骨髓增生异常综合征的免疫表型和SURVIVIN、P15INK4B、TRF1基因表达

2011-09-04 08:42姜胜华胡彩华徐瑞容丁润生尤学芬
山东医药 2011年33期
关键词:骨髓细胞端粒单核细胞

杨 力,姜胜华,胡彩华,徐瑞容,丁润生,尤学芬,秦 燕,刘 红

(南通大学附属医院,江苏 南通 226001)

骨髓增生异常综合征(MDS)是一组异质性造血干细胞克隆性疾病,其主要特征为无效造血所致的难治性血细胞减少、骨髓病态造血和具有发展成急性白血病的高危倾向。由于细胞增殖和分化异常,骨髓细胞表面标志常异常表达,免疫表型、基因表达多有异常。近年来,我们分析了50例MDS免疫表型,并检测其SURVIVIN、P15INK4B、TRF1基因mRNA表达情况。现报告如下。

1 资料与方法

1.1 临床资料 2006年12月~2011年2月我院住院及门诊患者50例,均根据WHO 1997标准诊断并分型,男28例、女22例,年龄21~83岁、中位年龄63岁。其中,难治性贫血(RA)23例,RA伴有环状铁幼粒细胞4例,RA伴多系发育异常11例,RA伴原始细胞增多12例。根据IPSS分期,50例患者中,低危25例,中危10例,高危15例。对照组30例,男17例、女13例,年龄26~76岁、中位年龄55岁;为正常体检者、再生障碍性贫血以及特发性血小板减少性紫癜患者。

1.2 方法

1.2.1 细胞表面标记检测 抽取MDS治疗前患者和对照组骨髓 1~2 ml,EDTA-K2抗凝。采用CD45/SSC双参数散点图设门识别幼稚细胞群、成熟粒细胞群和成熟单核细胞群。采用美国BD公司流式细胞仪测定不同细胞群的分化抗原表达情况。标准单克隆抗体包括藻红蛋白、异巯氰酸荧光素标记的 CD34、CD7、CD13、CD33 、CD11b、CD117 及同型对照等均购自美国BD公司。磷酸盐缓冲液(PBS,pH 7.2 ~7.4)稀释后调节细胞浓度至(2 ~5)×107/ml,室温下进行单克隆抗体标记。各试管内先加入不同单克隆抗体组合,再加入100 μl调整浓度后的单细胞悬液,充分混匀。然后加入2 ml红细胞裂解液,离心(1500 r/min)5 min,去上清,PBS洗涤1次,PBS固定上机检测。每次检测各种荧光素均设定相应抗体的同型阴性对照。

1.2.2 细胞RNA抽取及RT-PCR 收集骨髓单个核细胞提取RNA(Trizol法提取),在紫外分光光度计下测定RNA的OD值(OD值在1.6~2.0时可进行下一步实验),调节 RNA浓度为1 μg/μl备用。RT-PCR 步骤采用两步法,反应体系 RNA 5 μg、0.5 μg/μl Oligo(dT)1 μl、5 × reactiong buffer 4 μl、RNase inhibitor(20 U/μl)1 μl,dNTP mix(10 mmol/L)2 μl 和 RevertAidTMM-Mulv reverse transcriptase(200 U/μl)1 μl,总体积 20 μl。PCR 体系包括 cDNA 2 μl,上下游引物(10 pmol/μl)各 2 μl,dNTP mix(10 mmol/L)0.8 μl,10 × Taq buffer 5 μl,Taq酶(25 U/μl)0.5 μl和 MgCl2(25 mmol/L)。反应条件:β-actin mRNA(591 bp)上游引物 5'-AAGTACTCC GTGTGGATCG G-3',下 游 引 物 5'-ATCCTATC ACC TCCCCTGTG-3';94 ℃预变性 5 min,94℃变性30 s,58℃退火30 s,72℃延40 s,共计22次循环,最终72℃延伸5 min。SURVIVIN mRNA(309 bp)上游引物 5'-CTTTCTCAAGGACCACCGCATC-3',下游引物 5'-CAATCCATGGCAGCCAGCTGC-3';扩增条件为94℃变性2 min后,94℃ 45 s,61℃ 1 min,72 ℃ 1 min,循环 40次。P15INK4B mRNA(450 bp)上游引物 5'-TGGGGGCGGCAGCGATGAG-3',下游引物 5'-AGGTGGGTGGGGGTGGGAAAT-3';94℃ 预变性5 min,94℃变性30 s,56℃退火30 s,72℃延伸40 s,共计30次循环,最终72℃延伸5 min。TRF1 mRNA(499 bp)上游引物 5'-CCTCAGACAGCGAAGACTGA-3',下游引物 5'-GCCTGTAATCCGAGCTACTCA-3';首先94℃预变性5 min,然后94℃变性30 s,58 ℃退火30 s,72 ℃延伸60 s,共扩增35个循环,最后72℃再延伸7 min。PCR产物5 μl,与DNA marker在1.8%琼脂糖凝胶上电泳分离,电压100 V,电流60 mA。30 min后将凝胶置于四星图像分析仪中摄像,PCR条带的密度采用Scion image图像分析软件半定量分析。

