二甲基苯蒽诱发大鼠乳腺癌的病理及淋巴管生成的研究

2012-04-12 21:01邹利光戚跃勇廖翠薇梁开运
实用癌症杂志 2012年1期
关键词:淋巴管内皮细胞肿块

邹利光 张 松 戚跃勇 廖翠薇 梁开运

乳腺癌是威胁妇女健康最常见的恶性肿瘤,乳腺内淋巴管十分丰富,淋巴道转移是乳腺癌最常见的转移途径,是决定乳腺癌分期和治疗方案选择的关键因素之一[1]。随着淋巴管内皮细胞相关因子研究的进展,探讨淋巴管生成与乳腺癌转移扩散的关系成为乳腺癌研究新的热点[2,3]。本文采用二甲基苯蒽灌胃诱发大鼠乳腺肿瘤,动态观察乳腺癌发生过程中乳腺组织形态学改变和淋巴管密度(lymphatic vessel density,LVD)变化,分析乳腺癌病理分级与肿瘤LVD的相关性。

1 材料与方法

1.1 动物模型建立

38~50天龄SPF级Wistar雌性大鼠96只,体重105~142 g,由第三军医大学实验动物中心提供。7,12-二甲基苯蒽(7,12- demethylbenz[a] anthracene,DMBA)(美国Sigma公司),兔抗鼠 podoplanin抗体(AngioBio公司)。配制浓度为10 mg/ml的DMBA麻油溶液,将96只大鼠分批进行灌胃,一次剂量为1 ml,1周后,应用同样的剂量进行第2次灌胃。

1.2 病理观察

造模后每日观察大鼠大体情况,手摸6对乳腺部位,记录有无特殊改变。从第1次灌胃日计时,排除9周前早期死亡的16只大鼠,存活≥10周大鼠80只。从第10周开始,每2周取10只大鼠活杀,至第24周处死所有大鼠。取乳腺肿瘤组织置于10%甲醛液中固定,石蜡包埋。HE染色,确定乳腺肿瘤病理类型及分化程度。乳腺肿瘤组织学分类参照WHO乳腺肿瘤组织学分类标准(2003)[4],大鼠乳腺癌病理诊断参照Dunn等提出的实验性大鼠乳腺癌的诊断标准[5]。参照微血管密度计数法,采用“热点”法计数淋巴管密度,低倍视野(×100)下寻找热点,高倍视野(×200)下计数3个视野最高数目的微淋巴管,以其平均数表示。分别计数肿瘤中央和周边部位的LVD。取乳腺肿块组织抗podoplanin抗体免疫组化和免疫荧光染色,观察抗podoplanin抗体与淋巴管特异性结合情况。

1.3 统计学处理

采用SPSS 13.0软件进行数据分析,均数差异采用单因素方差分析,P<0.05为有统计学意义。

2 结果

2.1 乳腺肿瘤诱发结果

16只大鼠于9周内死亡,80只大鼠存活≥10周。第8周开始大鼠乳腺内出现小结节,大小0.3~0.5 cm,为乳腺普通增生或非典型增生,随观察时间延长,乳腺肿块增多增大,第12周发展为乳腺癌,到后期乳腺肿块以乳腺癌为主。80只大鼠中,75只成功诱发乳腺肿块,其中乳腺良性增生16只,炎性肉芽肿2只,乳腺癌57只,乳腺癌诱发成功率为71.25%。57只乳腺癌大鼠共有72个乳腺肿块,其中43个肿块分布于第一对乳腺,15个肿块分布于第二对乳腺,第三、四对乳腺各4个肿块,第五、六对乳腺各3个肿块。诱发肿瘤最小直径为0.4 cm×0.5 cm,最大直径为3.1 cm×3.5 cm。同一大鼠乳腺肿瘤数:1个肿瘤42只,2个肿瘤9只,3个肿瘤4只。所有乳腺肿瘤均为实性肿块,良性增生肿块形态较规整,边界清楚;恶性肿瘤形态不规整,可见分叶,8个乳腺癌中央有坏死区。

2.2 病理形态学观察

第10周见有类似于人乳腺导管上皮细胞普通增生和非典型增生,随观察时间延长,乳腺上皮细胞非典型增生更加明显,第12周见有乳腺癌形成。16只乳腺良性增生大鼠中,非典型增生11只,旺炽性增生2只,腺病3只。乳腺癌表现为细胞核大、异型、深染、排列紊乱。57只乳腺癌大鼠中,浸润性导管癌34只,浸润性小叶癌9只,乳头状腺癌6只,其他类型肿瘤8只。不同部位肿瘤分化程度有明显差异,高分化6只,中分化30只,低分化21只。

