白亚玲 徐金升 冯伟勋 张俊霞 崔立文 张慧然 张胜雷
慢性肾脏病(chronic kidney disease,CKD)在我 国的患病率高达10.8%[1],心血管疾病(cardiovascu⁃ lar disease,CVD)是CKD患者主要的并发症之一,并且呈逐年进展的趋势。近年来研究发现血管钙化在CKD患者中非常普遍,亦是CVD发生的独立危险因素[2]。Kanbay等[3]研究发现40%~70%的透析患者可发生冠状动脉钙化,且CKD患者比一般人群更容易发生血管钙化。现大多数学者普遍认为CKD患者的血管钙化发病的中心环节为血管平滑肌细胞向成骨/成软骨样表型转化[4],而磷在其中起着关键性的作用,同时还包含许多其他复杂因素,但具体机制还未完全阐明,对血管钙化也缺乏行之有效的治疗手段。有研究显示镁可能作为磷的结合剂,降低血磷水平,从而抑制血管钙化[5]。本研究旨在探讨增加镁离子的浓度是否对血管钙化有影响。
1.1 主要试剂和仪器 兔抗鼠平滑肌肌动蛋白单克隆抗体购自北京博奥森生物有限公司,酶标仪(HT2型)购自奥地利Anthos公司,倒置相差显微镜(LH50A型,OLYMPUS),胎牛血清(fetal bovine serum,FBS)购自美国Hyclone公司,DMEM培养基购自美国GIBCO公司,链霉菌抗生物素蛋白-过氧化物酶连结(SP)免疫组化试剂盒购自上海博海生物工程,二氨基联苯胺(DAB)显色试剂盒购自中山金桥股份有限公司,噻唑蓝(MTT)试剂购自北京索莱宝科技有限公司。
1.2 方法
1.2.1 实验分组 原代培养获取大鼠血管平滑肌细胞(VSMCs),进行形态学及免疫细胞鉴定,后采用完全随机法将VSMCs分为阴性对照组、高磷组、镁干预组。阴性对照组采用含10%胎牛血清培养,高磷组采用高磷培养基(含10 mmol/L β-甘油磷酸)培养,镁干预组在高磷培养基的基础上分别加入不同浓度的氯化镁,使镁离子的终浓度分别为1 mmol/L(镁干预组1)、2 mmol/L(镁干预组2)和3 mmol/L(镁干预组3),共刺激7 d。
1.2.2 细胞鉴定 参照文献[2]进行细胞鉴定。形态学观察:应用倒置相差显微镜观察细胞大小、形态、生长特点及排列方式等。免疫细胞化学染色:6孔板内用消毒的盖玻片制作细胞爬片,待细胞贴壁生长至60%~70%时,弃去培养基,用免疫细胞化学方法鉴定平滑肌细胞特异性抗体a-SMA ac⁃tin。DAB显色,苏木素轻度复染,经分化,脱水,透明,封片,在显微镜下观察。
1.2.3 钙化检测 (1)茜素红染色[6-7]:取生长至4~5代的细胞以5×104个/孔密度接种于6孔板内,刺激7 d,茜素红进行钙化染色,倒置显微镜下观察照相。钙盐沉积为橘红色。(2)细胞内钙含量测定[8]:取4~5代细胞以2×105/孔密度接种于6孔板,干预7 d,细胞用盐酸脱钙取上清,钙定量检测试剂盒测定钙含量,脱钙后的细胞用0.1 mol/L NaOH和0.1%的十二烷基硫酸钠(SDS)溶解30 min,二辛可酸(BCA)法测定细胞蛋白含量,结果用细胞钙含量比蛋白含量表示(μg/mg蛋白)。实验每组设3个复孔。(3)碱性磷酸酶(ALP)活性测定[7]:取4~5代细胞以2×105个/孔密度接种于6孔板,干预7 d,弃去培养液,用PBS洗涤细胞3次,每孔加入500 μL 0.1% Triton X-100置4℃环境中约12~24 h,然后反复吹打裂解细胞后置于离心管中离心,按化学发光法检测ALP活性。
1.2.4 反转录聚合酶链反应(RT-PCR)检测细胞内核心结合因子α1(Cbfα1)mRNA的表达 细胞总RNA提取采用Trizol一步法。引物序列由primer 5.0软件设计。Cbfα1上游引物5′-CCGCACGACAACCGCACCAT-3′,下游引物5′-CGCTCC⁃GGCCCACAAATCTC-3′;GAPDH上游引物5′-CAAGGT⁃CATCCATGACAACTTTG-3′,下游引 物 5′-GTCCAC⁃CACCCTGTTGCTGTAG-3′。实验重复3次,以GAPDH作为内对照,计算相对含量。
1.3 统计学方法 采用SPSS 13.0软件进行统计学处理,计量资料以均数±标准差(±s)表示,2组间均数比较采用t检验,多组间均数比较采用单因素方差分析,组间多重比较行SNK-q检验。P<0.05为差异有统计学意义。
2.1 VSMCs原代培养 大鼠胸主动脉组织块贴壁3~4 d后可见细胞从组织块边缘爬出,细胞为长梭形,呈束状排列,5~6 d成同心圆状细胞团,形成明显的细胞生长晕,并围绕组织块边缘呈束状向外呈放射状延伸,约6~7 d后融合成片,细胞可达亚融合状态,呈接触抑制状态,此时可传代。细胞传代后,未贴壁时细胞呈椭圆形,不透明,4~6 h后开始贴壁,贴壁后的细胞逐渐伸展,星形或不规则形,以梭形为主,细胞核呈卵圆形,透明度增加,相互重叠生长,呈典型的“峰-谷”样表现,见图1。
Figure 1 Primary culture of VSMCs(×100)图1 VSMCs原代培养(×100)
