苦参碱对早幼粒白血病HL-60细胞凋亡的影响

2014-04-29 17:49江梅宋庆林
中国保健营养·中旬刊 2014年3期
关键词:苦参碱苦参白血病

江梅 宋庆林

【摘 要】目的:探讨苦参碱对HL-60白血病细胞增殖及凋亡的影响。方法:运用MTT法和流式细胞术检测苦参碱对HL-60白血病细胞的增殖抑制及促凋亡作用, 应用实时定量PCR技术检测Bcl-2蛋白的表达。结果:随着苦参碱浓度的升高, 各项指标与对照组相比较的差异均有统计学意义(P<0.01);HL-60细胞增殖明显受到抑制;细胞凋亡率明显增加, 且当苦参碱浓度为2.0mg/ml时, 细胞凋亡率达65.84%;2.0mg/ml苦参碱作用72h后的细胞, bcl-2蛋白的表达较对照组显著减少。结论:苦参碱具有对HL60白血病细胞增殖抑制及促凋亡作用, bcl-2蛋白表达下调在此过程中可能发挥着重要的作用。

【关键词】苦参碱;HL-60细胞;cl-2蛋白

【文章编号】1004-7484(2014)03-01099-01

苦参碱(Mat)是传统中药苦参的有效成分,研究报道苦参碱类药具有显著抑制肿瘤增殖、诱导肿瘤分化和凋亡、抗肿瘤浸润和远处转移、抑制肿瘤新生血管形成、减轻肿瘤炎症和抑制肿瘤耐药性、减低化疗不良作用、增强肿瘤宿主免疫等功能[1]。本实验观察苦参碱对HL一60细胞增殖与分化方面的影响,并对其作用机制进行初步探讨,以期对白血病的治疗提供参考。国内研究发现苦参煎液对人早幼粒白血病细胞有诱导分化作用[2];近几年有人研究了苦参碱对K562细胞诱导分化作用、苦参抗人急性髓系自血病HL一60细胞作用[3~5]本实验采用苦参碱干预处理人急性早幼粒白血病HL一60细胞,进一步证实其对HL一60细胞的增殖抑制和促进诱导凋亡作用,并观察苦参碱诱导HL一60细胞凋亡时Bcl一2基因表达变化并探讨凋亡发生的机制。为开发新的抗肿瘤药物提供实验依据。

1 材料与方法

1.1 试验药物 苦参碱购自百灵威科技,货号KS-5203,经HPLC法鉴定纯度>98%。阳性药物顺铂购自江苏豪森药业股份有限公司(国药准字H20040813)。

1.2 细胞株 人早幼粒细胞白血病细胞株HL-60来自中国医学科学院基础医学研究所基础医学细胞中心。

1.3 试剂 RPMI1640培养液及四甲基偶氮唑蓝(MTT)均购自美国GIBCO公司;小牛血清购自杭州四季青生物有限公司;

1.4方法 细胞培养:HL-60细胞为悬浮生长的细胞,用含有10%小牛血清RPMI-1640培养基中,37.5℃、5%CO2饱和湿度条件下常规培养。每2 d换液传代,实验选用对数生长期细胞。

1.4.1 实验分组 实验分为阴性对照组,实验组(苦参碱低、中、高浓度组:0.5、1、2 mg/ml),顺铂阳性对照组(0.01 mg/ml)。

1.4.2 MTT比色法观察药物对细胞生长的影响 取处于对数生长期HL-60细胞,调整细胞浓度为2×105 /ml,接种于96孔培养板内。各苦参碱处理组给予相应浓度苦参碱,阳性对照组给予顺铂0.01 mg/ml,对照组给予与最高给药浓度组等量的药物溶媒。每个剂量设6个平行孔,重复3次。在37℃、5%CO2培养箱内培养24 h后,每孔加入MTT继续培养4 h,离心后吸去上清,加入DMSO显色,避光平行振荡10 min,在酶标仪上测定波长为490 nm处的吸光度,计算生长抑制率(%)=1-实验孔OD值/对照组OD值。

