MicroRNA与哺乳动物的性腺发育

2013-01-21 01:16张晓东凌英会丁建平章孝荣
家畜生态学报 2013年1期
关键词:颗粒细胞性腺卵母细胞

向 浩,张晓东,凌英会,丁建平*,章孝荣*

(1.安徽农业大学动物科技学院,安徽合肥230036;2.安徽地方畜禽遗传资源保护与生物育种省级实验室,安徽合肥230036)

MicroRNA(miRNA)是一类长约21~24nt的单链小分子RNA,是非编码RNA 家族的重要成员之一,一般通过碱基配对的方式与靶mRNA 的3′非翻译区(3′Untranslated Regions,3′UTR)结合,从而降解靶mRNA 或抑制其表达,但并不影响其转录,它们在植物、线虫到人类的细胞中均广泛存在[1]。1993年,Lee等[2]研究人员最先发现miRNA是在秀丽新小杆线虫(C.elegans)中控制线虫时序性发育的小分子RNA:lin-4;时隔7年之后,Reinhart等[3]发现了另一个具有转录后调节功能的小分子RNA:let-7;在之后的几年时间里,大量长度类似的小分子RNA 被相继发现,并被研究人员命名为microRNA(miRNA)[4]。据推测,人类基因组中约有2/3的基因受到miRNA 的调控,而且miRNA 与靶基因之间广泛存在着“一对多”和“多对一”的关系,这使得机体内miRNA 与靶基因之间存在复杂的调控网络[5]。

研究表明,miRNA 与哺乳动物的性腺功能及繁殖性状密切相关。miRNA 在哺乳动物的卵巢和睾丸等生殖器官、组织中广泛表达,其表达量随性腺发育呈现动态变化,且能通过与性腺激素的相互作用而影响性腺发育及其内分泌活动,对卵巢和睾丸的正常发育影响巨大;另外,miRNA 还能促进卵母细胞的成熟和精子的分化,对受精卵发育也有重要的调控作用。

1 miRNA 的生物合成与作用方式

miRNA 的生物合成途径(图1)可分为多个步骤。首先,miRNA 基因由RNA 聚合酶II转录成长链初级miRNA(pri-miRNA),接下来,这些初级miRNA 经过分步分区处理,最终形成成熟的miRNA。在这个过程中,长片段的初级miRNA 首先在核内被Ⅲ型RNA 核酸内切酶Drosha剪切成约70~90 个碱基大小的前体miRNA(pre-miRNA),Drosha和双链RNA 结合蛋白DGCR8共同作用形成了一个微型的络合物[6];接着Pre-miRNA 在输出蛋白5(Expotin-5)的帮助下从核内转运至胞质(Ran-GTP 作为辅助因子),在胞质内,经过Ⅲ型RNA 核酸内切酶Dicer剪切成约22个核苷酸的双链miRNA[7];最后,双链miRNA 被拆分成单链的成熟miRNA[8]。

成熟的miRNA 与RNA 诱导的沉默复合体(miRISC,也被称作核糖核蛋白复合体(miRNP))结合而发挥作用。在RISC上,miRNA 可以通过两种不同的方式下调控靶基因的表达(图1),即抑制翻译或降解靶mRNA,具体是哪种方式由miRNA 和靶基因结合蛋白Argonaute家族的互补程度决定:完全互补则会降解靶mRNA,只有部分互补则会抑制其翻译[9-10],准确的翻译抑制机制目前尚不清楚。以mRNA 为靶目标的miRNA 可能会被扣押在核糖体上[11],或者被补充到细胞质处理小体(Pbodies)中,并最终被降解[12]。

图1 miRNA 的生物合成过程及作用方式[13]Fig.1 The mode of biosynthesis and action of miRNA

2 miRNA 与卵巢功能

2.1 miRNA 与卵泡发育

研究表明,卵泡的正常发育和排卵的正常进行,需要大量基因表达产物的参与协调,且必须保证这些基因表达和信息交流在时空上的准确性,而miRNAs在此过程中也起到了重要作用。Tang等[14]对小鼠成熟卵细胞中的miRNAs进行了检测,结果发现了miR-30、miR-16、let-7 以及miR-l7-92 家族等多种miRNAs。Alford等[15]通过研究从妇女体内得到卵母细胞的颗粒/卵丘细胞发现,其中也存在着如miR-23a、miR-23b、miR-17-5p、miR-211和miR-542-3p等多种miRNAs。Munir[16]等通过建立牛卵巢miRNA 文库发现了50 个已知的和24 个新的miRNA 克隆,其中Bta-miR-29a在卵泡细胞的各个发育阶段均特异性表达。Hyo等[17]为了查明小鼠新生儿(NB)卵巢中miRNA 的表达情况,对小鼠NB卵巢组织中提取的miRNA 进行了测序。结果显示,let-7家族的表达最为丰富,MMU-MIR-672、MMU-MIR-322、MMU-miR-503和MMU-MIR-465家族是表达最丰富的X 染色体-连锁的miRNA。其中,MMU-miR-503、MMU-MIR-672 和 MMUMIR-465在睾丸和卵巢中优先表达[17]。