2.3 肿瘤淋巴管密度

Podoplanin免疫组化染色阳性定位于淋巴管内皮细胞的胞膜及胞质内,可见微淋巴管被染成棕黄色,阳性淋巴管多为单层内皮形成,管壁薄,多呈扩张型,管腔大,形状不规则,或者呈闭锁条索状,有的淋巴管存在管壁的开放,且可观察到癌栓从淋巴管开放处进入淋巴管内的现象,管内偶见淋巴细胞,也可见几个内皮细胞构成的细胞簇,甚至单个内皮细胞。非典型增生可见个别新生淋巴管和少量较大、较成熟淋巴管,旺炽性增生与腺病未见新生淋巴管,16只乳腺增生性疾病大鼠LVD平均值为(1.52±0.23)个/高倍视野。乳腺癌棕黄色微淋巴管“热点”区,多位于肿瘤边缘部位和癌巢周围的间质中,边缘区LVD明显高于中央区。乳腺癌LVD随肿瘤分化程度的降低而升高,高分化、中分化和低分化乳腺癌LVD分别为(4.43±0.68)、(5.83±1.03)和(9.48±0.93)个/高倍视野,平均值为(6.93±0.84)个/高倍视野。乳腺癌LVD显著高于乳腺增生性疾病(F=14.03,P<0.01),低分化乳腺癌LVD显著高于中、高分化乳腺癌(F=38.25,P<0.001)。不同组织学类型乳腺癌LVD差异无统计学意义(F=3.35,P>0.05)。

3 讨论

大鼠乳腺癌模型的建立有诱发性、种植性和自发性3种类型,以DMBA诱导大鼠乳腺癌属于诱发性模型,是较为成熟的乳腺癌动物模型,广泛用于肿瘤的病理形态学、分子生物学、影像诊断和药物治疗研究[6,7]。淋巴管在恶性肿瘤的生物学中扮演着重要的角色,肿瘤生长最初是通过简单的扩散方式获得所需营养的,淋巴管呈网状参与血流氧气和淋巴成分的扩散,维持肿瘤生长。相对于血管而言,淋巴管不仅营养原发肿瘤,而且也有利于转移瘤的生长和再转移[4~7]。淋巴管的管腔比较粗,管壁较薄、流速缓慢,与组织液的组成基本相同,因此更有利于肿瘤细胞的存活和转移扩散。另外,淋巴管参与肿瘤新生血管的形成,也会间接促进肿瘤生长。研究表明,肿瘤周边与肿瘤内部淋巴管的功能存在显著差异,肿瘤内部淋巴管因挤压而呈条索状甚或闭塞状,淋巴管功能较低;而肿瘤周围及瘤旁的淋巴管则呈扩张状态,淋巴管内皮细胞间的连接由复杂型向简单型过渡,大量连接开放形成宽的内皮细胞间隙通道[8]。肿瘤周边部分淋巴管密度较大,淋巴管功能较明显。目前认为,无论肿瘤内部还是肿瘤周围淋巴管,均与肿瘤淋巴转移密切相关[9,10]。

人们已经发现很多淋巴管标记物可用于识别淋巴管,目前认为比较好、应用最多的淋巴管标记物主要有下列3种:VEGFR-3、淋巴管内皮透明质酸受体-1(LYVE-1)以及podoplanin。VEGFR-3也称FLT4,属于受体型酪氨酸蛋白激酶家族成员,是最早发现的淋巴管内皮特异性分子标记物,曾经认为VEGFR-3是1个淋巴管内皮特异性标志物,最近研究发现,它在正常组织的某些小血管和一些病理状态下新生的血管中有表达,在血管母细胞瘤、成胶质细胞瘤等一些缺乏淋巴管的肿瘤中也有表达[8,9]。LYVE-1与透明质酸在淋巴管腔表面共同表达,过去曾认为LYVE-1是特异性最强的淋巴管内皮特异性标志物,但近来研究发现,在肝脏和脾脏的血窦内皮细胞及胎盘合胞体滋养层细胞中都有表达[10]。Podoplanin是1种细胞膜黏蛋白,最早发现于肾小球足突细胞,为淋巴管生成所必须,且能促进内皮细胞黏附、移行和淋巴管生成,podoplanin主要表达于淋巴管内皮细胞,在淋巴管瘤和具有淋巴分化的血管肉瘤中也有表达[11],主要是表达于小的淋巴管,而在血管内皮中不表达。上述3种淋巴管标记物中,podoplanin在淋巴管内皮细胞中表达特异性强,且只表达于淋巴管内皮细胞,适用于区别淋巴管和血管。