1.4.3流式细胞术检测苦参碱诱导HL60细胞的凋亡率以0.5、1.0、2.0mg/mL浓度的苦参碱作用72h后分别收集HL60细胞。按照试剂盒说明操作, PBS洗涤2次, 用结合缓冲液将细胞浓度调整为1×106/ml,取100ml加5ulAnnexin -V和10ulPI溶液,混匀。室温避光孵育15分钟后加入400ul缓冲液,上机检测。

1.4.4凋亡相关基因Bcl-2的mRNA表达检测 根据NCBI Gene banck中cDNA序列,按照互補原则,兼并Tm值、C+G含量等因素进行引物设计:

Bcl-2: 上游引物:5'- TGT GTG GAG AGC GTC AAA CC-3';

下游引物:5'- TGG ATC CAG GTG TGC AGG T-3';

根据上述引物,采用北京全式金实时定量RT-PCR试剂盒检测Bcl-2的 mRNA表达。

2 结果:

2.1 苦参碱对HL-60细胞生长抑制率的影响

对照组HL-60细胞生长活跃,而各剂量苦参碱处理组HL-60细胞生长相对缓慢。经MTT比色法测定得出,0.5 mg/ml组、1 mg/ml组和2 mg/ml组测得的吸光度均较对照组显著降低(P<0.01),表示苦参碱可显著抑制HL-60细胞的增殖。不同浓度苦参碱对HL60白血病细胞增殖有抑制作用, 而且这种作用呈时间-剂量依赖关系,随着苦参碱浓度增加或作用时间延长,HL60白血病细胞增殖抑制率增加, 详见表1、表2

2.2苦参碱对HL-60细胞凋亡的影响:

HL60细胞经0.5、1.0、2.0mg/ml的苦参碱分别作用24、48、72h后, 用流式细胞仪检测细胞凋亡率。结果显示:在一定的浓度范围内(0.5~2.0mg/ml)苦参碱诱导HL60细胞凋亡的作用随着苦参碱浓度的增加而增强, 具有浓度依赖性;随着作用的时间延长苦参碱的诱导凋亡作用也增强, 差异有统计学意义(P<0.01)见表3。结果提示:一定浓度范围内(0.5~2.0mg/ml)苦参碱诱导细胞凋亡作用呈时间-剂量依赖关系。

Annexin -V FITC/PI双染法FCM检测显示,不同浓度苦参碱作用48h对HL-60细胞凋亡利率Annexin -V(+)/PI(-)的影响(n=5)见表3。如表3所示,不同浓度苦参碱作用后,细胞凋亡率明显高于空白对照组(p<0.01),且随浓度的增加凋亡率从47.83%增加到65.84%。

为进一步检测苦参碱促进HL-60细胞凋亡的可能機制,本研究利用实时定量RT-PCR法检测了凋亡相关基因Bcl-2的mRNA表达。如表4所示,苦参碱0.5 mg/ml组对Bcl-2基因的表达无显著影响。苦参碱2.0 mg/ml组对Bcl-2基因具有显著的抑制作用(P<0.01)。

3 讨论:

苦参是我国传统的常用中医药,苦参碱是其主要的生物碱之一,已能提取和纯化,具有抑制肿瘤生长、抗感染等多种功能。白血病是一种常见的肿瘤性疾病,ALL是自血病中常见一种类型,在小儿尤其多见。目前主要采用化疗和骨髓移植,费用昂贵,且化疗副作用大,开发中药治疗是治疗白血病的一个方向。经MTT比色法测定得出,0.5 mg/ml组、1 mg/ml组和2 mg/ml组测得的吸光度均较对照组显著降低,表示苦参碱可显著抑制HL-60细胞的增殖。不同浓度苦参碱对HL60白血病细胞增殖有抑制作用, 而且这种作用呈时间-剂量依赖关系,随着苦参碱浓度增加或作用时间延长,HL60白血病细胞增殖抑制率增加, 见表1、表2。

