银耳孢子发酵物与益生素对生长肥育猪生长性能及肉品质的影响

丁文强 贾 刚 王康宁

(四川农业大学动物营养研究所，雅安 625014)

自50年代开始将抗生素作为猪的促生长剂以来，其弊端日益受到关注，益生素、某些多糖及中草药作为替代品以成为研究的热点。研究发现，添加银耳孢子发酵物(Tremella fuciformis Berk spore fermentation，TSF)后，在猪 20 kg以前其促生长效果与抗生素相当，此后其效果显著高于抗生素，且能改善肠道菌群，提高血清胰岛素样生长因子－Ⅰ(IGF－Ⅰ)和免疫球蛋白G(IgG)、免疫球蛋白 M(IgM)的含量，并对肉质有改善的作用［1－3］;益生素对仔猪也具有显著的促生长效果，但在肥育后期作用效果不一致［4－6］。TSF与益生素对生长肥育猪各阶段生长及胴体品质的影响有无差异还未见相关报道。本试验以抗生素作为对照，比较研究TSF与益生素对生长肥育猪各个阶段生长性能、肠道菌群、血液生化指标及肉品质的影响，为TSF的推广应用提供试验依据。

1 材料与方法

1.1 试验设计和试验动物

本试验采用单因素试验设计，将24头日龄相近，平均体重为(10.35±0.28)kg的“杜×太”杂交仔猪(公母各占1/2，全部去势)按照体重相近原则，随机分配到4个组，每个组6个重复，每个重复1头猪，4个组分别为对照组(饲喂基础饲粮)、抗生素组(在基础饲粮中添加0.15 g/kg土霉素+1.5 g/kg硫酸抗敌素)、TSF组(在基础饲粮中添加4 g/kg TSF)和益生素组(在基础饲粮中添加0.2 g/kg益生素)。试猪从10 kg饲喂到110 kg。

1.2 试验材料

TSF由四川禾本生物工程有限公司提供，其多糖含量为56.7%，是采用银耳孢子深层液体发酵，经干燥所获得的干粉末，每克粉末由5 mL发酵液与载体干燥而成，每毫升发酵液含银耳孢子5亿个。益生素制剂选用芽孢杆菌，由山东六和生物科技有限公司研制，有效活菌含量≥2.0×1010CFU/g。

1.3 基础饲粮与饲养管理

基础饲粮参照中国肉脂型生长肥育猪饲养标准(2004)分阶段配制成粉料，各阶段基础饲粮组成及营养水平见表1。试验在四川农业大学动物营养研究所试验场进行，所有试猪均单笼饲养，并自由采食和饮水。

1.4 测定指标与方法

1.4.1 生长性能

试验开始后每2周的第1天早上空腹称重1次，并准确记录各笼试验猪的喂料量与余料量，计算每头猪每阶段及全期的平均日采食量(ADFI)、平均日增重(ADG)及料重比(F/G)。

1.4.2 血液指标

在试猪平均体重达到20和110 kg时，每个组选取体重接近的4头猪，前腔静脉采血20 mL，静置30 min后离心制成血清备用。采用免疫透射比浊法检测血清中IgG、IgM、免疫球蛋白A(IgA)含量;采用ELISA试剂盒(美国GBD公司)检测血清中IGF－Ⅰ含量。

1.4.3 胴体性状及肉品质

在各组试猪平均体重达110 kg时空腹称重，从每个组中选取体重接近的4头猪进行屠宰，测定如下指标:屠宰率、眼肌面积、肌内脂肪，其中肌内脂肪采用索氏抽提法测定;滴水损失、剪切力测定方法参照中华人民共和国农业行业标准NY/T 821—2004《猪肌肉品质测定技术规范》［7］;pH 用酸度仪(丹麦 SFK pH－STAR)测定;肉色的亮度(L*)、红度(a*)、黄度(b*)值用色差计(日本MINOLTA CR－300)测定。

1.4.4 肠道菌群

屠宰后无菌收集盲肠内容物，送微生物实验室检测，其中大肠杆菌选用麦康凯琼脂培养基，乳酸杆菌选用MRS培养基，双歧杆菌选用添加1%莫匹罗星锂盐的MRS培养基，培养后采用平板菌落计数法进行细菌计数。