2.2 miRNA 与卵母细胞成熟

Murchison等[18]研究发现,在生发泡期的卵母细胞中,Dicer1的表达量很高,而随着卵母细胞的逐渐成熟以及受精活动的进行,其表达量逐渐降低,到2-细胞胚胎时其表达量降到了最低值。对卵母细胞特异性Dicer1-/-鼠(Dicer敲除小鼠,导致Dicer的表达量大幅下降)的研究表明,在卵母细胞的成熟过程中,miRNA 起到非常重要的作用,对Dicer1-/-鼠减数分裂时期的卵母细胞进行芯片分析的结果显示,共有861个mRNA 上调,而有173个mRNA 下调。由此推测,在卵母细胞中,miRNA 可能是通过对这些转录产物的调控来调节卵母细胞的成熟。Yao[19]等研究发现,MicroRNA-224通过和靶基因Smad4的作用来参与转化生长因子β介导的小鼠颗粒细胞的增殖和功能。而Martha等[20]研究发现,miR-21有阻碍小鼠排卵前颗粒细胞凋亡的功能。

2.3 miRNA 与卵巢性腺激素

Lam 等[21]发现,在雌性正常的生殖过程中,卵巢雌激素和孕酮的周期性变化对于排卵、胚胎着床和月经周期等是必不可少的环节。最近大量的研究表明,miRNA 通过与卵巢性腺激素之间的相互影响,实现对雌性动物生殖过程的调控。

一方面,类固醇激素影响miRNA 的生成。Pan等[22]发现,原代培养的人子宫内膜间质和腺上皮细胞经过17β-雌二醇和乙酸甲羟孕酮处理后,miR-20a、miR-21 和 miR-26a 的表达受到了影响。Yamagata等[23]研究发现,活化的雌激素受体(es-trogen receptor,ER)能通过与Drosha的相互作用来抑制pri-miRNAs的成熟,并最终导致这些miRNAs所作用的靶基因表达量增大。此外,Kuokkanen等[24]比较了人增殖期和分泌期子宫内膜中miRNAs的表达差异情况,结果显示,与增殖期相比,有miR-29b、miR-29c、miR-30b、miR-30d、miR-31、miR-193a-3p、miR-200c、miR-203、miR-204、miR-210、miR-345和miR-582-5p共12个miRNAs在分泌期表达量显著升高,而孕酮在此过程中起到了关键性的作用。

另一方面,miRNAs同样会影响卵巢类固醇激素的生成。Sirotkin 等[25]研究了miRNAs对人卵巢细胞分泌的主要性腺类固醇激素的影响,体外研究结果显示,如分别转染let-7b、let-7c和mir-15a等36种miRNAs,可提高人颗粒细胞孕酮的分泌量,而mir-16、mir-24和mir-25等10、51和57种miRNAs则会分别使孕酮、睾酮和雌二醇表达量降低,且有的抑制作用可高达4.5倍。有意思的是,Alexander等[26]也做了相似的研究,结果发现,在检测的80种miRNA 中,有36种抑制孕酮的分泌,而有10种促进孕酮的分泌。

此外,除类固醇激素外,促性腺激素也能调节miRNAs的生成。Fiedler等[27]对人排卵期卵泡颗粒细胞的研究发现,有13个miRNAs受LH(黄体生成素)调节,且对miR-132 和miR-212 这两个miRNA 的上调作用明显。Yao等[28]在体外培养了大鼠的颗粒细胞,并研究了孕酮对其miRNA 表达量的影响,结果发现,用孕酮对颗粒细胞处理12小时后,miR-29A 和miR-30D 的表达量显著下调;而处理48h 后,他们的表达量都增加。Yao等[29]发现,FSH(卵泡刺激素)对小鼠颗粒细胞中let-7a、miR-125b和miR-143的表达具有抑制作用。Yong等[30]研究了hCG(human chorionic gonadotrophin,人绒毛膜促性腺激素)对体外培养的小鼠卵泡细胞和颗粒细胞中miRNA 表达的影响,结果发现,相对于不添加hCG 的组,添加hCG 的卵泡细胞中miR-126,miR-143 和miR-721 的表达量下调;而添加hCG 的颗粒细胞中mmu-let-7b 表达量下调,其他的miRNA 的表达量在两种细胞中没有明显差异。