本结果发现苦参碱对ALL细胞的增殖有抑制作用,苦参碱在相对低浓度下(0.5 mg/m1)对ALL细胞有诱导凋亡作用,但相对高浓度时的(2mg/m1)可见细胞抑制率明显增高。在一定的浓度范围内(0.5~2.0mg/ml)苦参碱诱导HL60细胞凋亡的作用随着苦参碱浓度的增加而增强, 具有浓度依赖性;随着作用的时间延长苦参碱的诱导凋亡作用也增强, 差异有统计学意义(P<0.01)见表3。结果提示:一定浓度范围内(0.5~2.0mg/ml)苦参碱诱导细胞凋亡作用呈时间-剂量依赖关系。现已证明,细胞凋亡调控蛋白与白血病发生、发展有密切关系。近年研究表明Bcl一2参与了细胞诱导、分化、凋亡的调控,Bcl一2家族成员在内源性凋亡途径(线粒体途径)中起着重要作用。Bcl一2家族成员包括抑制凋亡的基因和促凋亡基因,本实验通过RT—PCR检测发现,苦参碱在0.5—1.0mg/mL浓范围内,随着苦参碱浓度的增加,Bcl一2的表达逐渐减少,与苦参碱的浓度呈反比关系。说明苦参碱诱导细胞凋亡的过程中,抑凋亡基因Bcl一2表达减少,同时也表明Bcl一2基因在苦参碱诱导细胞凋亡中起着一定的调控作用。

研究发现一定浓度苦参碱作用ALL细胞可引起生长抑制,具有一定的凋亡诱导作用。利用实时定量RT-PCR法检测了凋亡相关基因Bcl-2的mRNA表达。如表4所示,苦参碱0.5 mg/ml组对上述基因的表达无显著影响。对抑凋亡基因Bcl-2具有显著的抑制作用(P<0.05或P<0.01)RT-PCR法检测发现苦参碱作用后的ALL细胞Bd一2阳性率呈明显的下降趋势,苦参碱可下调ALL细胞Bcl.2表达,推测苦参碱对ALL细胞生长抑制作用可能与其下调ALL细胞Bcl一2基因表达有关,进一步研究其机制,开发并把苦参碱应用于临床将具有重要意义。

已有研究证实,苦参碱对白血病细胞的增殖具有明显的抑制作用,能促进白血病细胞凋亡,并能诱导白血病细胞从功能上向成熟细胞分化。说明苦参碱具有抗白血病的作用,可能是通过抑制肿瘤细胞增殖和诱导凋亡实现的。至于苦参碱对HL-60细胞抑制增殖和诱导分化作用的具体机制还需要我们进一步的探索。

参考文献:

[1] 张鸣杰,黄摇 建援 苦参碱类抗肿瘤作用机制研究的新进展[J]援 中国中药杂志,2004,29 (2);115

[2] 徐建国,马俊荣,杨贵生,任连生,郭亚东,张鸿翔.苦参煎液对人早幼粒自血病细胞的诱导分化研究[J].中国中药杂志,1990,15(10):49—50.

[3] 张彦,蒋纪恺,刘小珊。刘百忠,许湘儒,何渝军,等.苦参碱诱导K562白血病细胞分化和凋亡的实验研究[J].癌症,2000,19(8):756—758.

[4] 张莉萍,蒋纪恺,谭荣安,刘小珊,张彦,许湘儒,等.苦参碱对K562细胞株端粒酶活 性和细胞周期的影响[J].中华肿瘤杂志,1998,20(5):328—329.

[5] 谭孟群,罗志勇,王绮如,蒋德昭.苦参抗自血病作用及其机制[J].湖南医科大学学报,2000,25(5):443—445.

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