青海牦牛BVDV E0基因的表达与抗原性检测

2013-09-23 03:45王光华叶成玉蔡其刚王戈平张芳芳马利青周继章
中国兽医杂志 2013年4期
关键词:原核密码子质粒

王光华,叶成玉,蔡其刚,王戈平,陆 艳,张芳芳,马利青,周继章

(1.青海省畜牧兽医科学院,青海 西宁810016;2.中国农业科学院兰州兽医研究所

家畜疫病病原生物学国家重点实验室 农业部兽医公共卫生重点开放实验室,甘肃 兰州730046)

牛病毒性腹泻病毒(BVDV),也称牛病毒性腹泻-黏膜病病毒,与猪瘟病毒(CSFV)、羊边界病毒(BDV)同属黄病毒科,瘟病毒属成员,是有囊膜的单股正链RNA病毒,整个基因组大小约为12.5kb,包含有一个大的开放阅读框和两侧的非编码区[1]。开放阅读框编码一个近4 000个氨基酸的多聚蛋白(E2的克隆与序列分析),从N端到C端的顺序为:Npro(P20)、EC(P14)、E0(gP48)、E1(gP25)、E2(gP53)、P7、NS2-3(P125)、NS4A(P10)、NS4B(P32)、NS5A(P58)、NS5B(P75),其中EC、E0、E1和E2为结构蛋白,其他的为非结构蛋白[2]。其编码的结构蛋白主要位于BVDV基因组5′-N端部分。其中E0、E1和E2是糖基化蛋白。而E0、E2为保护性抗原基因,其蛋白具有抗原性,免疫原性以E2最强,但E2是BVDV结构蛋白中变异率较高的一种蛋白,抗原逃逸及突变频率较高,是导致疫苗保护失效和牛持续性感染的主要原因[3]。E0是BVDV编码蛋白中保守性很高的蛋白,其上有中和表位,产生的中和抗体具有中和BVDV和HCV的能力[4],因此它可用于研究基因工程亚单位疫苗及基因工程诊断抗原,防治牛病毒性腹泻。本试验中克隆和表达了BVDV青海牦牛QHZK株的E0基因,为进一步研究BVDV E0蛋白的生物学活性,制备基因工程诊断抗原奠定了基础。

1 材料与方法

1.1 试剂 限制性内切酶EcoRI、XhoI、IPTG、ExTaq酶、pMD18-T载体、质粒提取试剂盒、胶回收试剂盒,购自宝生物工程(大连)有限公司;低分子量蛋白质 Marker,DL-2 000DNA Marker,T4DNA连接酶,氨苄青霉素,购自上海生工生物工程技术服务有限公司;BVDV标准阳性血清,购自中国兽医药品监察所;辣根过氧化物酶(HRP)标记的兔抗牛IgG,购自Sigma公司。

1.2 质粒与菌种 pMD18-T-E0质粒,由本实验室构建并保存;DH5α菌株,购自宝生物工程(大连)有限公司,Rosetta菌株,购自北京全式金生物技术有限公司,原核表达载体pET-32a由本实验室保存。

1.3 E0基因的原核表达及抗原性检测

1.3.1 E0基因的扩增 引物序列为:PF1 5′-CCCGAATTCATGGAGAACATAACACA-3′,PF2 5′-CCCCTCGAGTTATGCATATGCCCC-3′。反应条件及体系:按照RT-PCR试剂盒说明书操作,反应体系(25 μL):10×RT-PCR Buffer 2.5μL,dNTP mixture(2.5 mmol/L)4.0μL,RNase inhibitor(40U/μL)1.0μL,上下游引物(0.1μmol/L)各1μL,AMV reverse transcriptase(5U/μL)0.5μL,Taqpolymerase(5U/μL)0.5μL,总 RNA (1μg/μL)2.0μL,DEPC水12.5 μL。PCR反应条件:45℃30min;95℃3min;94℃30 s,58℃30s,72℃1min,35个循环;72℃5min。反应结束后取5μL PCR产物以5V/CM恒定电压于10 g/L琼脂糖凝胶中电泳。

1.3.2 E0基因的纯化及克隆 用胶回收试剂盒纯化BVDV QHZK株E0基因PCR产物,将纯化后的产物与pMD18-T载体连接。连接产物转化至DH5α菌株,经氨苄青霉素、X-gal筛选,挑取白色菌落接种于5mL含氨苄青霉素(终浓度50μg/mL)的LB培养基中,37℃振荡培养12h之后提取质粒。

1.3.3 重组质粒 pET-32α-E0的构建 将pET-32a原核表达载体和pMD18-T-E0克隆质粒分别用EcoRⅠ、XhoⅠ双酶切,用胶回收试剂盒回收具有黏性末端的E0基因和pET-32α原核表达载体,在T4DNA连接酶作用下16℃连接5h,连接产物转化至DH5α感受态细胞。

