倪程耀,陈 新,吴胜军(浙江大学医学院附属第一医院,杭州 310003)
肺缺血再灌注损伤(Lung ischemia reperfusion injury,LIRI)常发生在体外循环手术、肺移植、肺栓塞治疗恢复血液供应后,是在缺血的基础上机体继发的再灌注损伤,会导致患者临床症状不减轻反而加重的病理状态,是危害患者恢复健康的重要障碍[1]。随着人们对LIRI发病机制的深入研究,已应用多种药物治疗LIRI,并取得了良好的效果。利多卡因作为一种膜稳定剂,广泛地应用于多种疾病的治疗,现研究认为其能保护肺泡上皮细胞的功能,可减轻肺损伤[2]。因此本研究应用大鼠建立LIRI模型,体外给予利多卡因干预,观察其对LIRI的保护作用。
DH-150型动物呼吸机(浙江大学医学仪器厂)。
利多卡因注射液(江苏济川制药有限公司,批号:080531,规格:40 mg ∶5 ml);苯巴比妥钠注射液(广东邦民制药有限公司,批号:041042,规格:100 mg ∶1 ml);肿瘤坏死因子α(TNF-α)、白细胞介素(IL)-1、IL-6和IL-8检测试剂盒(美国eBioscience公司)。
大鼠经耳缘静脉注射30 mg/kg的苯巴比妥钠麻醉,气管切开后插管,接动物呼吸机控制呼吸,呼吸频率60次/min,潮气量单侧肺通气8~10 ml/kg,双侧肺通气15~20 ml/kg,呼吸比1 ∶2。然后经胸骨右缘第3~5肋间开胸,离断周围组织,游离左肺门,呼气末时结扎右肺门,60 min后开放行再灌注,制成LIRI模型。
取90只大鼠随机均分为假手术组、模型组和预处理组,每组30只。模型组大鼠行左肺缺血再灌注,即开胸游离左肺门后,阻断左肺门60 min,而后松开血管夹形成再灌注;假手术组大鼠只开胸而不行左肺缺血再灌注;预处理组大鼠术前15 min注射利多卡因1.2 mg/kg,并以1 mg/(kg·h)维持30 min,阻断左肺门60 min,而后松开血管夹形成再灌注。
各组大鼠于缺血30 min和再灌注60、120 min时采集标本。采集大鼠支气管肺泡灌洗液,采用考马斯亮蓝染色法对其蛋白总量(TP)进行测定;收集支气管肺泡灌洗液沉渣,计数白细胞(WBC)数量,并采用瑞氏染色进行白细胞分类,计算中性粒细胞(PMN)比例;取一定的肺组织,应用天平称量其湿质量(W),置于70 ℃烤箱烘烤48 h后,测量其干质量(D),计算肺组织的湿/干质量(W/D)比值;取肺组织配制成10%的组织匀浆,采用酶联免疫吸附双抗体夹心法(ELISA)检测肺组织匀浆中TNF-α、IL-1、IL-6、IL-8含量,操作步骤严格按照试剂盒说明书进行。
与假手术组比较,模型组大鼠再灌注60、120 min时和预处理组再灌注120 min时TP、WBC数量、PMN比例、W/D比值均明显升高,差异具有统计学意义(P<0.05);与模型组比较,预处理组大鼠再灌注60、120 min时TP、WBC数量、PMN比例、W/D比值均明显降低,差异具有统计学意义(P<0.05)。各组大鼠肺泡灌洗液中TP、WBC数量、PMN比例和W/D比值比较见表1。
表1 各组大鼠肺泡灌洗液中TP、WBC数量、PMN比例和W/D比值比较(,n=10)Tab 1 Comparison of TP,WBC,PMN proportion andW/D in bronchoalveolar lavage fluid in each group rats(,n=10)
表1 各组大鼠肺泡灌洗液中TP、WBC数量、PMN比例和W/D比值比较(,n=10)Tab 1 Comparison of TP,WBC,PMN proportion andW/D in bronchoalveolar lavage fluid in each group rats(,n=10)
与假手术组比较:*P<0.05;与模型组比较:#P<0.05vs.sham operation group:*P<0.05;vs.model group:#P<0.05
与假手术组比较,模型组大鼠再灌注60、120 min时和预处理组再灌注120 min时肺组织匀浆中TNF-α、IL-1、IL-6及IL-8含量均明显升高,差异具有统计学意义(P<0.05);与模型组比较,预处理组大鼠再灌注60、120 min时肺组织匀浆中TNF-α、IL-1、IL-6及IL-8含量均明显降低,差异具有统计学意义(P<0.05)。各组大鼠肺组织匀浆中TNF-α、IL-1、IL-6及IL-8含量比较见表2。