2.2 VSMCs细胞鉴定 HE染色及瑞氏-姬姆萨染色可见细胞呈梭形,胞浆丰富,核大而圆或椭圆。免疫细胞化学染色可见细胞胞浆表达强阳性,免疫反应产物呈棕黄色,见图2。传代纯化,细胞生长特性未见异常改变。
2.3 钙化检测
2.3.1 茜素红染色结果 与阴性对照组比较,高磷组及镁干预组的VSMCs钙化染色均加重。与高磷组比较,镁干预组随着镁离子浓度增大钙化结节染色逐渐降低,镁干预组2开始出现钙化结节缩小,并呈一定浓度依赖性,镁干预组3钙化结节达最小,见图3。
Figure 2 The identification of VSMCs图2VSMCs细胞鉴定
Figure 3 Alizarin red staining of VSMCs(×100)图3 茜素红染色(×100)
2.3.2 不同浓度镁离子对VSMCs中钙含量的影响 与阴性对照组相比,高磷组及镁干预组刺激VSMCs后,钙含量均显著增加。镁干预组随着镁离子浓度增大钙含量逐渐降低,除镁干预组1与高磷组差异无统计学意义外,镁干预组2和镁干预组3均低于高磷组(均P<0.05),见图4。
2.3.3 不同浓度镁离子对VSMCs ALP的影响 除镁干预组3 VSMCs ALP水平与阴性对照组差异无统计学意义外,其余组均高于阴性对照组(均P<0.05)。镁干预组随镁离子浓度增大ALP活性逐渐降低,且均低于高磷组(均P<0.05),见图5。
Figure 4 Comparison of the calcium content between different groups图4 各组VSMCs钙含量的比较
Figure 5 Comparison of ALP levels between different groups图5 各组VSMCs ALP水平的比较
2.4 不同浓度镁离子对VSMCs中Cbfα1 mRNA表达的影响 见图6。除镁干预组3 VSMCs中Cbfα1 mRNA的表达与阴性对照组差异无统计学意义外,其余组均高于阴性对照组(均P<0.05)。镁干预组随着镁离子浓度增大Cbfα1 mRNA的表达水平逐渐降低,且均明显低于高磷组(均P<0.05)。
Figure 6 Expressions of Cbfa1 in VSMCs detected by RT-PCR图6RT-PCR检测VSMCs中Cbfα1的表达
近年研究发现CKD患者的低镁血症与血管钙化和CVD死亡率相关[3],而血管钙化又是心血管疾病的重要环节。在CKD患者中血管钙化有其特殊性,主要表现为中膜钙化,位于血管中膜的VSMCs在CKD患者血管钙化中起着关键作用[9]。Ishimura等[10]研究发现血清镁在一定范围内与血管钙化负相关,血镁浓度与透析患者生存率呈正相关。
VSMCs的成骨样表型转化是血管钙化的结构基础,本研究通过使用含有10 mmol/L β-甘油磷酸钠的培养基诱导大鼠VSMCs发生成骨样转分化和钙化。茜素红矿化结节染色发现,高磷组及镁干预组VSMCs钙化染色较阴性对照组均加重,但镁干预组随着镁离子浓度的增加钙化结节逐渐变小,镁离子浓度为2 mmol/L开始出现钙化结节缩小,3 mmol/L钙化结节达最小。钙含量检测结果与钙化染色结果基本一致,二者均提示镁离子可以抑制高磷诱导的钙化,并呈现一定的浓度依赖性,这与Figueiredo等[11]的研究结果相似。ALP是成骨细胞形成的早期标志物,在正常VSMCs中的表达水平较低,在钙化的血管和心脏瓣膜组织中的表达水平明显增高[12]。本研究发现,与高磷组比较,镁干预组随着镁离子浓度的增大ALP活性逐渐降低,且呈一定的浓度依赖性,进一步验证了镁离子具有抑制VSMCs转分化和钙化的作用。
Cbfα1是成骨样细胞表型转化的的特异性因子,是骨形成过程中的主要调节因子,其也可在发生钙化的VSMCs中表达[12]。Cbfα1在ALP的表达调节中起着重要作用,同时也是成骨样转分化的分子标志物[13]。Byon等[14]研究发现VSMCs在双氧水刺激下,其Cbfα1的表达与ALP活性的变化有紧密关系。本研究结果显示,镁离子可抑制VSMCs中Cbfα 1 mRNA的表达,且随着镁离子浓度增大,Cbfα1 mRNA的表达水平逐渐降低。综合本研究结果,并结合相关文献,笔者推测镁离子对VSMCs的钙化抑制作用可能是通过降低VSMCs中Cbfα1的表达来实现的。VSMCs中Cbfα1表达降低后,又通过其下游某一信号通路而致使ALP活性下降,进一步抑制血管钙化的发生,但二者之间的具体作用机制尚待进一步研究。
[1] Zhang L,Wang F,Wang L,et al.Prevalence of chronic kidney dis⁃ ease in China:a cross-sectional survey[J].Lancet,2012,379(9818): 815-822.doi:10.1016/S0140-6736(12)60033-6.