1.5 数据处理

用SPSS 13.0统计软件对数据进行单因素方差分析，试验结果以平均值±标准差表示。

2 结果与分析

2.1 银耳孢子发酵物与益生素对生长肥育猪生长性能的影响

从表2可以看出，在10～20 kg阶段，TSF组、益生素组和抗生素组的ADG、ADFI和F/G无显著差异(P＞0.05)，但ADG和ADFI均显著高于对照组(P＜0.05)。21～50 kg阶段，TSF组的ADG和ADFI较益生素组和抗生素组有所提高，但差异不显著(P＞0.05)。51～110 kg阶段，TSF组ADG显著高于益生素组(P＜0.05)，益生素组则显著高于抗生素组和对照组(P＜0.05)，后2组间无显著差异(P＞0.05);ADFI基本类似。从全期来看，ADG和ADFI变化与51～110 kg阶段一致。在F/G方面，各阶段及各组之间均无显著差异(P＞0.05)，只TSF组略低。从全期来看，生长性能最优的是TSF组，其次是益生素组，抗生素组又优于对照组。

2.2 银耳孢子发酵物与益生素对生长肥育猪血清中胰岛素样生长因子-Ⅰ含量的影响

从表3可以看出，在20 kg时，TSF组与益生素组血清IGF－Ⅰ含量显著高于抗生素组和对照组(P＜0.05)，益生素组与TSF组相当，差异不显著(P＞0.05)。110 kg时，TSF组的 IGF－Ⅰ含量显著高于其他3组(P＜0.05)，益生素组则显著高于抗生素组和对照组(P＜0.05)，而抗生素组与对照组无显著差异(P＞0.05)。

表1 基础饲粮组成及营养水平(风干基础)Table 1 Composition and nutrient levels of basal diets(air－dry basis) %

表2 银耳孢子发酵物与益生素对生长肥育猪生长性能的影响Table 2 Effects of TSF and probiotic on growth performance of growing－finishing pigs

表3 银耳孢子发酵物与益生素对生长肥育猪血清中胰岛素样生长因子-Ⅰ含量的影响Table 3 Effects of TSF and probiotic on serum IGF－Ⅰ content of growing－finishing pigs ng/mL

2.3 银耳孢子发酵物与益生素对生长肥育猪免疫功能的影响

从表4可以看出，在20和110 kg时，各组间血清IgA含量变化不大(P＞0.05)。在20 kg时，TSF组和益生素组血清中的IgG和IgM的含量显著高于抗生素组和对照组(P＜0.05)，而抗生素组与对照组无显著差异(P＞0.05)。在110 kg时，TSF组的IgG含量显著高于益生素组(P＜0.05)，而益生素组和抗生素组显著高于对照组(P＜0.05);TSF组和益生素组的IgM含量较抗生素组和对照组也有显著提高(P＜0.05)，但前2组间和后2组间均无显著差异(P＞0.05)。

2.4 银耳孢子发酵物与益生素对生长肥育猪肠道菌群的影响

从表5可以看出，TSF组、益生素组和抗生素组较之对照组均能一定程度抑制空肠、回肠、盲肠中的大肠杆菌的增殖，抗生素组达到显著水平(P＜0.05)，相对TSF组和益生素组效果更佳。TSF组和益生素组较之抗生素组能显著提高空肠、回肠、盲肠中乳酸杆菌和双歧杆菌数量(P＜0.05)，而TSF组与益生素组之间则无显著差异(P＞0.05)。

2.5 银耳孢子发酵物与益生素对生长肥育猪胴体性状和肉品质的影响

从表6可以看出，TSF组的眼肌面积显著高于对照组(P＜0.05)，略高于益生素组和抗生素组，但差异不显著(P＞0.05);肌内脂肪含量较之益生素组和抗生素组有提高的趋势。滴水损失，TSF组显著低于对照组(P＜0.05)，也低于益生素组和抗生素组，但差异不显著(P＞0.05);剪切力变化的规律与滴水损失基本类似。在屠宰率方面，TSF组较之益生素组与对照组有提高的趋势。TSF组的45 min和24 h肌肉pH和红度值较其他3组有提高的趋势，黄度和亮度值有降低的趋势，其中黄度值显著低于对照组(P＜0.05)。

表4 银耳孢子发酵物与益生素对生长肥育猪免疫功能的影响Table 4 Effects of TSF and probiotic on immune function of growing－finishing pigs g/L

