黄红梅,屈金亭,刘 涛
内源性一氧化氮(NO)是由左旋精氨酸(L-A rg)在一氧化氮合成酶(NOS)的作用下产生的,是一种化学性质活跃的气体自由基,亦是一种重要的生物信号分子。在心血管系统中,NO具有扩张血管,抑制血小板黏附和聚集,抑制血管平滑肌细胞和淋巴细胞增殖,以及影响心脏舒缩周期和收缩力等功效[4]。大量研究表明,心血管系统NOSNO系统功能与机体运动形式、强度及持续时间密切相关[19]。NOS是调节NO合成的关键酶,已确认有3种同工酶:神经元型(nNOS)、内皮型(eNOS)和诱导型(iNOS),它们分布的部位、生物效应及调控机制各不相同。研究表明,心血管系统NO主要是由血管内皮细胞中内皮型一氧化氮合成酶(eNOS)催化合成[17]。最近,Kleinbongard等发现,eNOS亦存在于红细胞浆膜,表明红细胞也是心血管系统内NO的主要来源之一[7]。本研究拟观察不同负荷运动对男子赛艇运动员红细胞eNOS蛋白表达量/活性和磷酸化水平,以及血浆中 NO含量的变化,以探讨红细胞eNOS-NO系统对于运动刺激的应答及可能机制。
1.1 研究对象
专业赛艇运动员10名(一级和健将级),年龄21.6± 1.9岁,身高1.89±0.05 m,体重80.5±7.9 kg,训练年限5.8±1.9年。所有参加实验的运动员均身体健康,无器质性疾病,实验前48 h内受试者均未进行过剧烈运动。
1.2 测试方案
受试者于清晨(6:30~7:30)静卧15 min,空腹,肘静脉采血5mL。然后进行划船测功仪(CONCEPTⅡ,美国)递增负荷测试来测定受试者的 ˙VO2max,测试前以16桨/ min负荷做5min准备活动,准备活动后休息5min并佩戴好呼吸面罩,起始负荷为20桨/min,每3 min增加2桨,直至力竭。用运动心肺测试系统(Cortex MetaLyzerⅡ,德国)测定耗氧量(˙VO2)、CO2呼出量(VCO2)、呼吸交换律(RER =VCO 2/˙VO2)、每分通气量(VE)等,用遥测心率表(Polar A 3,芬兰)记录心率。受试者休息1周后,进行1次60% ˙VO2max强度的运动(划船测功仪),时间为20min,运动结束后即刻肘静脉采血5 mL;休息2天后,进行1次75% ˙VO2max强度的运动,再休息2天,进行1次90%˙VO2max强度的运动,其运动方式、运动时间以及取血量与第1次相同。
1.3 红细胞的制备
所有血液样品均加入38 g/L枸橼酸钠(体积比1∶9)抗凝,1 400 g离心10 min,去上清。加入4倍体积 Hank’s平衡盐溶液(M HBSS)中反复离心3遍,清洗后取红细胞悬浮于等体积 Hank’s平衡盐溶液中待测。
1.4 红细胞eNOS活性及血浆NO-2/NO-3含量测定
依照试剂盒(南京建成生物公司)说明,紫外分光光度计测量红细胞 eNOS活性,自动生化分析仪测定血浆NO-2/NO-3含量。
1.5 红细胞eNOS蛋白总量及eNOS磷酸化水平测定
制备红细胞组织匀浆,考马斯亮蓝法测定蛋白含量。蛋白样品经15%SDS-PAGE分离转移于PVDF膜。一抗(Santacruz公司)孵育过夜,HRP标记二抗(TBD公司)孵育1 h,ECL显影。采用凝胶系统分析软件(上海天能科技公司),扫描各条带灰度值,以安静状态为100%,其他3组与安静时比值,即其相对表达量(%)。Actin作为内参蛋白。
1.6 统计方法
所有数据均用SPSS 15.0统计软件包进行处理,结果用平均数±标准差表示,各组比较采用单因素方差分析,P <0.05为显著性水平,P<0.01为非常显著水平。
2.1 不同运动强度对血浆NO-2/NO-3含量的影响
图1显示,与安静状态比较,运动强度为60%和75% ˙VO2max时,血浆 NO-2/NO-3含量显著升高(均为 P< 0.05),运动强度为90%˙VO2max时,血浆NO-2/NO-3含量显著降低(P<0.05)。
2.2 不同负荷运动对红细胞eNOS活性的影响
图2显示,与安静状态比较,运动强度为60%和75% ˙VO2max时,红细胞eNOS活性显著升高(分别为 P<0.05和 P<0.01)。运动强度为90%˙VO2max时,红细胞eNOS活性显著降低(P<0.01)。
图1 不同运动强度对血浆NO2-/NO3-含量的影响示意图
图2 不同运动强度对红细胞eNOS活性的影响示意图
2.3 不同运动强度对红细胞eNOS蛋白总量及eNOS磷酸化水平
图3显示,与安静状态比较,运动强度为60%和75% ˙VO2max时,红细胞eNOS蛋白总量和 Thr495磷酸化eNOS蛋白量无明显变化,Ser1177磷酸化eNOS蛋白量显著升高(分别为 P<0.05和 P<0.01)。运动强度为90% ˙VO2max时,红细胞eNOS蛋白总量和Ser1177磷酸化eNOS蛋白量显著降低(均为 P<0.05),Thr495磷酸化eNOS蛋白量无明显变化。
