs移植,发现移植后6个月患者神经功能缺损程度评定(NIHSS评分)和日常生活活动能力评定(Barthel指数)均明显提高,且具有安全性。朱建新[8]对32例脑出血患者进行自体MSCs移植治疗,证实其对脑出血患者安全可行,近期疗效确定。本研究进一步观察自体MSCs移植对脑出血患者血清S100β、GFAP的影响,结果显示:①观察组在脑出血1周接受自体MSCs移植后1d、4d、7d血清S100β蛋白依次降低,每一时间点S100β蛋白均低于对照组水平;②两组干预后1d、4d、7d血清GFAP呈时间依赖性降低;观察组干预后1d、4d、7d血清GFAP值均低于对照组。研究结果在分子水平证实,自体MSCs移植能减少血清神经细胞损伤标志物S100β、GFAP的水平,间接表明MSCs移植存活后,可多向分化为神经细胞,发挥促进神经组织修复、神经功能恢复的作用。
综上所述,MSCs不仅取材方便,无免疫原性,而且体外扩增迅速、可自体移植。能通过降低脑出血患者血清S100β、GFAP水平,促进脑出血患者神经细胞损伤的修复。
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2014-01-14)
1007-4287(2014)12-2011-03