1.3 统计学方法 用Stata 7.0软件,计量资料以表示,行单因素和两因素方差分析以及方差齐性检验。P≤0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 MDS患者骨髓细胞免疫表型 与对照组相比,MDS患者骨髓细胞原始群 CD45表达下降,CD34表达增多;粒细胞群CD34表达增多,CD13、CD33、CD11b表达下降,单核细胞表达 CD117和CD34。见表1。

2.2 SURVIVIN、P15INK4B、TRF1基因mRNA表达 与对照组相比,MDS患者骨髓单个核细胞SURVIVIN和 TRF1基因 mRNA表达增加,P15INK4B基因mRNA表达下降(P均<0.05)。从低危组到高危组,SURVIVIN基因和TRF1基因mRNA表达增加,P15INK4B基因表达下降(P均<0.05)。见图1 ~3。

表1 MDS患者和对照组骨髓细胞各抗原表达(%,)

表1 MDS患者和对照组骨髓细胞各抗原表达(%,)

注:与对照组相比,*P <0.05

组别 n 原始细胞群CD7 CD34粒细胞群CD13 CD33 CD11b CD34单核细胞群CD117 CD34对照组 30 0.9 ±0.5 1.0 ±1.2 24.2 ±2.1 15.3 ±2.6 80.2 ±3.4 1.2 ±0.7 4.3 ±1.5 4.1 ±2.1 MDS 50 3.2 ±1.6* 9.6 ±2.5* 17.0 ±2.9* 11.2 ±1.4* 56.2 ±2.4* 11.3 ±1.1* 1.2 ±2.1* 0.9 ±0.9*

3 讨论

图1 SURVIVIN mRNA表达

图2 TRF1 mRNA表达

图3 P15INK4B mRNA表达

大量研究表明,多参数流式细胞术有助于MDS诊断和预后评价[1]。我们研究发现MDS患者原始细胞群CD7和CD34高表达;粒细胞群CD34表达增多,CD13、CD33、CD11b表达下降;单核细胞表达CD117和 CD34。Ogata等[2]研究发现,CD7 在高危MDS中通常阳性,表达随MDS进展而增加,提示临床预后差,可以作为MDS不良预后相关的独立因素。原始细胞群高表达CD34,对MDS诊断有特征性[3],表达水平与疾病进展明显相关,表达增高者预后较差,易转化为白血病,生存期短。粒细胞群CD34表达增多,CD13、CD33、CD11b表达下降,提示细胞成熟障碍。Ogata等[4]发现MDS粒细胞群的趋化、游走、黏附及吞噬功能减弱,临床表现为病态造血严重,常常出现感染。CD117即干细胞生长因子受体,其表达随着向终末成熟血细胞分化而逐渐下降,单核细胞发育早期即失去表达CD117。MDS患者单核细胞CD117表达可增高,CD117表达率和疾病进展有关,与其他免疫表型异常相比,CD117表达增高对于诊断MDS的特异性较高。同样单核细胞发育早期也失去表达CD34,CD34表达也是MDS诊断的特异指标[5]。

SURVIVIN是近来发现的凋亡抑制蛋白(IAP)家族成员,它不仅具有抑制细胞凋亡的功能,而且参与了细胞增殖分化的调控,与一些肿瘤的预后相关,并且和MDS发病进展密切相关。其中SURVIVIN通过与CDK4相互作用形成SURVIVIN/CDK4复合体,使CDK2/cyclinE激活、Rb磷酸化,导致p21从其与CDK4的复合体中释放出来,并与线粒体的procaspase-3作用以抑制Fas介导的凋亡。蔡真等[6]发现,MDS患者SURVIVIN mRNA总阳性率高于正常对照组,高危组阳性率高于低危组,即随着MDS的进展,SURVIVIN mRNA的表达率随之增高。我们研究也同样证实,与对照组相比SURVIVIN基因在MDS患者中高表达,且与预后有关。

P15INK4B基因产物被认为是细胞周期蛋白DCDK4/6复合物的抑制物,细胞周期蛋白D-CDK4/6复合物可磷酸化视网膜母细胞瘤蛋白(RB蛋白)而导致转录因子的释放,启动细胞通过G1期限制点由G0期或G1期进入S期。P15INK4B表达增强,在MDS负向调节造血细胞增生和阻止其恶性转换、促进分化中起重要作用[7]。本研究也证实P15INK4B基因在MDS患者中低表达,且和MDS预后分级相关。TRF1是第1个被发现的哺乳动物的端粒相关蛋白,它与端粒双链DNA结合,改变端粒的结构,阻止端粒酶与端粒的结合,从而阻止端粒的延长。MDS患者端粒长度缩短与IPSS危险度分层有显著相关性,端粒长度缩短组的MDS患者有更低的血红蛋白浓度,更差的细胞遗传学改变和预后。TRF1作为端粒长度的负性调节因子,是揭示MDS预后不良的因素之一[8]。我们研究结果也同样证实了这一点。

MDS早期常很难诊断,不易和再生障碍性贫血、免疫相关性全血细胞减少等疾病鉴别。和国内外其他研究一样,我们研究发现MDS细胞免疫分型有其特征性,且有基因的异常表达,此可能成为MDS辅助诊断的指标之一。

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