王巧云,李丙华,朱 莉,李 萍,韩志武#(1.青岛大学药学院,山东青岛 66071;.青岛市第八人民医院药剂科,山东青岛 66100;.青岛大学附属医院药学部,山东青岛 6600)
动脉粥样硬化(Atherosclerosis,AS)发生于全身动脉系统,近年来其发病率日益上升[1]。Ross提出AS是一种炎症性疾病,探讨药物对内皮细胞炎症反应的影响,成为国内外AS研究的热点[2]。
齐墩果酸(Oleanic acid)是一种从天然产物中提取的五环三萜类化合物[3]。近十年来,齐墩果酸对心血管疾病的保护作用引起了国内外学者的关注。Somova LI[4]等发现齐墩果酸具有抗AS的作用。Sultana N[5]报道了齐墩果酸的心血管保护作用,与其自身所具有不饱和基团清除活性氧、提高抗氧化酶的活性有关。但是,齐墩果酸抗AS的具体机制仍有待探索。
血管内皮细胞的氧化损伤,尤其是低密度脂蛋白氧化修饰生成的氧化性低密度脂蛋白(Oxidized low density lipoprotein,ox-LDL)是诱发血管内皮细胞炎症反应的主要因素[6],是AS预防和治疗的关键靶点。本研究通过复制ox-LDL诱导的人脐静脉内皮细胞(HUVECs)氧化损伤模型,探讨齐墩果酸对HUVECs的保护作用,并进一步对其机制进行研究。
680型酶标仪(美国Bio-Rad公司);723型分光光度计(上海第三分析仪器厂);IX50型倒置显微镜(日本Olympus公司);TDL-50B型低速台式离心机(上海安亭科学仪器厂)。
齐墩果酸(美国Sigma公司,批号:05504,纯度:99%);人胆囊收缩素(CCK-8,日本同仁化学研究所,批号:C0038);ox-LDL(广州奕源生物科技有限公司,批号:YB-002-1);维生素E(美国Sigma公司,批号:S20796-254);过氧化氢酶(CAT)测试盒(批号:20140227)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-PX)测试盒(批号:20140220)、一氧化氮(NO)测试盒(批号:20140227)、总一氧化氮合酶(NOS)测试盒(批号:20140220)均购于南京建成生物工程研究院。
HUVECs(中国科学院上海细胞库)。
将生长状态良好的传代HUVECs加入胰蛋白酶消化1 min,吹打下细胞悬液离心后弃上清液,再加入适量含有10%灭活胎牛血清、100 u/ml青霉素和100 u/ml链霉素的DMEM高糖培养基,置37 ℃、5%CO2的细胞培养箱中培养,取对数生长期的细胞进行试验。
每孔分别加入终质量浓度含0(即对照组)、25、50、100、200、400 µg/ml ox-LDL的10%胎牛血清DMEM培养基孵育HUVECs 24 h后,每孔加入10µl CCK-8,继续培养2 h后,用酶标仪在450 nm波长处检测光密度(OD)为细胞活性,按下式计算细胞存活率,重复3次。另设仅有培养液的为空白对照组。细胞存活率(%)=(试验组OD450-空白对照组OD450)/(对照组OD450-空白对照组OD450)×100%。
精密称取齐墩果酸0.022 8 g,溶于1 ml DMSO中制备50 mmol/L贮备液,-20 ℃贮藏,备用,试验时用DMEM高糖培养基将贮备液稀释;取HUVECs(细胞密度为1.5×108L-1),按每孔100 µl细胞加入96孔板,分别加入浓度为0、10、20、40、60、80、100µmol/L的齐墩果酸,每组6孔,培养24 h后,按“2.2”项下方法以CCK-8法检测并计算细胞存活率。
试验随机均分为7组,即正常对照(正常培养液)组、模型(正常培养液)组、维生素E(200µg/ml)组与齐墩果酸①、②、③、④(5、10、20、40 µmol/L)组。按“2.2”项下方法接种96孔板,加入相应药液,预培养16 h后,除正常对照组外其余组加入终质量浓度为100 µg/ml ox-LDL继续培养24 h,用CCK-8法检测并计算各组细胞存活率。收集各组细胞,用PBS洗涤2次,加细胞裂解液,冰上裂解1 h,4 ℃下,以离心半径为9 cm、12 000 r/min离心10 min,收集上清液,按试剂盒说明测定各组细胞内总蛋白及CAT、GSH-PX、NOS活性与NO含量。
与0µg/ml比较,其余质量浓度下细胞存活率差异有统计学意义(P<0.01)。IC50=100 µg/ml,因此选取100 µg/ml ox-LDL作为复制HUVECs损伤模型的质量浓度。复制模型细胞ox-LDL最适质量浓度的筛选见表1。
表1 复制模型细胞ox-LDL最适质量浓度的筛选(,n=6)Tab 1 Screening of optimal concentration of ox-LDL on model cell(,n=6)
