林 力,邓 碧,寿 铸,梁 佳,陈鸿雁△
(1.重庆医科大学附属第一医院耳鼻咽喉科 400016;2.重庆市渝北区人民医院麻醉科 401120)
硫链丝菌肽(thiostrepton,TST)是一种噻唑类抗生素,可从多株青链霉菌中分离获得[1]。最近,有研究发现TST可通过靶向作用于Forkhead box protein M1(Foxm1)转录因子抑制肿瘤细胞增殖,并且对其他转录因子的转录活性无影响;此外,用此类抗生素处理不同来源的人肿瘤细胞株,可在下调Foxml基因表达的同时诱导细胞凋亡[2]。
Foxm1是一种上调细胞增殖的转录因子,属叉头框家族(Fox家族)。有研究表明,它与胚胎发育、再生、衰老和肿瘤发生等许多病理生理过程密切相关[3]。本研究前期工作中发现Foxm1在鼻咽癌(nasopharyngeal carcinoma,NPC)组织中高表达,与NPC的分期及转移程度呈正相关。因此,本研究从细胞角度检测Foxm1在鼻咽癌HNE-1细胞株中的表达;同时检测TST对鼻咽癌HNE-1细胞株增殖抑制的作用及可能机制,现报道如下。
1.1材料
1.1.1肿瘤细胞系 人鼻咽癌HNE-1细胞株(购自中科院上海细胞所)。
1.1.2试剂与药品 RPIM1640(Gibco公司),新生小牛血清(杭州四季青公司),四甲基偶氮唑盐(MTT,上海华舜生物工程有限公司),二甲亚砜(DMSO,重庆医药股份有限公司),TST(Merck公司),免疫组化SABC试剂盒、DAB显色试剂盒、山羊抗兔二抗(北京中杉公司),兔抗人Foxm1多克隆抗体(Santa Cruz公司),Western blot相关试剂(碧云天生物技术公司)。
1.2方法
1.2.1细胞培养 将HNE-1细胞接种到含10%热灭活小牛血清的RPMI1640培养液中,置37℃、5%CO2饱和湿度孵箱内培养,细胞呈单层黏壁生长。传代时用0.1%胰酶-0.02%EDTA溶液消化,台盼蓝拒染法计算成活细胞数。
1.2.2TST对HNE-1细胞体外抑制实验 取对数生长期的HNE-1细胞,胰酶消化,离心,制成细胞悬液,调整细胞数为5×104/mL。取96孔培养板,每孔加入200μL细胞悬液,加入TST,使其终浓度分别为1、2、4、8、12、16μmol/L,每一浓度重复6孔,设试剂对照组及细胞对照组,置37℃、5%CO2孵箱内培养48h。离心后,小心去除上清液,每孔加无血清培养液200μL及5mg/mL MTT 20μL继续培养4h。离心,吸去上清液,每孔加200μL DMSO,置于振荡器上振荡10min,自动酶标仪上测出各孔吸光度值[D(490)],检测波长为490nm。上述实验均重复3次,计算细胞生长抑制率。
1.2.3TST对HNE-1细胞周期变化的影响 分别将浓度为1、2μmol/L的TST处理细胞48h后,实验设置对照组,收集HNE-1细胞,PBS洗涤2次。离心,去上清液,缓慢加入-20℃预冷的75%乙醇,固定1h。PBS洗涤2次,将等体积的细胞悬液和PI染液混合,4℃放置30min。将样品放入流式细胞仪(FCM)的样品室,以激发波长488nm测定,并用Modfit LT2.0软件分析细胞周期分布。
1.2.4免疫细胞化学法测定不同浓度TST作用于HNE-1细胞48h后Foxm1的蛋白表达 分别将终浓度为1、2μmol/L的TST处理细胞48h,同时设细胞对照组和以PBS代替Foxm1一抗的阴性对照组。参照免疫组化SABC试剂盒说明书进行。
1.2.5Western blot检测细胞Foxm1蛋白表达 将终浓度分别为1、2μmol/L的TST作用HNE-1细胞48h后,细胞裂解液提取胞浆蛋白,Bradford法测定含量后,取等质量的蛋白进行SDS-PAGE电泳分离,转膜(220mA 2h)后封闭1h,加入兔抗人Foxm1、β-actin一抗37℃孵育。洗涤后加入羊抗兔二抗孵育2h,TBST液洗涤膜3次,加入ECL化学发光试剂,曝光,成像。用Quantity one分析软件测定各条带光密度值。
1.3统计学处理 采用SPSS 17.0统计软件进行分析。计量资料采用s表示,进行多组均数比较的单因素方差分析,以P<0.05为差异有统计学意义。
2.1MTT法检测TST对HNE-1细胞的生长抑制作用 通过MTT观察到,TST对HNE-1细胞生长抑制作用明显。经各浓度TST作用48h后,HNE-1细胞的生长抑制率分别在8.31%、17.46%、34.28%、58.68%、87.91%、99.05% (表 1)。由此计算出TST作用于 HNE-1细胞48h的IC50为4.015 μmol/L。根据本结果,本文后续实验均选择浓度为1、2μmol/L的TST药物作用于HNE-1细胞。