[2] Pun PH,Smarz TR,Honeycutt EF,et al.Chronic kidney disease is associated with increased risk of sudden cardiac death among pa⁃tients with coronary artery disease[J].Kidney Int,2009,76(6):652-658.doi:10.1038/ki.2009.219.
[3] Kanbay M,Goldsmith D,Uyar ME,et al.Magnesium in chronic kid⁃ney disease:challenges and opportunities[J].Blood Purif,2010,29 (3):280-292.doi:10.1159/000276665.
[4] Disthabanchong S.Vascular calcification in chronic kidney disease: Pathogenesis and clinical implication[J].World J Nephrol,2012,1 (2):43-53.
[5] M de Francisco AL,Rodríguez M.Magnesium-its role in CKD[J]. Nefrologia,2013,33(3):389-399.doi:10.3265/Nefrologia.pre2013. Feb.11840.
[6] Idelevich A,Rais Y,Monsonego-Ornan E.Bone Gla protein in⁃creases HIF-1alpha-dependent glucose metabolism and induces cartilage and vascular calcification[J].Arterioscler Thromb Vasc Bi⁃ol,2011,31(9):e55-71.doi:10.1161/ATVBAHA.111.230904.
[7]Aoshima Y,Mizobuchi M,Ogata H,et al.Vitamin D receptor activa⁃tors inhibit vascular smooth muscle cell mineralization induced by phosphate and TNF-α[J].Nephrol Dial Transplant,2012,27(5): 1800-1806.doi:10.1093/ndt/gfr758.
[8]Louvet L,Büchel J,Steppan S,et al.Magnesium prevents phos⁃phate-induced calciベcation in human aortic vascular smooth mus⁃cle cells[J].Nephrol Dial Transplant,2013,28(4):869-878.doi: 10.1093/ndt/gfs520.
[9] Vipattawat K,Kitiyakara C,Phakdeekitcharoen B,et al.Vascular Calcification in Long-term Kidney Transplantation[J].Nephrology (Carlton).2014 Jan 22.doi:10.1111/nep.12210.[Epub ahead of print]
[10]Ishimura E,Okuno S,Kitatani K,et al.Significant association be⁃tween the presence of peripheral vascular calcification and lower se⁃rum magnesium in hemodialysis patients[J].Clin Nephrol,2007,68 (4):222-227.
[11]Figueiredo CP,Rajamannan NM,Lopes JB,et al.Serum phosphate and hip bone mineral density as additional factors for high vascular calcification scores in a community-dwelling:the São Paulo Ageing &Health Study(SPAH)[J].Bone,2013,52(1):354-359.doi: 10.1016/j.bone.2012.10.019.
[12]Zhou S,Fang X,Xin H,et al.Osteoprotegerin inhibits calcification of vascular smooth muscle cell via down regulation of the Notch1-RBP-Jκ/Msx2 signaling pathway[J].PLoS One,2013,8(7):e68987. doi:10.1371/journal.pone.0068987.
[13]白亚玲.尿毒症患者血清对血管平滑肌细胞钙化及Ⅰ型胶原表达的影响[J].山东医药,2013,53(26):5-8.
[14]Byon CH,Javed A,Dai Q,et al.Oxidative stress induces vascular calcification through modulation of the osteogenic transcription fac⁃tor Runx2 by AKT signaling[J].J Biol Chem,2008,283(22):15319-15327.doi:10.1074/jbc.M800021200.