表1 复制模型细胞ox-LDL最适质量浓度的筛选(,n=6)Tab 1 Screening of optimal concentration of ox-LDL on model cell(,n=6)
与0µg/ml比较:*P<0.05vs.0µg/ml:*P<0.05
与0 μmol/L比较,齐墩果酸浓度为60 μmol/L时细胞存活率降低,且随着齐墩果酸浓度的增高,细胞存活率逐渐降低,差异有统计学意义(P<0.05)。因此,选择齐墩果酸浓度0~40 μmol/L范围内进行以下试验。齐墩果酸最适浓度的筛选见图1。
图1 齐墩果酸最适浓度的筛选(,n=6)与0 μmol/L比较:*P<0.05;与60 μmol/L比较:#P<0.05;与80 μmol/L比较:ΔP<0.05Fig 1 Screening of optimal concentration of oleanolic acid(,n=6)vs.0 μmol/L:*P<0.05;vs.60 μmol/L:#P<0.05;vs.80 μmol/L:ΔP<0.05
与正常对照组比较,模型组细胞存活率降低,差异有统计学意义(P<0.05);与模型组比较,齐墩果酸①、②、③、④组细胞存活率升高,差异有统计学意义(P<0.05),其中齐墩果酸④组比齐墩果酸①组细胞存活率高,差异有统计学意义(P<0.05),证明40µmol/ml齐墩果酸有较强的抗氧化能力。齐墩果酸对模型细胞存活率的影响见表2。
与正常对照组比较,模型组细胞CAT、GSH-PX、NOS活性减弱,NO含量减少,差异有统计学意义(P<0.05);与模型组比较,齐墩果酸①、②、③、④组CAT、GSH-PX、NOS活性增强,NO含量增加,差异有统计学意义(P<0.05)。齐墩果酸对模型细胞CAT、GSH-PX、NO、NOS水平的影响见表3。
ox-LDL在AS的发展中起重要作用[7]。经氧化修饰而成的ox-LDL水平,已成为临床心脑血管病的一个重要生化标志[7]。Fu R等[8]研究发现,ox-LDL作用内皮细胞24 h后,细胞中的F肌动蛋白(F-actin)被破坏,导致内皮细胞对脂质成分的通透性增加,刺激活性氧(ROS)过度生成,诱导氧化应激,造成细胞氧化损伤,此时机体开启抗氧化系统,促进了GSH-PX、CAT等抗氧化酶合成[9]。这些抗氧化酶通过清除ROS,发挥抑制氧化损伤的作用[10-11]。本研究以ox-LDL刺激HUVECs复制AS模型,模型组HUVECs细胞存活率明显降低,GSH-PX与CAT活性明显下降,表明ox-LDL通过抑制GSH-PX与CAT活性,诱导氧化损伤。给予齐墩果酸预处理,能够明显提升HUVECs细胞活力,且GSH-PX与CAT的活力明显增强。提示齐墩果酸通过提高抗氧化酶GSH-PX、CAT活性,减轻ox-LDL对HUVECs细胞的氧化损伤,能有效抑制AS进展。齐墩果酸提高抗氧化酶活性的作用,可能与其富含不饱和基团的三萜类物质结构有关[12]。
表2 齐墩果酸对模型细胞存活率的影响(,n=6)Tab 2 Effects of OA on survival rate of damaged cell(,n=6)
表2 齐墩果酸对模型细胞存活率的影响(,n=6)Tab 2 Effects of OA on survival rate of damaged cell(,n=6)
与正常对照组比较:*P<0.05;与模型组比较:#P<0.05;与齐墩果酸①组比较:ΔP<0.05vs.normal control group:*P<0.05;vs.model group:#P<0.05;vs.oleanolic acid ①group:ΔP<0.05
表3 齐墩果酸对模型细胞CAT、GSH-PX、NO、NOS水平的影响(,n=6)Tab 3 Effects of OA on the levels of CAT,GSH-PX,NO and NOS in damaged cell(,n=6)
表3 齐墩果酸对模型细胞CAT、GSH-PX、NO、NOS水平的影响(,n=6)Tab 3 Effects of OA on the levels of CAT,GSH-PX,NO and NOS in damaged cell(,n=6)
与正常对照组比较:*P<0.05;与模型组比较:#P<0.05vs.normal control group:*P<0.05;vs.model group:#P<0.05
