全叶榕营养成分分析及黄酮的测定

王喜周，应跃跃，陈学智，张 昊，姚晓伟

（1.丽水学院 医学院，浙江 丽水 323000；2.丽水市质量技术监督检测院，浙江 丽水 323000；3.浙江省景宁县人民医院，浙江 景宁 323500）

全叶榕Ficus pandurata var.hoiophylla为桑科Moraceae榕属Ficus植物，别名细叶牛乳绳、小叶牛奶绳、小攀坡。其香气浓郁，在浙西南一带常作为调味品和保健品，尤其喜好在烹饪鸡、猪蹄等荤菜时将全叶榕根茎叶放入锅中一同煎熬，认为它不仅增加菜肴的香味，还可降低菜肴的油腻感；全叶榕在浙西南民间是一种常用的草药，也是畲族最常用的草药之一，认为它有祛乏解困，健胃消食，行气活血，祛风除湿的功效［1］；刘传荷等［2］认为全叶榕是一种优良的食药两用植物。全叶榕作为小香勾的基原载入《浙江省中药炮制规范》［3］，认为全叶榕能健脾，除湿，用于消化不良、小儿疳积、腹泻、疝气的疾病的治疗。虽然民间有长期食用或药用全叶榕的习惯，但是对它开发研究得不多。本研究通过对其营养成分及黄酮进行了系统分析，为其进一步开发利用提供依据。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

全叶榕新鲜植株采集于浙江省遂昌县白马山国家森林公园，经丽水市食品药品监督所研究员李建良鉴定为全叶榕。选用10株大小相近的全叶榕，分别分离每株的叶、茎和根，用超纯水洗净，自然晒干，粉碎过60目筛，各株的叶、茎和根粉碎物，单独密闭保存备用。芦丁标准品购自中国药品生物制品检定所，产品号为（100080-200707）；浓硫酸、硫酸钾、氢氧化钾、盐酸、乙醚、石油醚、草酸、镁粉反应、四氢化二硼钠、三氯化铝、二硝基苯肼、硫脲、乙酸锌、硫酸铜、硼酸、氢氧化钠、酒石酸钾钠、磷酸二氢钾、磷酸氢二钠、苯酚等均为分析纯。茚三酮为优级纯。

1.2 仪器与设备

日本日立公司生产的高速氨基酸分析仪（L-8800）；瑞士BUCHI公司生产的全自动凯氏定氮蒸馏仪（TC2200-001）；瑞典波通仪器公司出品的全自动粗纤维分析仪（Fibretherm FT12）；奥地利安乐帕有限公司生产的超高压微波消解仪（Multiwave300）；尤尼柯（上海）仪器有限公司生产的紫外可见分光光度计（UV-2102PC）；美国PE公司生产的电感耦合等离子发射质谱仪（ICP-MS，ELANDRC-e）。

1.3 方法

1.3.1 营养成分及矿质元素测定 水分：直接干燥法，参照GB 5009.3-2010《食品中水分的测定》；粗灰分：高温灼烧法，参照 GB5009.4-2010《食品微生物学检验沙门氏菌检验》；总糖：酸水解法，参照GB/T 5009.8-2008《食品中蔗糖的测定》；蛋白质：自动凯氏定氮仪法，参照GB 5009.5-2010《食品中蛋白质的测定》；粗脂肪：索氏抽提法，参照 GB/T 5009.6-2003《食品中脂肪的测定》；粗纤维：GB/T 5009.10-2003《植物类食品中粗纤维的测定》和Fibretherm FT12中文操作说明书；游离氨基酸：采用日立公司生产的高速氨基酸分析仪（L-8800），参照GB/T 8314-2002《茶游离氨基酸总量测定》；维生素C：2，4-二硝基苯肼法，参照GB/T 5009.86-2003《蔬菜、水果及其制品中总抗环血酸的测定》；水浸出物：水提法，参照GB/T 8305-2002《茶取样》；矿质元素：按仪器说明书在ICP-MS上测定铬、锰、铁、铜、锌、砷、硒、银、镉、汞和铅元素的含量。分别测定10个样本叶、茎和根3个部位的营养成分及矿质元素的含量。