LVD即单位面积中毛细淋巴管及淋巴管的数目,LVD计数成为目前公认的量化评价肿瘤血管生成活跃状况的指标,它可以反映肿瘤血管生成情况,并与肿瘤的恶性程度密切相关,评价LVD对区分肿瘤良恶性和分级、判断肿瘤预后有重要的价值[2,8]。我们研究发现,随着乳腺肿瘤组织分化程度的降低,LVD逐渐升高,乳腺癌LVD显著高于乳腺增生性疾病。不同组织学类型乳腺癌间LVD差异无统计学意义,不同分化程度肿瘤间其差异有统计学意义,低分化乳腺癌LVD显著高于高分化和中分化乳腺癌。乳腺癌不同部位分化程度可存在显著差异,podoplanin免疫组化染色“热点”区多位于肿瘤边缘部分,肿瘤周边部分生长活跃,肿瘤淋巴管生成明显,LVD较中央部高。

总之,DMBA灌胃诱发大鼠乳腺癌是较为成熟的乳腺癌动物模型,Wistar雌性大鼠对药物耐受性较好,乳腺肿瘤诱发成功率较高。乳腺癌淋巴管丰富,肿瘤淋巴管生成是其生长、浸润和转移的基础,随着肿瘤恶性程度的增高,在大量促淋巴管生成因子的作用下,出现了大量肿瘤新生淋巴管,肿瘤新生淋巴管导致LVD增高,LVD与肿瘤病理分级存在明显的相关性。

[1] Khosravi Shahi P,Soria Lovelle A,Pérez Manga G.Tumoral angiogenesis and breast cancer 〔J〕.Clin Transl Oncol,2009,11(3):138.

[2] Achen MG,McColl BK,Stacker SA.Focus on lymphangiogenesis in tumor metastasis〔J〕.Cancer Cell,2005,7(2):121.

[3] 李光明,段百芸.乳腺癌淋巴管密度的临床意义〔J〕.实用癌症杂志,2010,25(3):265.

[4] Tavassoli FA,Devilee P.WHO classification of tumours.Pathology & genetics,tumours of the breast and female genital organs 〔M〕.Lyon:IARC Press,2003:10.

[5] 高 进.肿瘤学基础及实验〔M〕.北京:北京医科大学中国协和医科大学联合出版社,1992:25.

[6] 李静蔚,宋爱莉,张敬涛,等.DMBA诱导大鼠乳腺癌癌前病变的组织病理学研究〔J〕.中华中医药学,2008,3(26):505.

[7] 张 辉,邹利光,逄 鑫,等.大鼠乳腺癌CT灌注成像与肿瘤病理分级和微血管密度相关性研究〔J〕.第三军医大学学报,2010,32(11):1131.

[8] Nakamura Y,Yasuoka H,Tsujimoto M,et al.Lymph vessel density correlates with nodal status,VEGF-C expression,and prognosis in breast cancer〔J〕.Breast Cancer Res Treat,2005,91(2):125.

[9] Le Bourhis X,Romon R,Hondermarck H.Role of endothelial progenitor cells in breast cancer angiogenesis:from fundamental research to clinical ramifications 〔J〕.Breast Cancer Res Treat,2010,120(1):17.

[10] Schledzewski K,Falkowski M,Moldenhauer G,et al.Lymphatic endothelium-specific hyaluronan receptor LYVE-1 is expressed by stabilin-1(+),F4/80(+),CD11b(+) macrophages in malignant tumours and wound healing tissue in vivo and in bone marrow cultures in vitro:implications for the assessment of lymphangiogenesis〔J〕.J Pathol,2006,209(1):67.

[11] Wicki A ,Christofori G.The potential role of podoplanin in tumor invasion〔J〕.Br J Cancer,2007,96(1):1.

猜你喜欢
淋巴管内皮细胞肿块
超声造影在周围型肺肿块穿刺活检中作用
浅议角膜内皮细胞检查
肺淋巴管肌瘤病肺内及肺外CT表现
胸内淋巴管瘤诊治进展
乳房有肿块、隐隐作痛,怎么办
雌激素治疗保护去卵巢对血管内皮细胞损伤的初步机制
细胞微泡miRNA对内皮细胞的调控
聚桂醇治疗左腋下巨大淋巴管瘤1例
慢性肿块型胰腺炎诊断和外科治疗
痰瘀与血管内皮细胞的关系研究