乳酸菌发酵对鸡骨泥钙释放及代谢物的影响

王 明，夏 强，孙杨赢，何 俊，潘道东，曹锦轩，周昌瑜

（宁波大学食品与药学学院，浙江省动物蛋白精深加工重点实验室，浙江宁波 315211）

中国是畜禽产品生产大国，2022 年全国猪牛羊禽屠宰产量达9227 万吨，且呈逐年增长趋势[1]。骨架是屠宰畜禽后的主要副产物之一，含有人体所需的氨基酸、维生素以及矿物质等。骨架中钙磷比约为2:1[2]，与人体最佳吸收比例相当，可作为天然钙源。猪牛羊骨架有80%以上用于生产煲汤类食品原料[3]，而禽类骨架则被视为废弃物大量丢弃[4]。这不仅造成资源的浪费，而且对环境造成严重污染。因此，开发高值化利用禽骨的有效技术十分必要。

尽管生物兼容性与人体骨骼中钙形态非常类似，但动物骨中的钙以羟基磷灰石（Hydroxyapatite，HAP）形式存在，无法被人体直接利用[5]。目前，通常采用酸解法和酶解法等方法溶出骨骼中的可溶性钙，实现动物骨架回收。酸解法是利用强酸破坏骨胶原中的三螺旋结构，使HAP 裸露出来。然后，酸进一步与羟基磷灰石作用，将骨钙转化为可溶性钙[6]。但酸解法通过破坏骨胶原高级结构进一步释放磷酸钙在中性或碱性条件下溶解度不高，而人体对钙的吸收主要发生酸碱环境呈中性的小肠中，不利于人体的吸收。酶解法则是利用蛋白酶对骨胶原纤维的分解作用释放骨钙。然而，酶解法仅能作用于动物骨中的胶原纤维，骨钙的转化效果十分有限，仅为1/6[7]，仍有大量骨胶原蛋白和以骨矿形式的钙磷存在于骨渣中，且酶解易使酶解液产生苦味肽，使酶解液呈苦味，不利于后期的开发利用[8]。

生物发酵法可通过微生物发酵作用促使骨泥中钙的释放[9]。乳酸菌（lactic acid bacteria，LAB）是一类能够利用碳水化合物发酵产生乳酸的细菌微生物，已有研究表明乳酸菌发酵得到的钙离子含量显著高于蛋白酶酶解得到的，并且发酵后的胶原蛋白可以被降解成小分子肽，更加有利于人体的吸收。闫凛等[8]利用植物乳杆菌发酵羊骨液发现钙离子的释放与植物乳杆菌的活菌数呈极显著正相关。唐勇等[10]利用乳酸菌发酵猪骨显著提升了骨架HAP 中游离钙释放。鸡骨中蛋白质与脂肪的含量高于猪牛羊骨而灰分更低，具有更高的营养价值[11]。然而当前研究中，乳酸菌发酵鸡骨泥释放钙的代谢机理尚未被研究。

因此，本研究构建了乳酸菌与鸡骨泥的发酵体系，定量分析发酵产物中钙释放量及其形态分布、代谢产物组成及其含量变化，并通过多元统计和KEGG分析乳酸菌代谢通路，旨在揭示骨泥发酵过程中乳酸菌的代谢与钙释放的关联途径。

1 材料和方法

1.1 材料与仪器

新鲜鸡骨架（骨上附少量鸡肉）冷冻运输至实验室，河南大用实业有限公司；木瓜蛋白酶（2000 U/mg）、六偏磷酸钠、溴化钾、盐酸、氢氧化钠、蔗糖均为分析级，生工生物工程有限公司；甲酸、乙腈均为色谱级，美国Fisher Chemical 公司；MRS 培养基 青岛海博生物技术有限公司；RIPA 细胞裂解液（强）碧云天生物技术有限公司；其他试剂均为分析纯；实验用水均为超纯水；植物乳杆菌（Lactiplantibacillus plantarumA3，LP）、罗伊氏乳杆菌（Limosilactobacillus reuteriWQ-Y1，LR）、嗜酸乳杆菌（Lactobacillus acidophilusCICC6074，LA）均由浙江省动物蛋白食品加工技术重点实验室菌种库保存。

QM-3SP2 双行星球磨机 南京南大仪器有限公司；Five Easy Plus 20 酸碱pH 计 梅特勒-托利多仪器（上海）有限公司；SCIENTZ-IID 超声波细胞破碎仪 宁波新芝生物科技股份有限公司；Allegra 64R 高速冷冻台式离心机 美国贝克曼库尔特有限公司；喷雾干燥机 上海派勒克仪器设备有限公司；ACQUITY UHPLC 系统 美国沃特世公司；三重TOF 5600 MS Xevo G2-XSQ-TOF 美国沃特世公司；ACQUITY UPLC BEH C18色谱柱（100 mm×2.1 mm，1.7 μm）美国沃特世公司。