1.3.2 总黄酮测定［4］材料及处理：取干全叶榕样品2 g，精密称定，置100 mL容量瓶中，加体积分数为70%乙醇90 mL，超声处理（功率250 W，频率40 kHz）45 min，冷却后用体积分数为70%乙醇稀释至刻度，摇匀，过滤，得供试品溶液。供试品溶液中总黄酮的检识：三氯化铝反应；盐酸-镁粉反应；四氢化二硼钠反应。对照品溶液的制备：精密称取芦丁对照品适量，加体积分数为70%的乙醇制成不同质量浓度的芦丁溶液（0.000，0.096，0.200，0.400，0.800，2.000 mg·L－1）。标准曲线的制备：精密量取对照品溶液2.0 mL加入具塞刻度试管中，并加镁粉100 mg，将试管置冷水浴（15℃左右)中缓缓滴加浓盐酸3.0 mL，摇匀，加体积分数为70%乙醇至8 mL摇匀，置沸水浴中保温40 min，取出，迅速冷却至室温，用体积分数为70%乙醇补足至10 mL，以纯水为空白对照，于526 nm波长处测定吸光度。以吸光度为横坐标，芦丁质量浓度为纵坐标，绘制标准曲线并计算回归方程。总黄酮的测定：精密量取样品溶液2.0 mL置加有上述已确定镁粉用量的具塞刻度试管中，以镁粉用量为100 mg，反应时间40 min，在526 nm处测吸光度。分别测定10个样本叶、茎和根3个部位的吸光度，并根据回归方程计算出供试品溶液中总黄酮的含量。

1.3.3 统计方法 原始数据采用SPSS 12.0软件进行多样本均数的两两比较（SNK），结果以x±s表示。

2 结果与分析

2.1 全叶榕不同部位营养成分比较

由表1可知：全叶榕叶、茎、根主要成分为蛋白质、还原糖和粗纤维，其中叶部的蛋白质、总糖、水浸出物和脂肪质量分数最高，分别为174.6，171.4，257.7和14.3 g·kg－1，并且除总糖外与茎、根有显著性差异；粗纤维最高为茎，达450.7 g·kg－1，叶茎根三者间有显著性差异。其中叶片的蛋白质分别比甘薯、芋头及山药等根茎类高 4～6倍；比竹笋粗蛋白高4倍［5］。总糖约为 149.9～171.4 g·kg－1，可起到降低血浆胆固醇水平，改善大肠功能和血糖生成等作用［6］；多糖具有增强机体免疫功能等作用，全叶榕所含的糖类成分可能与民间用其抗疲劳有关［7］；全叶榕蛋白质质量分数较高，而脂肪质量分数偏低，非常符合现代人饮食的需要。

表1 全叶榕叶、茎、根的化学营养成分组成Table 1 Nutritional components of Ficus pandurata var.hoiophylla

2.2 全叶榕不同部位氨基酸组成比较

由表2可知：全叶榕叶茎根的氨基酸总量分别为为 147.4，23.4和 29.6 g·kg－1，三者间有显著性差异；根茎叶3部位各种氨基酸种类齐全，配比均衡。在实验条件下检测出除色氨酸以外的17种，包括多种人体必需氨基酸，其中人体不能合成需食物供应的7种必需氨基酸，其中全叶榕叶部含7种，其量为55.0 g·kg－1；茎与根中含有 6种，分别为 6.6和 8.5 g·kg－1。叶茎根 7种人体必需的氨基酸占氨基酸总量分别为37.33%，26.45%，26.98%（三者间有显著性差异），其必需氨基酸与非必需氨基酸的比例分别为 1∶1.7，1∶2.8，1∶2.7，超过中国建议的必需氨基酸与非必需氨基酸的比例（1∶4）［8］；具有抗中枢疲劳作用的3种支链氨基酸（缬氨酸、亮氨酸、异亮氨酸）质量分数比较高，占总氨基酸的12.13%。

2.3 全叶榕不同部位矿质元素质量分数比较

由表3可见：全叶榕叶、茎、根等3个部位中微量元素较丰富，其中叶片总量最高，根其次，茎最少，且三者间有显著性差异。3个部位中铁、锌和锰质量分数均很高，且不同部位间有显著差异。

2.4 总黄酮的测定

供试样品总黄酮的检识结果：盐酸-镁粉反应显红色；四氢硼钠反应显红色；三氯化铝反应显黄色并有荧光。根据标准曲线得回归方程为：y＝0.663 7x+0.001 7（R2＝0.999 7）。结果表明（表4）：根部提取所得总黄酮较多（22.02 mg·g－1），其次是叶部（20.85 m·g－1），最少是茎部（7.44 mg·g－1），3 组数据多个样本均数两两比较，叶和根与茎均有显著性差异（P＜0.05），叶与根没有显著性差异。其质量分数与无花果 Ficus carica 叶的总黄酮质量分数（24.00 mg·g－1）［9］相当。