1.3.4 重组质粒的鉴定 将5μL连接产物转化到感受态细胞Rosetta(DE3)中,经IPTG/X-gal琼脂平板蓝白菌落筛选,随机挑选白色菌落用含氨苄抗性的LB培养基培养,提取质粒后进行EcoRⅠ和XhoⅠ双酶切及PCR鉴定。将鉴定正确的质粒命名为pET-32α-E0。

1.3.5 重组质粒的诱导表达、蛋白纯化与抗原性检测 取50μL阳性克隆菌液加入到5mL含50μg/mL氨苄青霉素(50μg/mL)的LB液体培养基中,37℃,220r/min振荡培养过夜。次日按1∶50增菌于含氨苄青霉素(50μg/mL)的LB培养基中,培养至吸光度OD600为0.6~1.0之间,取出1mL未诱导菌液做阴性对照,4℃保存。余者加入IPTG至终浓度1mmol/L,200r/min,37℃诱导表达4h收集菌液,取1mL于1.5mL的离心管中,6 000r/min离心3min,弃上清,收集菌体。用聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)检测表达产物。

2 结果

2.1 E0基因的原核表达

2.1.1 E0基因的 RT-PCR扩增 将 RT-PCR产物用1%琼脂糖凝胶电泳鉴定,在700bp左右处有一特异性扩增条带,与预期产物大小相符,如图1。

图1 E0基因RT-PCR扩增产物的鉴定

2.1.2 重组质粒pET-32α-E0的鉴定 重组质粒pET-32α-E0经PCR以及EcoR Ⅰ、XhoⅠ双酶切得到约700bp目的基因片段,与预期的结果一致(如图2),证明重组质粒构建成功。

图2 重组质粒pET-32α-E0的PCR和酶切鉴定

2.1.3 E0基因表达产物的检测 重组质粒pET-32α-E0转化入Rosetta感受态细胞中,经IPTG诱导4h,将不同时间段收集的诱导菌液变性处理后进行SDS-PAGE分析(图3)。在约44kDa分子量标记处,出现明显的电泳条带,与预期结果相符,表明目的蛋白获得表达。

图3 E0基因表达产物的SDS-PAGE分析

4 讨论

牦牛作为青藏高原上的稀有牛种,主要生长在我国2 500m至5 000m的高山草原上。自1983年[5],李佑民等在我国首次分离并鉴定出BVDV以来,该病在我国牛群中流行较广,造成了极大的危害,但国内学者对于牦牛BVDV分子生物学方面的报道较少,因此,开展牦牛BVDV的分子生物学研究意义重大。本研究对青海牦牛BVDV毒株的E0蛋白进行了生物信息学分析,采用生物学软件对E0蛋白的抗原指数、亲水性及B细胞抗原表位进行了分析。结果表明,E0蛋白氨基酸的亲水性与抗原性指数呈平行相关性,QHZK株E0蛋白氨基酸的亲水性与抗原性指数与标准毒株VEDEVAC、C24V非常相似,从而证明E0基因在BVDV各毒株间具有一定保守性,有利于研究亚单位疫苗。

本试验用原核表达载体表达BVDV E0基因时发现,E0基因所含的密码子有10%左右是E.coli不常用的稀有密码子。有资料表明,当目的基因中存在过多E.coli不常使用的密码子时,其在E.coli中的表达量一般很低[6],所以本试验在表达E0基因时采用了Rosetta(DE3)菌株,该菌株因可以提供密码子tRNAs,从而可以显著提高带有较多稀有密码子的E0基因在E.coli中的表达量,试验结果也证明E0蛋白得到了较高的表达量。

E0是BVDV编码蛋白中保守性较E2更高的蛋白,该蛋白上的中和表位产生的中和抗体具有中和BVDV和HCV的能力,氨基酸序列分析结果也表明,在此蛋白内有一高度保守的结构域,因此E0蛋白更适合做亚单位基因工程疫苗,E0蛋白氨基酸生物信息学分析也证明了这一点。本研究中所表达的E0蛋白在Western-blot试验中能与标准毒株制备的抗BVDV阳性血清发生免疫反应,证明了表达的BVDV QHZK株E0蛋白具有良好的抗原性。

[1] 陆承平.兽医微生物学[M].3版.北京:中国农业出版社,2001.

[2] Rumenapf T,Unger G,Strauss J H,etal.Processing of the envelope glycoproteins of peativiruses[J].Journal of Virology,1993,67(6):3288-3294.

[3] Hertig C,Stalder H,Peterhans E.Genetic Heterogeneity within the coding region of E2and NS2in strain of bovine viral diarrhea virus[J].Gene,1995,153(2):191-195.

[4] 项勋,段纲.牛病毒性腹泻/粘膜病病毒(BVDV)的分子生物学研究进展[J].家畜生态,2004,25(4):202-204.

[5] 李佑民,刘振润.牛病毒性腹泻/粘膜病病毒株(长春184株)的分离与鉴定[J].兽医大学学报,1983,3(3):113-120.

[6] Chen T,Inouye M.Suppression of the negative effect of minor argine codons on gene expression,preferential usage of minor codons with in the first 25codons of the Eschiscoli genes[J].Nucleic Acids Research,1990,18:1465-1473.

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