OLFM4在宫颈病变的表达及意义

2012-01-11 08:54朱高香侯洪春
关键词:肌层分化宫颈癌

朱高香 侯洪春

(1.泰山医学院,山东 泰安 271016;2.济南市妇幼保健院,山东 济南 250001)

宫颈癌是由癌前病变,即宫颈上皮内瘤变逐步发展形成的,经过了CINⅠ、CINⅡ、CINⅢ、早期浸润癌和浸润癌五个阶段,涉及细胞凋亡、细胞异常增殖及细胞的粘附等多个方面。本研究采用免疫组化法检测OLFM4在不同宫颈组织中的表达情况,探讨其与宫颈癌发生和病理学特征的关系,为宫颈癌的靶向治疗提供新的目标。

1 材料与方法

1.1标本 选取2008年1月至2011年8月在济南市妇幼保健院经宫颈活检、环形电切术及手术切除的宫颈组织蜡块标本135例,其中正常宫颈组织20例、宫颈上皮内瘤变83例(CINⅠ25例,CINⅡ31例,CINⅢ27例)、宫颈鳞癌32例。患者年龄21~66岁,中位数年龄42岁。宫颈癌根据FIGO标准分期:Ⅰ期18例,Ⅱ期14例;肿瘤最大径线:≤4 cm 23例,>4 cm 9例;组织分化程度:高分化组7例,中分化组13例,低分化组12例;肌层浸润深度:浸润浅肌层22例,浸润深肌层10例;无淋巴结转移者21例,有淋巴结转移者11例。患者术前均未接受放化疗,临床资料完整。

1.2免疫组化染色 采用S-P法,DAB显色。石蜡切片脱蜡水化后,高温高压EDTA抗原修复,3%H2O2消除内源性过氧化酶活性,山羊血清工作液封闭,滴加辣根酶标记的链霉卵白素工作液,DAB显色,苏木素复染。用已知阳性组织切片为阳性对照,PBS代替一抗作为阴性对照。

1.3结果判定 以胞浆内出现棕黄色颗粒为阳性细胞。首先计数阳性细胞率:无阳性细胞为0分;1%~10%为1分;10%~50%为2分;50%~80%为3分;>80%为4分。然后根据染色强度判断:无着色0分,淡黄色1分,棕黄色2分,棕褐色3分。根据两者的乘积判断结果:0分为阴性(-),1~4分为弱阳性(+),5~8分为阳性(++),9~12分为强阳性(+++)。

1.4统计学方法 采用SPSS13.0统计软件分析处理。多个样本率的比较采用Kruskal-Wallis检验,两样本率的比较用Mann-Whitney检验,相关性分析采用Spearman相关分析。

2 结 果

2.1 OLFM4在正常宫颈组织、宫颈上皮内瘤变及宫颈癌中的表达

OLFM4阳性颗粒主要定位于胞浆,胞核亦可见少量着色。其在正常宫颈组织、CIN、宫颈癌各组中的表达情况见图1-5,阳性表达率分别为20.0%、94.0%、96.8%,有逐渐上升的趋势,CIN组与宫颈癌组及正常宫颈组相比,差异均有统计学意义(P<0.01);宫颈癌组与CIN组相比,差异亦有统计学意义(P<0.05)。见表1。

2.2 OLFM4在各级CIN中的表达

CIN组内随病变程度的增加,OLFM4阳性表达率分别为92.0%、93.5%、96.3%,有逐渐上升的趋势,CINⅡ与CINⅢ及CINⅠ相比,差异均有统计学意义(P<0.01);CINⅡ与CINⅢ阳性表达率差异无统计学意义(P>0.05)。见表1

2.3 OLFM4表达与宫颈癌临床病理特征的关系

OLFM4的表达与宫颈癌临床分期、肿瘤大小、肌层浸润深度及淋巴结转移无关(P>0.05),但在组织高中分化组表达水平显著高于低分化组(P<0.01)。

表1 OLFM4在不同宫颈组织中的表达

注:1,2,3组比较,P<0.01;1,2组比较,1,3组比较,P<0.01,2,3组比较,P=0.019;4,5组比较,P<0.01,4,6组比较,P=0.01,5,6组比较,P=0.095。

表2 OLFM4的表达与宫颈癌临床病理之间的关系

注:1,2,3组比较,P=0.003,1,2组比较,P=0.541,1,3组比较,P=0.004,2,3组比较,P=0.005;1,2,3组r=-0.589,P<0.01。

3 讨 论

肿瘤的生长大多由于细胞凋亡与细胞增殖的失衡所导致。OLFM4基因最早克隆于人类的原始粒细胞,定位于人类染色体13q14.3[1],其产物OLFM4蛋白属于olfactomedin相关蛋白家族,N-末端为线圈结构域,C-末端为家族均有的250个氨基酸构成的olfactomedin结构域[1],具有490个氨基酸和六个均匀分布的N-连接糖基化序列[1],83、85、226、246和437位为半胱氨酸残基,其任一突变均可影响OLFM4的三级结构、聚合和分泌[2]。胞内定位主要在线粒体,小部分分布于细胞核[2]。

