宋一晓,孙坤,刘学美,李子雁,隋智海*
(1.临沂大学生命科学学院,山东 临沂 276000;2.山东临沂市河东区农村农业局,山东 临沂 276034)
草鱼(Ctenopharyngodon idellus),为典型的草食性淡水鱼类,隶属于鲤形目(Cypriniformes),雅罗鱼亚科(Leuciscinae),草鱼属(Ctenopharyngodon)[1],与青鱼、鳙、鲢并称为“四大家鱼”,为中国养殖产量较高的淡水经济鱼类之一,2021 年养殖产量为557 万t[2-3]。因其肉质鲜美、营养丰富、价格低廉等,广受消费者喜爱。但随着养殖规模的扩大和养殖密度的增加,草鱼病害如草鱼呼肠孤病毒(Grass carp reovirus, GCRV)、柱状黄杆菌(Flavobacterium columnare)、维氏气单胞菌(Aeromonas veronii)等频发,造成了较大的经济损失,严重制约了草鱼养殖产业健康发展[4-6]。
2022 年5 月,山东省临沂市蒙阴县某草鱼养殖场暴发病害,病鱼出现游动缓慢、觅食困难、口腔和体表出血、皮肤溃烂、脾脏肿大呈暗红色和肝脏肿大充血等症状。为查明病因,从患病草鱼脾肝肾混合组织中,分离纯化出一株细菌,基于形态观察、生理生化试验、16S rRNA 序列和系统发育分析等,进行了种类鉴定,并测定了其药物敏感性。拟为草鱼病害的有效防控提供参考。
2022 年5 月。试验地位于临沂大学膜蛋白与药物工程实验室。
1.2.1 试验鱼从临沂蒙阴县某草鱼养殖场收集濒临死亡的草鱼,体长约25 cm,体质量约1.5 kg。
1.2.2 试剂和仪器
LB 培养基(酵母提取物5 g/L,氯化钠10 g/L,蛋白胨10 g/L)、琼脂粉、琼脂糖、2×Taq PCR Master Mix[生工生物工程(上海)股份有限公司]、细菌基因组DNA 提取试剂盒(DP302)(天根生化科技(北京)有限公司);革兰染色液试剂盒(HB8278)、生理生化鉴定管(青岛海博生物有限公司);药敏纸片(杭州微生物试剂有限公司);生物安全柜BSC-1304IIA(苏州安泰空气技术有限公司)、低速研磨器(天根生物有限公司)、台式离心机Pico-21(Thermo Fisher)、电泳仪(北京市六一仪器厂)、凝胶成像系统FR-1000(上海复日科技有限公司)、PCR 仪ETC 811(北京东胜创新生物科技有限公司)、恒温摇床QYC-200(上海福玛实验设备有限公司)、培养箱DMJM-358(宁波江南仪器厂)。
1.3.1 病原菌分离与纯化
用75%乙醇喷洒患病草鱼体表并擦拭。用灭菌手术剪剖开鱼腹部,采集病鱼肝脏、脾、肾等组织,加入无菌PBS,采用低速组织研磨器,碾碎混匀。用接菌环,蘸取组织悬液,于LB 琼脂培养基上划线,置于28 ℃培养,选择具有生长及生物学优势的菌株,在LB 琼脂培养基上纯化2 次。将处在生长对数期的菌株溶液,与同体积50%甘油混匀,于-80 ℃冰箱中保存,备用。
1.3.2 病原菌形态学观察
将细菌LB 液体培养至对数期,用接种环于LB固体平板上划线,28 ℃过夜培养,观测单菌落形态、大小和颜色等特征。取10 μL 对数期菌悬液,涂布在载玻片上,按照革兰染色液试剂盒说明书,经结晶紫初染、碘液媒染、95%乙醇脱色、沙黄复染和自然干燥后,用光学显微镜观察其结构特征。
1.3.3 病原菌生理生化试验
将细菌LB 液体培养至对数期,向生理生化鉴定管加50 μL 菌悬液,用无菌封口膜封住管口,置于37 或42 ℃培养,完成MR-VP、赖氨酸脱羧酶肉汤、ONPG、尿酸酶、明胶、鸟氨酸脱羧酶肉汤、氨基酸脱羧酶对照、42 ℃生长试验、不同浓度的胰胨水、糖类、醇类、精氨酸双水解酶肉汤、氧化酶试纸等生理生化鉴定。试验重复3 次。
1.3.4 16S rRNA 的PCR 扩增与系统发育分析
取4 μL 菌液接种至新鲜的4 mL LB 液体中,过夜培养,将菌液12 000 g 离心5 min,收集1.5 mL菌体,用细菌基因组DNA 提取试剂盒,提取其基因组,作为PCR 扩增的模板。采用16S rRNA 基因通用引物27F:5’-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3’和1492R:5’-ACGGCTACCTTGTTACGACTT-3’扩增目的片段,预期大小为1 500 bp。PCR 反应体系(50 μL):2×Taq PCR Master Mix 25 μL、基因组DNA1 μL、27F 2.5 μL、1492R 2.5 μL、无菌水19 μL。