3 miRNA 与睾丸功能

3.1 miRNA 在睾丸中的表达

对于miRNA 在哺乳动物睾丸中的表达情况,研究人员们也做了一些研究。Yan等[31]以灵长类动物的睾丸组织为材料进行了研究,结果在恒河猴的未成熟和成熟的睾丸组织中共检测到66个(占总数的26.4%)差异表达的miRNA,其中23个上调,43个下调;而在人的未成熟和成熟的睾丸组织中共检测到76个(占总数的31.3% )差异表达的miRNA,其中有28 个上调,48 个下调。这些miRNAs可能调控精母细胞和精细胞在精子发生过程中的形成和分化。Lian等[32]研究发现,miR-122的表达量在成年猪的睾丸发育成熟的过程中逐渐升高;而miR-221的表达量在此过程中逐渐降低,这个结果说明miR-122和miR-221可能在睾丸的发育过程中起到不同的作用。他们在2012年分别建立了未成熟和成熟猪睾丸组织的小RNA 文库,检测发现了389种已经发现的或同源性的miRNAs,15种新的在猪上特异表达的miRNAs和56 个新的候选miRNAs。其中有122个miRNAs在未成熟和成熟猪睾丸组织中差异表达,且其中的10种经RT-PCR进行了验证[33]。

3.2 miRNA 与精子发生

与正常的体细胞不同,成熟的精子作为生殖细胞是一种特殊的单倍体细胞,其正常发生要经历一系列复杂的过程,离不开众多与之相关因子之间的精准调控。Katsuhiko等[34]发现,在小鼠精子发生过程中,miR-17-92 家族和miR-290-295 家族在精原细胞中高表达。Tong等[35]研究发现,miR-17-92和miR-106b-25可能会使Bim,Kit,Socs3 和Stat3的表达量下调;miR-17-92敲除小鼠会出睾丸缩小、产精数减少和精子发生减弱的现象;在精细胞内,miR-17-92表达量的减少会增加miR-106b-25的表达量,这些结果表明,miR-17-92和miR-106b-25可能通过相互协作的方式来调节精子发育。Liang等[36]研究发现,miR-34C 在精子细胞中高度表达,它能通过与靶基因ATF1的作用促使小鼠雄性生殖细胞凋亡。Mciver等[37]比较了小鼠精原细胞和精母细胞表达miRNA 的差异情况,结果显示miR-293、miR-291A-5P、miR-290-5p和miR-294 表达量上调,miR-136、miR-743a和miR-463表达量下调。

4 miRNA 与受精卵发育

受精卵是哺乳动物个体发育的起点,精卵融合成受精卵,并逐步发育成早期胚胎乃至个体,对于miRNA 与之的关系,也有人做了相关研究。Tang等[14]研究发现miR-17-92和let-7家族是受精卵中含量最丰富的母源miRNAs,他们进一步分析了在未成熟卵子逐渐发育成早期胚胎的过程中,未成熟卵子、成熟卵子、受精卵以及早期胚胎miRNA 的表达谱差异,结果显示,miRNA 的表达量会出现先降低,之后又上调的情况。此外,Tripurani等[38]发现,miR-196a 通过表达量的持续升高,导致NOBOX(新生儿卵巢同源盒基因)的表达量降低,从而调节小鼠的早期胚胎发育。Ronald等[38]对小鼠的早期胚胎的研究表明,miR-135A 能通过下调靶基因SIAH1A 的表达量来调节早期胚胎的体外发育。

5 小结

miRNA 能够通过与靶mRNA 特异性的碱基配对引起靶mRNA 的降解或者抑制其翻译,从而实现对基因转录后表达的调控。研究表明,miRNA广泛参与哺乳动物卵泡发育、精子发生、激素分泌、受精卵发育、妊娠维持等重要的生殖活动,与哺乳动物的性腺发育关系密切。但这其中还存在着一些问题,比如这些结果主要来自于小鼠和人,在其他哺乳动物上的研究还有待深入;有些是体外试验的结果,在体内的情况还不太清楚;而且,虽然越来越多的miRNA 已用不同的方法成功鉴定出来,但是单一某种miRNA 在哺乳动物生命活动中的作用及其机理也还有待更加深入的研究。

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