表2 各组大鼠肺组织匀浆中TNF-α、IL-1、IL-6及IL-8含量比较(,pg/ml,n=10)Tab 2 Comparison of the contents of TNF-α,IL-1,IL-6 and IL-8 in lung tissue homogenate in each group rats(,pg/ml,n=10)
表2 各组大鼠肺组织匀浆中TNF-α、IL-1、IL-6及IL-8含量比较(,pg/ml,n=10)Tab 2 Comparison of the contents of TNF-α,IL-1,IL-6 and IL-8 in lung tissue homogenate in each group rats(,pg/ml,n=10)
与假手术组比较:*P<0.05;与模型组比较:#P<0.05vs.sham operation group:*P<0.05;vs.model group:#P<0.05
近年来,由于LIRI的存在使应用心肺置换术、心肺转流术等的心肺疾病晚期患者临床症状加重,成为术后恢复健康的重要障碍。有报道称,肺移植术后因LIRI导致的死亡率高达16%~25%,严重影响了患者的生命健康,是临床亟需解决的问题[3]。有关LIRI的发病机制至今不明,但多数研究认为其与以下因素有关:氧自由基的释放、脂质过氧化反应、钙稳态的失衡、炎性物质的浸润、免疫因素的干扰及细胞凋亡[4]。其中,免疫因素的干扰占有举足轻重的地位。
免疫因素可通过以下途径参与到LIRI的发病机制中:(1)炎性细胞因子与相应受体结合,激活溶酶体使其溶解消化肺组织;(2)刺激血管内皮细胞分泌黏附分子,增加WBC的黏附作用及聚集作用;(3)刺激巨噬细胞分泌趋化性因子,加重炎症反应,可使PMN大量聚集,导致细胞坏死,释放过氧化物和溶酶体酶等,加剧免疫反应,从而导致肺组织损伤[5-7]。已有研究表明,在LIRI后的肺泡灌洗液中,TNF-α、IL-1、IL-6及IL-8含量显著高于血浆中水平,提示了免疫反应在LIRI方面的重要性[8]。从本研究可以看出,模型组大鼠W/D比值及肺泡灌洗液中WBC数量、PMN比例及TP明显高于假手术组(P<0.05),说明在再灌注中确实存在肺组织损伤及WBC与PMN的聚集。随着再灌注时间的推移,损伤及聚集作用随疾病进展逐渐加剧。模型组大鼠中再灌注60、120 min时肺组织匀浆中TNF-α、IL-1、IL-6、IL-8含量明显高于假手术组(P<0.05),验证了炎性细胞因子参与了LIRI的发病机制,并且肺组织匀浆炎性因子含量随疾病的进程相应增加,说明炎性因子随疾病进展存在着相对应的变化。这一研究结果与国内相关研究[9-10]基本吻合,均提示免疫因素在LIRI疾病中起着重要作用。
随着人们对LIRI发病机制研究的逐步深入,可应用多种内、外源性的化学物质对LIRI进行治疗,从而达到保护肺的作用。其治疗药物根据不同的机制可分为以下几类:(1)抗氧化剂或抗氧化酶,如胆红素、黄酮类、氨溴索;(2)抑制细胞核因子κB(NF-κB)信号通路因子,如抗炎性因子、山莨菪碱、前列腺素E1等;(3)通过信号分子途径,如吸入一氧化氮及一氧化碳、乌司他丁、黄酮化合物等;(4)炎症因子和细胞黏附因子,如盐酸氨溴索、糖皮质激素、分泌型白细胞蛋白酶抑制剂、罗格列酮等[11]。其中,利多卡因被认为是膜稳定剂,可抑制中性粒细胞的炎性反应,通过多种途径来减轻LIRI并加大肺损伤的修复,其机制可归纳为以下几点:(1)稳定细胞膜,抑制炎性反应的各个环节;(2)促进肺泡上皮细胞生长,抑制肺泡上皮细胞凋亡[12]。从本研究结果可以看出,应用利多卡因一段时间后,大鼠W/D比值及肺泡灌洗液中WBC数量、PMN比例及TP明显低于模型组(P<0.05),肺组织匀浆TNF-α、IL-1、IL-6、IL-8含量也明显低于模型组(P<0.05),提示利多卡因可通过抑制炎症反应来减缓LIRI,从而改善肺组织损伤,符合国内外对利多卡因作用机制的研究。
综上所述,本实验建立在针对大鼠的LIRI模型上,在不同时间点上动态观察了免疫相关指标在疾病进程中的变化,并体外给予利多卡因,观察了免疫相关指标的变化。LIRI的主要病理改变为肺组织内皮的广泛破坏、肺毛细血管通透性的增加,从而导致肺泡和间质的水肿和损伤。其机制复杂,早期给予干预措施,可大大提高治愈率和预后恢复。本研究结果显示,免疫因素尤其是炎性细胞因子在LIRI的疾病进展中发挥了重要作用,利多卡因可通过抑制炎性反应来改善肺组织的损伤。本实验从炎性反应因子这一角度探讨了利多卡因改善LIRI的机制,为临床应用该药提供了理论依据,但其临床具体应用仍需进一步研究。
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