OLFM4在多种肿瘤组织中高表达,尤其是消化系统肿瘤[3-6],在肿瘤的形成及发展转移过程中发挥着重要的作用,可通过抑制cyt-c的释放及caspase 3和caspase 9的活化来减弱H2O2、TNFα诱导的细胞凋亡[7-8],亦可与IFN-β/RA 联合诱导的促凋亡因子GRIM-19发生蛋白间的相互作用[8,9],减弱其介导相关凋亡基因Gadd153、PIG12和c-Abl的表达[10],从而抗细胞凋亡。同时,OLFM4还可以作用于DNA合成的S期到有丝分裂的G2/M期来调控细胞周期,促进肿瘤细胞的增殖[5],这可能与它调节cyclin、CDK和其它效应分子(如Chk-1)有关[11],另外,OLFM4可能类似于抗凋亡蛋白家族survivin和cIAP-1/2,作用于PI3K/PKB的下游[12],从而促进肿瘤细胞生长。OLFM4还与胞外粘附分子凝集素、钙粘素相互作用,参与肿瘤细胞的粘附和转移[9]。

OLFM4亦与肿瘤的临床病理特征有关。Oue等[3]研究发现Ⅰ/Ⅱ期胃癌组织中表达率高于Ⅲ/Ⅳ期,分别为64%和45%(P=0.0172)。分化好或分化中等的胃癌中OLFM4无论是在mRNA还是血清蛋白水平都比分化差或未分化的胃癌高[3-4],zhang等[1]亦发现OLFM4基因转录水平与胃癌组织浸润深度、转移度、分化程度明显相关,可见,OLFM4已经成为胃癌发生、分化和进展的一个标记物[3,4]。

本研究通过免疫组化S-P法显示OLFM4在正常宫颈组织、CIN 和宫颈癌中的阳性表达率分别为20.0%、94.0%、96.8%,说明随宫颈病变程度的增加,OLFM4的表达水平逐渐升高,而且随着宫颈癌组织分化程度的降低,OLFM4的表达水平亦降低,提示OLFM4的表达与宫颈癌的发生及恶性程度有相关性。但OLFM4的表达与临床分期、肿瘤大小、肌层浸润深度及淋巴结转移不相关。结果还需要更多的研究来证实。

综上,本研究认为OLFM4是宫颈癌发生发展的危险因素之一,一定程度上可反映宫颈癌的恶性程度和预后,对评价患者的病情轻重及预后有一定的意义,是一项有潜在价值的肿瘤相关标记物。

[1] Zhang J,Liu W L,Tang DC,et al.Identification and characterization of a novel member of olfactomedin-related protein family, hGC-1,expressed during myeloid lineage development[J].Gene,2002,283(1-2):83-93.

[2] Liu W,Chen L,Zhu J,et al.The glycoprotein hGC-1 binds to cadherin and lectins[J].Experimental Cell Research,2006,312(10):1785-1797.

[3] Oue N,Sentani K,Noguchi T,et al.Serum olfactomedin 4 (GW112, hGC-1) in combination with Reg IV is a highly sensitive biomarker for gastric cancer patients[J].International Journal of Cancer,2009,125(10):2383-2392.

[4] Liu W,Zhu J,Cao L,et al.Expression of hGC-1 is correlated with differentiation of gastric carcinoma[J].Histopathology,2007,51(2):157 -165.

[5] Kobayashi D,Koshida S,Moriai R,et al.Olfactomedin 4 promotes s-phase transition in proliferation of pancreatic cancer cells[J].Cancer Science,2007,98(3):334-340.

[6] Koshida S,Kobayashi D,Moriai R,et al.Specific overexpression of OLFM4(GW112/hGC-1) mRNA in colon,breast and lung cancer tissues detected using quantitative analysis[J].Cancer Science,2007,98(3):315-320.

[7] Liu W,Yan M,Liu Y,et al.Olfactomedin 4 down-regulates innate immunity against Helicobacter pylori infection[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2010,107(24):11056-11061.

[8] Torres M,Forman HJ.Redox signaling and the map kinase pathways[J]. Biofactors,2003,17(1-4):287-296.

[9] Meplan C,Richard MJ,Hainaut P.Redox signalling and transition metals in the control of the p53 pathway[J].Biochemical Pharmacology,2000,59(1):25-33.

[10] Zhang X,Huang Q,Yang Z,et al.Gw112,a novel antiapoptotic protein that promotes tumor growth[J].Cancer Research,2004,64(7):2474 -2481.

[11] Xiao Z,Xue J,Sowin TJ,et al.A novel mechanism of checkpoint abrogation conferred by Chk1 downregulation[J].Oncogene,2005,24(8):1403-1411.

[12] Sommer KW,Schamberger CJ,Schmidt G E,et al.Inhibitor of apoptosis protein (IAP) survivin is upregulated by oncogenic c-H-Ras[J].Oncogene,2003,22(27):4266-4280.

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