VEGF在不同皮肤扩张方式中表达的意义

2012-04-29 05:50常谨等
中国美容医学 2012年19期
关键词:血管内皮生长因子

常谨等

[摘要]目的:探讨VEGF在不同皮肤扩张方式中的表达与扩张皮瓣中新生血管的形成关系,建立适合于临床的最佳的皮肤扩张方式。方法:选用62只新西兰大白兔随机分为5大组,随机将动物按不同扩张方式分为5组:A组(反复快速扩张组)、B组(快速扩张组)、C组(常规扩张组)、D组(植入不扩组)、E组(正常对照组),采用免疫组织化学染色观察扩张皮瓣中VEGF的表达情况。结果:在维持1周,A组的VEGF表达明显高于B组和C组(P<0.05),B组与C组差异不明显(P>0.05);在维持2、3、4周A组与B组、C组比较均无显著性差异(P>0.05);在维持6周,A组的VEGF表达与B组比较无显著性差异(P>0.05);维持6周的A组和B组的VEGF表达明显高于维持4周的C组(P<0.05)。结论:反复快速皮肤扩张可明显提高扩张皮瓣中VEGF的合成与分泌,促进血管形成。

[关键词]皮肤扩张术;血管生成;血管内皮生长因子(VEGF)

[中图分类号]R622R332[文献标识码]A[文章编号]1008-6455(2012)10-0-0

目前皮肤软组织扩张术已广泛应用于整形外科中[1-6],成为整形外科的重要治疗手段和常用的基本技术。临床上应用最多的扩张方式为常规扩张方式。但此法疗程较长、并发症多[7-12]。国内外学者对此发展了各种快速扩张方式[13-16],这些方法均不同程度上缩短了疗程,但可能导致组织坏死,还存在诸如回缩率较高、操作繁琐、设备昂贵等弊端。近年微创技术的出现有效减少了并发症[17]。本研究结合目前临床常用的常规扩张法与快速扩张法的特点,拟采用一种新型的皮肤软组织扩张方式-反复快速皮肤扩张,通过对新西兰大白兔皮肤扩张,应用免疫组织化学的方法,观察反复快速皮肤扩张对皮瓣血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)表达的影响,并探讨建立更适应于临床的皮肤扩张方式提供实验依据。

1材料与方法

1.1 实验动物:62只雄性新西兰大白兔,6月龄,体重2~3kg,由河北医科大学动物实验中心提供,冀医动管字610063号。动物分笼饲养,统一饲料,自由饮食。

1.2 动物分组:随机将动物按不同扩张方式分为5组:A组(反复快速扩张组)、B组(快速扩张组)、C组(常规扩张组)、D组(植入不扩组)、E组(正常对照组),A、B组每组20只动物,C组16只动物,D组5只动物,E组1只动物。

1.3 皮肤扩张动物模型制备:手术区备皮,术前称量体重,2.5g/L戊巴比妥钠(25mg/Kg)于耳缘静脉注射行全身麻醉。麻醉显效后,常规消毒手术区、铺无菌巾。自两耳根后缘连线间,横行切开长约2.5cm皮肤切口,切开皮肤及皮下组织,血管钳向前钝性分离头部皮肤与颅骨骨膜的疏松附着,分离范围:两侧近眶骨上缘1cm,前部距鼻翼2cm处。自皮肤切口处,于植入腔内植入容量为50ml的肾形扩张器,上海东月医疗保健用品有限公司产,产品批号:050301。植入前自注射壶注射无菌生理盐水检查扩张器有无渗漏。注射壶埋入颈部皮下,严密缝合皮肤切口。自注射壶注入无菌生理盐水5ml。术毕即刻肌肉注射庆大霉素8万单位,术后每日肌肉注射庆大霉素8万单位至术后3天。扩张器植入术后第3天开始扩张皮肤(见图1)。

1.3.1 A组:每日扩张1次;每次自注射壶注入无菌生理盐水20ml, 维持30min;然后抽出全部注入液体,间隔3h;照上述方法反复3次,最后一次抽出15ml液体,扩张器内留置5ml无菌生理盐水。每日重复上述步骤,10日完成注水。

1.3.2 B组:每日扩张1次;每次自注射壶注入无菌生理盐水5ml,10日完成注水。

1.3.3 C组:每3日扩张1次;每次自注射壶注入无菌生理盐水5ml,28日完成注水。

1.4 标本采集与处理:A、B组分别于扩张完成后维持1周、2周、3周、4周、6周;C组分别于扩张完成后维持1周、2周、3周、4周随机抽取4只动物留取标本。D组分别于植入扩张器后1周、2周、3周、4周、6周随机抽取1只动物留取标本。修剪表面毛发后,全麻下于扩张皮瓣中央处切取约1cm×1cm大小的扩张全层皮肤组织块。投入10%甲醛溶液中固定,常规脱水、透明、浸蜡、包埋,制成4μm连续切片。进行VEGF免疫组织化学观察。