表1 TST作用48h后对HNE-1细胞增殖抑制作用的影响(s)
表1 TST作用48h后对HNE-1细胞增殖抑制作用的影响(s)
组别 OD490 抑制率(%)
2.2TST对 HNE-1细胞周期变化的影响 用FCM检测TST作用于HNE-1细胞48h细胞周期的变化显示,经TST处理的两组细胞的G0/G1期细胞百分率(68.49±3.16%)%、(72.31±2.43)%均高于对照组(53.91±5.13)%,且差异有统计学意义(P<0.05)。结果还显示2μmol/L TST组G0/G1期百分率高于1μmol/L TST组(P<0.05),见表2。
2.3免疫细胞化学法测定不同浓度TST作用于HNE-1细胞48h的Foxm1蛋白表达量 Foxm1在对照组细胞质内表达明显,不同浓度TST作用于HNE-1细胞48h的Foxm1蛋白表达减少,并且TST浓度越大,Foxm1蛋白表达减少越明显。利用分析测量图像软件Imagepro-Plus5.0进行半定量分析,各浓度TST组的平均光密度值(TST 1μmol/L组:0.207±0.008,TST 2μmol/L组:0.186±0.006)与对照组(0.224±0.008)比较,差异有统计学意义(P<0.05),见封3图1。
表2 TST对HNE1细胞周期变化的影响(s,%)
表2 TST对HNE1细胞周期变化的影响(s,%)
a:P<0.05,与空白对照组比较;b:P<0.05,与 TST 1μmol/L组比较。
组别 G0~G1 S G2/M 53.01±5.13 26.66±1.04 20.33±1.03 TST 1μmol/L组 68.49±3.16a18.33±1.13a13.18±2.31a TST 2μmol/L组 72.31±2.43ab 14.18±1.21ab 13.51±2.52对照组ab
2.4Western blot检测不同浓度 TST作用于 HNE-1细胞48h的Foxm1蛋白表达 作用48h后对照组和各浓度TST组均可见明显的Foxm1蛋白表达,在经TST处理的细胞上表达尤其明显。将各浓度TST组Foxm1/内参灰度比值(TST 1 μmol/L组:0.831±0.014,TST 2μmol/L组:0.758±0.026),与对照组(0.962±0.016)进行比较,差异有统计学意义(P<0.05),见图2。
图2 Western blot检测不同浓度TST作用于HNE-1细胞48h的Foxm1蛋白表达
鼻咽癌是中国南方常见的头颈部恶性肿瘤之一,化疗是目前晚期鼻咽癌的主要治疗方案之一,但由于化疗药物毒副作用大,临床应用受到限制[4]。肿瘤的发生、发展是一个多因素协同作用的过程,包括病毒感染、致癌物作用、癌基因激活和抑癌基因失活、细胞凋亡和增殖调节失调等多个因素多个环节[5]。随着肿瘤发生、发展过程中新的肿瘤分子机制的不断阐明,全新的肿瘤治疗策略应运而生。其中靶向治疗是目前肿瘤治疗的研究热点[6]。
Foxm1基因是一种增殖特异性基因,与胚胎发育、衰老、再生和肿瘤等许多病理、生理过程关系密切[7]。目前,有研究发现,Foxm1在肝癌、基底细胞癌、乳腺癌 、肺癌等多种肿瘤中高表达,参与肿瘤的发生、发展[8-12]。Foxm1有望成为一种潜在的全新肿瘤治疗靶点。另有报道,TST可特异性抑制乳腺癌细胞中Foxm1,而达到抑制肿瘤生长的作用[7]。
作者的前期研究发现,Foxm1在人鼻咽癌组织中高表达,并与鼻咽癌的分期及转移程度呈正相关。因此,本研究从细胞角度检测Foxm1在鼻咽癌HNE-1细胞株中的表达;同时检测TST对鼻咽癌HNE-1细胞株增殖抑制的作用及与Foxm1相关的可能机制,结果显示:(1)TST对HNE-1有明显的增殖抑制作用,并且随浓度的增加,增殖抑制作用增强,这与Nicolaou等[13]报道TST对肺癌细胞株具有较强的增殖抑制作用相符。(2)在TST作用后的 HNE-1细胞中,G0/G1期细胞百分率增加,导致HNE-1细胞阻滞在G0/G1期,并且呈剂量依赖性,这与Koo等[2]报道TST阻滞乳腺癌细胞株于G0/G1期是相符的。(3)随TST浓度的增加,Foxm1蛋白表达量的表达逐渐减少;TST对 HNE-1细胞的增殖抑制作用可能是通过抑制Foxm1蛋白表达实现的,这与Bhat等[14]报道相符。
综上所述,TST对人鼻咽癌HNE-1细胞株具有较好的体外增殖抑制作用,其机制可能是通过抑制肿瘤细胞中Foxm1转录因子的蛋白表达实现的。本实验可为Foxm1基因成为肿瘤治疗的新靶点及其特异性抑制剂TST的临床应用提供一定的实验室基础。
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