表2 全叶榕叶、茎、根的氨基酸组成Table 2 Amino acids components of Ficus pandurata var.hoiophylla

表3 全叶榕叶、茎、根的矿质元素组成Table 3 Content of mineral elements in Ficus pandurata var.hoiophylla

3 结论

全叶榕的营养成分测定结果表明全叶榕蛋白质和维生素C的质量分数较高，同时，富含多种对人体有益的矿质元素，特别是含有丰富的锰、锌和铁，提示其可能与抗疲劳有关。全叶榕氨基酸质量分数丰富，比例适宜，符合联合国粮农组织/世界卫生组织的参考蛋白模式，属于优质蛋白。根据全叶榕的根茎叶三者的微量元素、营养成分、氨基酸质量分数综合比较，全叶榕的叶片营养价值最高，其次是根。全叶榕营养成分、矿质元素及氨基酸的组成表明：全叶榕有较高的营养价值；全叶榕叶茎根的总黄酮质量分数分别为20.85，7.44和22.02 mg·g－1，超过肉蔻Myristica fragrans（20.9 g·kg-1），茴香 Foeniculum vulgare（2.5 g·kg-1），肉桂 Cinnamomum cassia（11.1 g·kg-1）等许多辛香料的黄酮含量［10］。黄酮具有保肝［8］、 抗氧化［11］、 调血脂［12］、 强免疫的功能，故全叶榕中的黄酮可能是民间用全叶榕作为保健品的物质基础之一。本研究表明：全叶榕在营养保健和医药用方面具有一定的开发价值，值得在保健和药用功能方面开展动物实验研究。

表4 全叶榕叶、茎、根的总黄酮Table 4 Content of total flavonoid in Ficus pandurata var.hoiophylla

［1］雷后兴.中国畲族医药学［M］.北京：中国中医药出版社，2007：307-308.

［2］刘传荷，伦璇，夏国华.条叶榕的组织培养与快速繁殖［J］.植物生理学通讯，2010，46（6）：603－604.LIU Chuanhe，LUN Xuan，XIA Guohua.Tissue culture and rapid propagation of Ficus pandurata Hance var.angustifolia Cheng［J］.Plant Physiol Commun，2010，46（6）：603－604.

［3］浙江食品药品监督管理局.浙江省中药炮制规范［S］.杭州：浙江科学技术出版社，2005：304－305.

［4］陈化，吴迎椿.超声波提取小叶榕总黄酮及鉴别［J］.时珍国医国药，2008，19（7）：1677－1678.CHEN Hua，WU Yingchun. Extraction and identification of total flavanone of Xiaoyerong by ultrasonic wave［J］.LI Shizhen Med Mater Med Res，2008，19（7）：1677－1678.

［5］黄芝蓉.家常食物药用大全［M］.北京：中国中医药出版社.2000：193.

［6］王子花，申瑞玲，李文全.膳食纤维降血糖研究进展［J］.粮食与油脂，2006（7）：42－44.WANG Zihua，SHEN Ruiling，LI Wenquan.Research progress in dietary fiber lowering blood glucose［J］.Grease Food，2006（7）：42－44.

［7］杨世林，热娜·卡斯木.天然药物化学［M］，北京：科学出版社，2010：106－140，218－220.

［8］何照范，张迪青.保健食品化学及其检测技术［M］，北京：中国轻工业出版社，1997：43－60.

［9］杨润亚，明永飞，王慧.无花果叶中总黄酮的提取及其抗氧化活性测定［J］.食品科学，2010，31（16）：78－82.YANG Runya，MING Yongfei，WANG Hui. Extraction and free radical scavenging activity of total flavonoids from the leaves of Ficus carica Linn.［J］.Food Sci，2010，31（16）：78－82.

［10］石雪萍，吴亮亮，高鹏，等.20种食用辛香料抗氧化性及其与黄酮和多酚的相关性研究［J］.食品科学，2011，32（5）：83－86.SHI Xueping，WU Liangliang，GAO Peng，et al.Ethanol extracts from twenty edible spices：antioxidant activity and its correlations with total flavonoids and total phenols contents［J］.Food Sci，2011，32（5）：83－86.

［11］VIJAYAKUMAR S，PRESANNAKUMAR G，VIJAYALAKSHMI N R.Antioxidant activity of banana flavonoids［J］.Sep Purif Technol，2008，79：279－282.

［12］BHAVNA S，CHANDRAJEET B，PARTHA R.Hypoglycemic and hypolipidemic effects of flavonoid rich extract from Eugenia jambolana seeds on streptozotocin induced diabetic rats［J］.Food Chem Toxicol，2008，46：2376-2383.