1.5 VEGF阳性判定标准:VEGF表达主要见于细胞浆内,表现为棕黄色颗粒或黄褐色颗粒分布于胞浆中。VEGF阳性表达以胞浆胞膜有棕黄色颗粒为准。VEGF在上皮细胞、成纤维细胞及血管内皮细胞均有表达。

1.6 VEGF含量的判定:采用计算机自动图像分析系统在高倍镜下(200×)沿皮肤纹路随机选取5个不同的皮肤组织区域,测定其阳性细胞所占比例,以阳性细胞染色的积分光度值(integrated optical density, IOD)来表示抗原表达量。阳性染色的积分光度越高,说明阳性细胞数量越多。

1.7 统计学处理:VEGF计量资料用均数±标准差(x±s)来表示,运用SPSS 11.5软件包进行统计学分析。以P<0.05具有统计学意义。

2结果

2.1 一般情况:动物实验过程中,所有实验动物未出现感染、扩张器外露、皮瓣坏死等并发症,均成活到预定观察时间。

2.2HE染色组织学观察:A、B、C组:维持1、2周时,微血管明显增生,排列密集,管腔较小,圆形或类圆形,主要集中于真皮乳头层、网状层以及毛囊周围;维持4周时,血管数量较多,排列较密集,管腔较大。

D组:血管增生不明显,管腔明显,排列比较稀疏,可见一些小血管稀疏排列在真皮浅层、网状层和毛囊周围。

2.3VEGF的表达:VEGF的染色特点:VEGF的阳性定位于细胞的胞浆,反应物质呈黄色颗粒状,表达较强时为棕黄色。VEGF主要表达于上皮细胞,成纤维细胞、血管内皮细胞亦可以见阳性染色,在毛囊细胞及皮脂腺细胞也可见表达(见图2~3)。

A、B、C三组在维持1周VEGF的表达均处于较高水平(见图4),随着维持时间的延长,VEGF的表达呈下降趋势,在维持4周时(见图5),VEGF的表达接近正常皮肤的水平,而后再次升高(表1)。

在维持1周,A组的VEGF表达明显高于B组和C组(P<0.05),B组与C组差异不明显(P>0.05);在维持2、3、4周,A组与B组、C组比较均无显著性差异(P>0.05);在维持6周,A组的VEGF表达与B组比较无显著性差异(P>0.05);维持6周的A组、B组VEGF表达明显高于维持4周的C组(P<0.05)(表2)。

3讨论

3.1 VEGF也称血管通透性因子(vascular permeability factor, VPF)或促血管素,最初是由培养的肿瘤细胞中发现的一种新型生长因子,能增加微小血管通透性。随后发现该因子能特异性地作用于血管内皮细胞,并促进其增殖,因此命名为VEGF。VFGF通过和血管内皮细胞的特异性受体结合,具有促内皮增殖、促血管生成作用,其它血管生成因子的血管生成作用是全部或部分通过增强VFGF的表达及生成作用实现的。VFGF的生物学特性主要表现在两方面:增加微血管的通透性和特异性的与血管内皮细胞受体结合,促进血管内皮细胞的分裂和增殖进而导致新生血管的生成。

3.2 扩张后扩张皮肤微血管的变化是一个复杂的过程,受内皮细胞生长因子等多种血管活性因子的影响。早期研究表明在扩张的组织中细胞活性增加[18-19]。扩张时增加了皮肤局部缺血、缺氧程度[18,20-21],局部缺血造成VEGF的合成、分泌增加。皮肤扩张除可产生额外的皮肤组织,且能明显促进血管增生。Lantieri等[22]采用免疫组织化学方法,首次发现扩张皮肤组织内VEGF表达增多,在真皮浅层、毛囊及皮脂腺均可见强烈表达,证明在组织扩张时局部缺血诱导产生VEGF可能是组织扩张中血管发生的一个机制。

3.3 本实验研究发现,皮肤组织在受到扩张刺激后,VEGF合成与释放增加,三种扩张方式均可造成扩张皮肤组织中VEGF的高表达。三组扩张皮肤组织中VEGF的高表达在维持前期保持在较高水平,在维持期2周时表现为急速下降趋势,以后呈平稳下降趋势,在维持期4周时,VEGF的表达下降至正常水平。可能的原因:长期的缺血、缺氧致细胞的代偿性活性增强,VEGF合成、分泌增加,至维持期第2周时,失代偿后细胞凋亡,VEGF合成、分泌减少;造成VEGF的表达在维持期2周时的急速下降趋势。折线图中显示反复快速扩张组的VEGF表达高于快速扩张组和常规扩张组。表明:反复快速扩张的刺激,增加了组织细胞的活性,促进了VEGF合成、分泌的增加,而VEGF分泌的增加,又进一步促进了内皮细胞增殖,促使扩张皮瓣中血管增生。随着维持时间的延长,局部缺血、缺氧程度逐渐减轻,VEGF的表达趋于正常水平。

[参考文献]

[1]Xiaobo Y, Haiyue J, Hongxing Z, et al. Post-traumatic ear recontruction using postauricular fascial combined with expanded skin flap[J].J Plast Reconstr Aesthet Surg,2011, 64(9):1145-1151.