正常情况下,内皮细胞中由内皮型一氧化氮合酶(eNOS)催化产生血管内皮舒张因子NO[13]。NO通过调控四氢生物蝶呤(BH4),降低体内ROS含量[14],起到保护内皮细胞免于氧化侵袭的作用。本研究对细胞中NO含量以及NOS活性进行测定,发现ox-LDL损伤的HUVECs细胞中,NO含量减少,NOS活性降低,表明NO和NOS作为抗氧化因子,在HUVECs细胞氧化损伤中受到抑制。经过齐墩果酸预处理,这两项指标均有不同程度的升高,证实齐墩果酸通过激活NOS,促进NO生成,保护HUVECs细胞。最近,Gkaliagkousi E等[15]研究发现,ox-LDL可以显著抑制内皮细胞、巨噬细胞NO合成酶基因表达,从而抑制NO合成。齐墩果酸提升NO和NOS的内皮保护作用,是由于NO对ROS的直接清除作用,还是涉及到NOS的基因调控,仍需进一步研究证实。
[1]李丹,李玉洁,杨庆,等.血管内皮功能障碍与动脉粥样硬化研究进展[J].中国实验方剂学杂志,2012,18(8):272.
[2]Kautz L,Gabayan V,Wang X,et al.Ross R:Atherosclerosis-an inflammatory disease[J].Cell Rep,2013,5(5):1 436.
[3]王奇,芦柏震.齐墩果酸的研究进展[J].中国药房,2008,19(9):711.
[4]Somova LI,Shode FO,Ramnanan P,et al.Antihypertensive,antiatherosclerotic and antioxidant activity of triterpenoids isolated from Olea europaea,subspecies africana leaves[J].Ethnopharmacol,2003,84(2/3):299.
[5]Sultana N,Ata A.Oleanolic acid and related derivatives as medicinally important Compounds[J].Enzyme Inhib Med Chem,2008,23(6):739.
[6]Mestas J,Ley K.Monocyte-endothelial cell interactions in the development of atherosclerosis[J].Trends Cardiovasc Med,2008,18(6):228.
[7]PapaharaIambus CA,GriendIing KK.Basicmechanisms of oxidative stressand reactiveoxygen speciesin cardiovascuIarinjury[J].Trends Cardiovasc Med,2007,17(2):48.
[8]Fu R,Wang Q,Guo Q,et al.XJP-1 protects endothelial cells from oxidized low-density lipoprotein-induced apoptosis by inhibiting NADPH oxidase subunit expression and modulating the PI3K/Akt/eNOS pathway[J].Vascular Pharmacol,2013,58(1/2):78.
[9]赵凯,杨万松.氧化应激与高血压血管内皮损伤[J].天津医药,2006,34(12):907.
[10]杨永宗.动脉粥样硬化性心血管病基础与临床[M].2版.北京:人民卫生出版社,2009:657.
[11]Paravicini TM,Tougz RM.NADPH oxidases,reactive oxygen species and hypertension:clinical implications and therapeutic possibilities[J].Diabetes Care,2008(Suppl 2):170.
[12]唐初,陈玉,柏舜,等.齐墩果酸的结构修饰与生物活性研究进展[J].有机化学,2013,33(1):46.
[13]Ulrich F,William CS.Nitric oxide synthases:regulation and function[J].Eur Heart,2012,33(7):829.
[14]Kalyanaraman B.Teaching the basics of redox biology to medical and graduate students:Oxidants,antioxidants and disease mechanisms[J].Redox Biol,2013,1(1):244.
[15]Gkaliagkousi E,Ferro A.Nitriv oxide signalling in the regulation of cardiovascular and platelet function[J].Front Biosci,2011,16(1):1 873.