1.2 实验方法

1.2.1 鸡骨粉的制备 参考Zuo 等[12]的方法并稍做修改：去除鸡骨架上的肉、血、脂肪和骨膜后，121 ℃灭菌15 min，冷却后重新洗净骨头以去除脂肪和肉。然后将磷酸盐缓冲液（0.1 mol/L，pH=7）以质量比3:1 的比例加入骨块中制备骨液。在骨液中加入木瓜蛋白酶（5000 U/g），50 ℃恒温水浴中酶解4 h，煮沸10 min 使酶失活，再次清洗以去除鸡骨表面的蛋白油脂等。将骨块放入60 ℃烘箱中干燥12 h后，使用粉碎机粉碎再过200 目筛，用双行星球磨机研磨2.5 h，其中镐珠、骨粉与水的质量比为10:1:3。研磨后的骨颗粒在喷雾干燥机中干燥，得到鸡骨粉。

1.2.2 发酵鸡骨泥及冻干样品的制备 鸡骨泥培养基的制备：将鸡骨粉、蔗糖与水按质量比5:7:88 混合，pH 调至6.5，121 ℃灭菌20 min 后，冷却至室温制备成骨泥培养基。

鸡骨泥发酵液的制备：取活化后的LP、LR、LA 菌液3 mL 分别接种到100 mL 鸡骨泥培养基中，空白组加3 mL 灭菌后的MRS 培养基记为CK，38 ℃下发酵。

发酵骨泥冻干样品制备：取发酵完成的骨泥发酵液离心（300×g、4 ℃、5 min）后收集沉淀物，用去离子水反复洗涤三次，冻干后制成发酵骨泥样品，-40 ℃保存备用。

1.2.3 生长曲线的测定 分别取发酵0、12、24、30、36、42、46、50 和54 h 的鸡骨泥发酵液，用无菌生理盐水梯度稀释，选取适宜的梯度，在MRS 固体培养基上进行涂布，38 ℃恒温恒湿培养24 h，记录活菌菌落数，单位为CFU/mL，并绘制生长曲线。

1.2.4 乳酸菌发酵骨泥液pH 和总酸度的测定 取5 mL 发酵过程中的鸡骨泥液，使用酸碱pH 计测定pH；参考Xu 等[13]的方法对发酵液的总酸度进行测定。

1.2.5 钙的分布和含量的测定 取发酵完成的鸡骨泥发酵液，离心（300×g、4 ℃、5 min）后保留上清液，得到发酵液A，-4 ℃冷藏备用。取发酵液A 经离心（4000×g、4 ℃、20 min）后，将上清液通过0.22 μm的水相滤膜以去除菌体及其他难溶性物质得到去菌体发酵液B。取10 mL 发酵液A 于试管中，加入细胞裂解液500 μL，混匀后在冰浴中超声波（350 W、20 min、5 pulse）破碎，使细胞内容物释放到发酵液中，离心（10000×g、4 ℃、20 min）后经过0.22 μm 水相滤膜过滤得到发酵液C，使用火焰原子吸收光谱法[14]分别测定发酵液A 中的总钙含量ω，mg/kg；发酵液B 为乳酸菌胞外钙含量ω1，mg/kg；发酵液C 游离态钙含量ω2，mg/kg；计算化合态钙含量ω3=ωω2[15]。

1.2.6 发酵骨泥的能量色散光谱（Energy Dispersive Spectroscopy，EDS）表征 利用能量色散光谱仪对发酵骨泥冻干样品进行点扫。取每个样品的不同位置测量钙和磷含量，计算平均钙磷比率和标准偏差。

1.2.7 发酵骨泥的傅里叶变换红外光谱（Fourier Transform infrared spectroscopy，FT-IR）表征 取发酵骨泥冻干样品与KBr 按1:50 的比例混合研磨，压成薄膜，并在波长为4000～400 cm-1范围之间进行傅里叶红外光谱扫描。

1.2.8 发酵骨泥的X-射线衍射（X-ray diffractometer，XRD）表征 采用X 射线衍射仪测定发酵骨泥冻干样品的相对结晶度。测试条件为电压40 kV，管流20 mA，扫描区域20°～36°，扫描速度为2°/min。

1.2.9 发酵骨泥产物质谱分析 样品的前处理[16]：取10 mL 骨泥发酵液，离心（4000×g、4 ℃、5 min）后收集上清液并通过0.22 μm 滤膜。取5 mL 上述滤液于EP 管中，加入20 μL 内标（1000 ng/mL 水杨酸溶液）混匀后，转移至LC 进样小瓶，进行LC-MS/MS 分析。