[2]Crosby MA,Dong W,Feng L,et al. Effect of intraoperative saline fill volume on perioperative outcomes in tissue expander breast reconstruction[J].Plast Reconstr Surg.2011,127(3):1065-1072.

[3]Chummun S,Addison P, Stewart KJ. The osmotic tissue expander: a 5-year experience[J].J Plast Reconstr Aesthet Surg,2010,63(12):2128-2132.

[4]Marquardt C, B?lke E, Gerber PA,et al. Correlation of cutaneous tension distribution and tissue oxygenation with acute external tissue expansion[J].Eur J Med Res,2009,14(11):480-486.

[5]Dotan L, Icekson M, Yanko-Arzi R,et al. Pediatric tissue expansion: our experience with 103 expanded flap reconstructive procedures in 41 children[J]. Isr Med Assoc J,2009,11(8):474-479.

[6]Spence RJ.An algorithm for total and subtotal facial reconstruction using an expanded transposition flap: a 20-year experience[J].Plast Reconstr Surg,2008,121(3):795-805.

[7]Gladstone HB, Stewart D.An algorithm for the reconstruction of complex facial defects[J].Skin Therapy Lett.2007,12(2):6-9.

[8]范金财,张卓男,陈玉刚,等.人体组织扩张器非感染性并发症相关细菌学分析研究[J].中国美容医学,2007,16(2):151-152

[9]周晓力,邱明晰,许庆建,等.应用皮肤软组织扩张器出现并发症原因分析[J].组织工程与重建外科杂志,2008,14(1):18.

[10]王美水,王彪,庄福连,等.间断扩张术和持续注水扩张术并发症的比较分析[J].中国美容医学,2007,16(9):1212-1213.

[11]李海东,蔡国斌,李斌斌,等.胸腹部埋置扩张器并发症的分析与处理[J].中国美容整形外科杂志,2007,18(1):46-48.

[12]Adler N, Dorafshar AH, Bauer BS, et al.Tissue expander infections in pediatric patients: management and outcomes[J].Plast Reconstr Surg,2009,124(2):484-489.

[13]Marks MW, Mackenzie JR, Burney RE,et al.Response of random skin flaps to rapid expansion[J].J Trauma.1985,25(10):947-952.

[14]Schmidt SC, Logan SE, Hayden JM, et al.Continuous versus conventional tissue expansion: experimental verification of a new technique[J].Plast Reconstr Surg,1991,87(1):10-15.

[15]Mustoe TA, Bartell TH, Garner WL.Physical, biomechanical, histologic, and biochemical effects of rapid versus conventional tissue expansion[J].Plast Reconstr Surg, 1989,83(4):687-691.

[16]Iwahira Y, Maruyama Y.Combined tissue expansion: clinical attempt to decrease pain and shorten placement time[J].Plast Reconstr Surg,1993,91(3):408-415.

[17]Egeland BM, Cederna PS.A minimally invasive approach to the placement of tissue expanders[J].Semin Plast Surg,2008,22(1):9-17.

[18]Argenta LC, Marks MW, Pasyk KA. Advances in tissue expansion[J].Clin Plast Surg, 1985, 12(2):159-171.

[19]Austad ED, Pasyk KA, McClatchey KD,et al. Histomorphologic evaluation of guinea pig skin and soft tissue after controlled tissue expansion[J].Plast Reconstr Surg,1982, 70(6):704-710.

[20]Marks MW, Burney RE, Mackenzie JR, et al.Enhanced capillary blood flow in rapidly expanded random pattern flaps[J].J Trauma, 1986, 26(10):913-915.

[21]Banai S, Shweiki D, Pinson A, et al.Upregulation of vascular endothelial growth factor expression induced bymyocardial ischaemia:Implications for coronary angiogenesis[J].Cardiovasc Res, 1994, 28(8):1176-1179.

22]Lantieri LA, Martin Garcia N, Wechsler J, et al. Vascular endothelial growth factor expression in expanded tissue:a possible mechanism of angiogenesis in tissue expansion[J].Plast Reconstr Surg, 1998, 101(2):392-398.

[收稿日期]2012-06-28[修回日期]2012-08-27

编辑/张惠娟

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