表5 银耳孢子发酵物与益生素对生长肥育猪肠道菌群的影响Table 5 Effects of TSF and probiotic on intestinal flora of growing－finishing pigs lg(CFU/g)

3 讨论

3.1 银耳孢子发酵物与益生素对生长肥育猪生长性能的影响

本试验在生长肥育猪10～20 kg阶段，TSF的促生长效果与益生素和抗生素相当，但TSF组的ADG 还稍低，这与文敏等［1］、吴玉玲［2］、傅祖良等［3］的试验结果类似;而在21～50 kg阶段，TSF组ADG相比益生素组和抗生素组提高了6.7%和4.8%;50 kg以后，TSF组则显著高于益生素组、抗生素组和对照组，分别提高了3.7%、10.0%和10.3%，说明TSF要发挥作用的确存在一个适应过程。文敏等［1］、吴玉玲［2］和傅祖良等［3］的研究表明，此适应期为1～2周。在20 kg以前，益生素和抗生素抑制大肠杆菌，促进乳酸杆菌等有益微生物的效果较TSF来得快，可能是其原因。血清IGF－Ⅰ含量的变化规律也与ADG相吻合，与文敏等［1］试验结果一致，说明TSF和益生素促生长的效果与其能刺激机体分泌IGF－Ⅰ有关。在10～110 kg整个阶段，TSF组较益生素组ADG提高了4.2%，结合机体免疫功能和肠道菌群的变化情况，表明TSF促生长的效果较益生素更好。

表6 银耳孢子发酵物与益生素对生长肥育猪胴体性状和肉品质的影响Table 6 Effects of TSF and probiotic on carcass traits and meat quality of growing－finishing pigs

3.2 银耳孢子发酵物与益生素对生长肥育猪免疫功能的影响

机体免疫功能的增强，显然有利于提高动物对疾病的抵抗能力和生长性能。本试验从20 kg到110 kg体重，TSF组的免疫指标呈上升趋势，并逐渐超过益生素组，与文敏等［1］的试验结果一致。在110 kg时，TSF组血清中的IgG含量显著高于其他各组，说明TSF在生长肥育后期的效果更为明显，有可能超过益生素。邹建［8］、吴玉玲［2］和文敏等［1］的试验结果也表明，TSF能提高机体的体液免疫功能，并显著优于抗生素组和对照组。TSF提高机体的体液免疫功能的原因，从对肠道菌群的改善看，可能有类似益生素之处。有研究表明，益生素改善动物体的内环境，有益于益生菌群的生长，从而提高益生菌的代谢产物如超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽过氧物酶(GSH－Px)等，增强机体的生理机能，提高免疫水平［9］。

3.3 银耳孢子发酵物与益生素对生长肥育猪肠道菌群的影响

禹慧明等［10］研究报道，肠道中有害菌群的过度繁殖，与小肠下端养分过剩有关，有害菌的大量繁殖，产生更多的毒素。TSF与益生素一样，都能改善猪的肠道菌群，降低大肠杆菌的数量，提高乳酸杆菌和双歧杆菌的数量，显然有利于动物的生长，与 Muralidhara等［11］、毛倩等［12］的研究结果一致。TSF中所含的银耳多糖是一种甘露聚糖，Kakuta 等［13］、Quigley［14］、Flickinger 等［15］研 究 证实这类寡糖不能被单胃动物的消化道酶所分解，从而进入肠道后段，为乳酸杆菌、双歧杆菌等选择性利用，从而使这类有益菌得到增殖。而抗生素不但抑制大肠杆菌生长，也使乳酸杆菌和双歧杆菌数量变低，与易力等［16］的研究结果一致。这也是TSF组和益生素组在育肥后期较之抗生素组仍有较高平均日增重的又一原因。

3.4 银耳孢子发酵物与益生素对生长肥育猪胴体性状及肉品质的影响

从表6所列指标可见，TSF较之益生素和抗生素有改善胴体性状和肉品质的作用，尽管某些指标较之益生素未达显著水准，但升高或降低的趋势是明显的，特别是肌内脂肪含量、滴水损失、剪切力和黄度值改进较明显。文敏等［1］的试验也表明，TSF组较之抗生素组和对照组可显著提高胴体屠宰率和降低滴水损失，较对照组可显著提高眼肌面积，对肉色也有一定程度的改善，从而提高肌肉的嫩度，改善其适口性。而益生素组较之抗生素组与对照组在改善猪肉pH、肉色、肌内脂肪含量方面则无太大差异，与文敏等［1］和毛倩［17］的试验结果一致。说明TSF的确能改善胴体性状和肉品质，效果也优于益生素。