PCR 反应程序:(1)95 ℃预变性10 min;(2)94 ℃变性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸90 s,共30 次循环;(3)72 ℃保温10 min。PCR 反应产物经1%琼脂糖凝胶电泳检测后,送至生工生物工程(上海)股份有限公司测序。采用在线BLASTN 程序(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/blast),进行序列同源性比对,下载同源性的16S rRNA 基因序列,采用MEGA-X软件邻接法(Neighborjoining method, NJ),构建系统发育树。
1.3.5 药敏试验
采用纸片扩散法进行药敏特性测定。选用分别含一定浓度的羧苄西林、氨苄西林、米诺环素、头孢唑啉、新霉素、红霉素、头孢拉定、丁胺卡那、四环素、环丙沙星、头孢哌酮、复方新诺明、头孢曲松、克林霉素、诺氟沙星、呋喃唑酮、多黏菌素B、哌拉西林、麦迪霉素、氯霉素等20 种抗生素药敏纸片。在无菌条件下,将60 μL 培养至对数期的新鲜菌液,均匀涂布在LB 琼脂平板上,待琼脂培养基表面基本干燥后,将药敏纸片分别贴于琼脂培养基上,倒置培养24 h,观察抑菌圈并测量直径大小,按照试剂盒说明书,判定其对药物的敏感性。试验重复3 次。
从病鱼肝脾肾混合组织中分离得到一株优势菌株,该菌株在LB 平板上形成表面光滑、边缘整齐、不透明的圆形菌落[图1(a)]。经革兰染色后,呈现红色、短杆状,表明该菌株为革兰阴性菌[图1(b)]。
图1 病原菌形态特征
以该菌株基因组DNA 为模板,PCR 扩增16S rRNA 基因序列,扩增条带单一,无非特异性扩增,位于1 000~2 000 bp 之间,符合预期大小,见图2。经BLASTN 序列比对后,发现其与鲁氏耶尔森菌MYR-184(Yersinia ruckeriMYR-184)(GenBank No.MK290740.1)相似度高达100%。基于16S rRNA 基因序列构建系统发育树,结果显示,该菌株与鲁氏耶尔森菌亲缘关系最近,聚在同一分支,表明该菌株可能为鲁氏耶尔森菌,见图3。
图2 菌株16S rRNA 的PCR 扩增
图3 基于16S rRNA 基因序列构建系统发育树
通过生理生化鉴定管试验,测定菌株生理生化特征。结果表明,该菌株在1%~3%氯化钠(NaCl)、42 ℃条件下均可生长,在鸟氨酸脱羧酶、赖氨酸脱羧酶、MR-VP、β-半乳糖苷酶、甘露糖、甘露醇试验中,结果为阳性;在尿素酶、精氨酸双水解酶、6%~10%NaCl、乳糖、纤维二糖、阿拉伯糖、蔗糖、氧化酶、明胶的试验中,结果为阴性,见表1。该试验结果与鲁氏耶尔森菌标准菌株的生理生化特征相似。
表1 菌株生理生化特征①
通过纸片扩散法,检测分离菌株对药物的敏感性。结果表明,该菌株对环丙沙星、头孢曲松、诺氟沙星等11 种药物呈高度敏感;对四环素、米诺环素、呋喃唑酮药物呈中度敏感;对万古霉素、麦迪霉素、头孢唑啉等6 种药物呈耐药性,见表2。
表2 菌株药物敏感性测定①
病原细菌感染的草鱼,经常引起肠炎、烂鳃、肝胆综合征、出血症等,导致其大量死亡[7]。其中,鲁氏耶尔森菌(Yersinia ruckeri)是一种短杆状的革兰阴性病原菌,隶属于肠杆菌科、耶尔森菌属,易感染鲑、鳟类和温水性鱼类,可引起典型的红口病,并伴有不同程度的内脏发炎充血症状[8-10]。鲁氏耶尔森菌具有较强的环境适应力和广泛的宿主范围,目前已从不同国家养殖的鱼类如虹鳟、鲢、鳙、斑点叉尾等分离和鉴定出[11-15]。此外,耶尔森氏菌还可与其他病原菌如嗜水气单胞菌(Aeromonas hydrophila)、柱状黄杆菌(F.columnare)和杀鲑气单胞菌(A.salmonicida)等混合感染鱼类,引发病害[16-17]。本试验从患病草鱼内脏组织内分离纯化出一株菌株,经过形态学、生理生化、16S rRNA 序列分析等确定其为鲁氏耶尔森菌,通过表型鉴定和分子遗传学鉴定相结合,使鉴定结果更加准确可靠。
药敏试验结果表明,该菌株已具备多重耐药性,但也存在对一定数量的抗生素敏感。这与其他的研究结果既有相似之处,也有不同之处。例如:与Y. ruckeriXB2 对麦迪霉素耐受结果一致[18],与Y.ruckeriFF003 对新霉素中度耐受结果不一致[16]。
根据水产养殖用药明白纸2022 年2 号规定,今后可考虑适当使用硫酸新霉素粉(水产用)、维生素C 磷酸醋镁盐酸环丙沙星预混剂、盐酸环丙沙星盐酸小檗碱预混剂来防治鲁氏耶尔森菌,避免滥用药物导致耐药菌加速进化。