图3 不同运动强度对红细胞eNOS蛋白总量及eNOS磷酸化水平的影响示意图
NO作为重要的信号分子,与运动关系十分密切。研究表明,运动过程中,血液中一定水平的NO可通过环鸟苷酸通路提高心肌和骨骼肌收缩力;可增加运动中组织氧摄入量和氧消耗量;可通过舒张血管调节运动中机体各器官血液重新分布;也可通过刺激 GLU-4转位促进组织葡萄糖转运等[10]。此外,NO还可通过调控红细胞变形性影响运动中红细胞的功能[8]。Sun等报道,大鼠运动前服用一定剂量L-A rg,可改善机体的运动能力,明显延长递增负荷运动的力竭时间,推迟疲劳发生[14]。而注射了NOS抑制剂N-硝基左旋精氨酸(L-NAM E)的人骨骼肌最大收缩速度及输出功率明显降低[6]。这表明,运动中维持一定水平的NO可正性调控机体运动能力。目前的研究主要关注于运动刺激血管内皮细胞以及骨骼肌产生NO的影响,最近发现,红细胞亦是心血管系统中NO的主要来源,这与定位于红细胞浆膜的eNOS密切相关[7]。研究表明,不同运动强度对红细胞膜流动性及脂质组成的作用效应不同[16]。因而,不同运动强度对红细胞eNOS功能及NO产生也会产生差异性作用,从而影响心血管系统中NO的稳态及生物效应。
本研究中,在运动强度为60%和75%˙VO2max时,红细胞eNOS活性显著升高,且随着运动强度的增加而增加,而eNOS总蛋白表达量无明显变化。当运动强度增加为90%˙VO2max时,红细胞eNOS蛋白表达量及活性均明显降低,甚至低于运动前安静状态时的水平。血浆NO含量的变化趋势与红细胞eNOS基本一致,提示运动过程中,红细胞产生的NO是血浆NO总量的重要组成部分。Rassaf等发现,前臂分别进行20%、30%和40%的最大握力强度运动,前臂静脉血浆中NO和血流量与运动强度呈正向的线性关系;而当强度增加至50%和60%时,上述指标与运动强度呈负相关线性关系[12]。Copp等报道,短期急性跑台训练可使大鼠后肢血管内皮细胞eNOS活性及血浆NO含量急剧增加,而力竭运动使上述指标显著降低,运动后恢复24 h仍然低于安静对照组[2]。我们认为,低强度和中等强度负荷运动可刺激红细胞等组织中eNOS表达量及活性升高,舒张血管,增加血流量,以代偿运动造成的组织血液供应相对不足;而当运动强度进一步增加时,eNOS-NO生物效应反而受到抑制,这可能与运动疲劳的形成相关。
运动可使血流加速,产生搏动性血流并增加血管内血流切应力,且血流切应力随着运动强度的增加而增加。研究证实,血流切应力是运动促血管内皮细胞释放NO的主要生理刺激。Fischer等在体外循环中发现,高血流切应力亦可显著激活红细胞中eNOS[3]。最近,Suhr等的研究表明,短暂的高血流切应力可增加红细胞eNOS的活性,而高频反复的高血流切应力反而会抑制 eNOS的活化[13]。Temiz等发现,在低水平血流切应力下,红细胞膜呈弹性固态,而在高水平切应力下,红细胞膜呈液态[15]。因而,不同运动强度可能通过影响改变血流切应力影响红细胞膜状态,从而动态调控位于红细胞浆膜eNOS的稳定性及活性。此外,Petibois等发现,大强度运动可加速红细胞膜蛋白质的脱失与降解[11],这可能与90%˙VO2max强度运动造成的eNOS表达量快速减少有关。
除了蛋白表达量的变化,特定氨基酸的磷酸化也决定了eNOS的活性。eNOS主要有 3个磷酸化位点:Ser116、Thr495和 Ser1177,其中,Ser1177磷酸化使eNOS活性增强,而Ser116和 Thr495磷酸化则使eNOS活性减弱。本研究中,我们发现,60%和 75%˙VO2max的运动强度可使 eNOS (Ser1177)磷酸化水平增加,且随着运动强度增加而增加。而在运动强度为90%˙VO2max时,eNOS(Ser1177)磷酸化水平降低,eNOS(Thr495)磷酸化水平在各种运动强度中均维持于运动前安静状态水平。研究表明,血管中的血流切应力可以激活红细胞中磷脂酰肌醇-3激酶(PI3K)-丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶(Akt)信号通路,从而上调红细胞eNOS Ser1177磷酸化水平和NO产量[5]。因而我们推测,低强度和中等强度运动可能通过PI3 K-Akt通路上调eNOS Ser1177磷酸化水平,从而增加其活性和NO产量。而大强度运动导致的eNOS Ser1177磷酸化水平降低可能与红细胞eNOS蛋白总量减少有关,或有其他的抑制机制发生,其具体调控机制有待进一步研究。
1.当运动强度适量时,红细胞eNOS蛋白表达、活化磷酸化水平以及NO产生随着运动强度增加而增加,可能是机体对运动应激的一种适应机制。
2.当运动强度过大时,红细胞eNOS蛋白表达、活化磷酸化水平以及NO产生受到抑制,可能与运动疲劳的发生相关。
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