4 结论

本试验条件下:

① 在10～20 kg阶段，TSF促生长的效果与益生素和抗生素相当;在21～50 kg阶段，TSF与益生素相当，但明显优于抗生素;在50 kg以后，TSF优于益生素，而益生素优于抗生素，抗生素则无促生长的效果。

②TSF较之抗生素和益生素可改进猪肉品质，提高肌内脂肪含量和屠宰率，降低滴水损失和剪切力。

［1］文敏，贾刚，李霞，等.银耳多糖对生长肥育猪生产性能、免疫功能及肉质的影响［J］.动物营养学报，2010，22(6):1644 －1649.

［2］吴玉玲.银耳多糖替代喹烯酮和高铜对断奶仔猪生产性能及免疫功能影响［D］.硕士学位论文.雅安:四川农业大学，2006.

［3］傅祖良，王康宁，吴仿琪，等.银耳孢子发酵物及与pGRF基因质粒合用对断奶仔猪生长、部分免疫指标及肠道菌群的影响［J］.动物营养学报，2009，21(5):777－783.

［4］付水广，张水印，刘新平.益生素对断奶仔猪生产性能影响的研究［J］.江西畜牧兽医杂志，2009(3):34－35.

［5］孙建广，张石蕊，谯仕彦，等.发酵乳酸杆菌对生长肥育猪生长性能和肉品质的影响［J］.动物营养学报，2010，22(1):132 －138.

［6］陈文辉，周映华，李秋云，等.复合益生菌制剂对断奶仔猪生产性能和腹泻率的影响［J］.湖南畜牧兽医，2007(3):14－15.

［7］中华人民共和国农业部.NY/T 821—2004猪肌肉品质测定技术规范［S］.北京:标准出版社，2004.

［8］邹健.银耳多糖对断奶仔猪生产性能和肠道菌群及免疫功能的影响［D］.硕士学位论文.雅安:四川农业大学，2006.

［9］周伦江，邵良平，李国平，等.甘露聚寡糖和粪链球菌对雏鸡和哺乳仔猪SOD和GSH－Px活性的影响［J］.福建农业大学学报，1999，28(2):200 －203.

［10］禹慧明，廖玲，谢明权，等.断奶仔猪肠道菌群的研究［J］.中国微生态学杂志，2000，12(2):81 －82.

［11］MURALIDHARA K S，SHEGGEBY G G，ELLIKER P R，et a1.Effect of feeding Lactobacilli on the coliform and Lactobacillus flora of the intestinal tissue and feces from pigs［J］.Journal of Food Protection，1977，40:288－295.

［12］毛倩，陈代文，余冰，等.复合益生素对生长肥育猪生产性能、盲肠菌群及代谢产物的影响［J］.中国畜牧杂志，2010，46(17):34 －49.

［13］KAKUTA M，SONE Y，VMEDA T.Comparative structural studies on acidic heteropolysaccharides isolated form shirokikurage fruit body of Tremella fuciformis Berk and the growing culture of its yeast－like cell［J］.Agricultural and Biological Chemistry，1979，43(8):1659－1666.

［14］QUIGLEY J D.Intake growth and health of dairy calves in response to mannan－oligosaccharide and oral challenge with E.coli［J］.Journal Dairy Science，1996，79(Suppl.1):230.(Abstr.)

［15］FLICKINGER E A，WOLF B W，GARLEB K A.Glucose－based oligosaccharides exhibit different in vitro fermentation patterns and affect in vivo apparent nutrient digestibility and microbial populations in dogs［J］.The Journal of Nutrition，2000，130:1267 －1273.

［16］易力，汪洋，祖恩普，等.吉他霉素对断乳仔猪肠道菌群的影响［J］.安徽农业科学，2006，34(1):54，74.

［17］毛倩.植物源性益生素对生长育肥猪生产性能、肉质、盲肠微生物及代谢产物的影响［D］.硕士学位论文.雅安:四川农业大学，2009.