液相色谱和质谱条件：色谱柱为ACQUITY UPLC BEH C18色谱柱；柱温为45 ℃；流速为0.4 mL/min；流动相为0.1%甲酸（A）和含0.1%甲酸的乙腈（B）的混合物。色谱梯度程序：0～2 min（A:B=98:2）、2～4 min（A:B=75:25）、4～7.5 min（A:B=40:60）、7.5～9.5 min（A:B=10:90）、9.5～12.7 min（A:B=1:99）、12.7～16 min（A:B=98:2）；扫描范围为50～1000 m/z。

1.3 数据处理

使用IBM SPSS 软件包（Version 25.0）对实验数据进行统计分析，P＜0.05 差异显著，P＜0.01 差异极显著。质谱原始数据使用Progenesis QI（Version 2.3）处理并对比代谢组学数据库（HMDB，https://www.hmdb.ca/）和Chemspider 数据库（https://www.chemspider.com/）进行匹配获得代谢物信息。通过聚类分析和PCA 分析确定差异代谢物。查找通路数据库（https://www.metaboanalyst.ca/）、KEGG（Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes，https://www.kegg.jp/）数据库确定差异代谢富集的代谢通路。

2 结果与分析

2.1 骨泥中菌落生长曲线、pH 及总酸变化

生长曲线反映了细菌数量、生长状况和代谢情况。如图1A 所示，LP、LR 和LA 的活菌数在0～12 h 呈对数型增长，12 h 后趋于平稳，生长速度放缓，进入稳定期；LA 组和LR 组的活菌数在12～30 h保持相对稳定，发酵30 h 后逐渐下降，而LP 组的活菌数在12～50 h 保持相对稳定，发酵50 h 后逐渐下降。在三个接菌处理组中，LA 处理组在发酵24、30、36 h 时活菌数量极显著高于LP 和LR 处理组（P＜0.01），在发酵30 h 时，LP、LR 和LA 活菌数均达到最大值，分别为22.7、28.5 和33.2×107CFU/mL；而在整个发酵过程中LP处理组的活菌数极显著低于LA 和LR 处理组（P＜0.01）。发酵过程的pH 和总酸能反映乳酸菌的产酸能力以及菌体耐受能力变化。如图1B 所示，鸡骨泥发酵液初始pH 约为6.1，在0～30 h 的发酵期间，3 个接菌处理组在发酵过程中pH 均下降，30 h 后逐渐稳定；在发酵第30 h 时LA 组、LP 组、LR 组的pH 分别为4.43、4.68 和4.67，LA 组pH 最低说明LA 产酸能力最强。如图1C 所示，3 个接菌处理组的发酵液初始总酸含量为0.81 g/L，在0～30 h 内，随着发酵的进行，总酸含量迅速增加，30 h 后逐渐稳定；发酵30 h 时，LA、LP 和LR 处理组的总酸含量分别为5.60、3.76 和3.75 g/L，其中LA 组的总酸含量显著高于LP 组和LR 组（P＜0.05）。以上结果说明三株乳酸菌均能较好的利用骨泥进行生长繁殖并产生酸类物质，且嗜酸乳杆菌在骨泥中的生长繁殖能力和产酸能力优于罗伊氏乳杆菌和植物乳杆菌。

图1 乳酸菌的生长曲线（A）以及发酵过程中pH（B）和总酸（C）的变化Fig.1 Growth curve of lactic acid bacteria (A),and the changes in pH (B) and total acid (C) during bone paste fermentation

骨中含有丰富的矿物质和胶原蛋白，为乳酸菌的生长和繁殖提供了必要的营养物质[17]；而蔗糖可为乳酸菌提供能量[18]。在本研究中，三株乳酸菌的最大活菌数均超过了108CFU/mL，说明乳酸菌能够利用骨泥中的营养物质进行生长繁殖并呈现良好的产酸能力和耐酸性。在发酵过程中，乳酸菌发酵产生的代谢物也会影响乳酸菌的活力；随着发酵的进行，底物逐渐消耗、代谢产物不断积累、总酸含量升高、pH下降，从而使得乳酸菌的生长繁殖受到抑制，发酵逐渐进入后期阶段[19]。在发酵期间，三个处理组的pH 逐渐降低、总酸含量不断上升；在30 h 时，pH 和总酸含量趋于稳定，且活菌数达到最大值，因此，以30 h 作为发酵终点，进行后续理化指标分析。

2.2 骨泥液中钙分布、钙形态以及钙磷比分析

三株乳酸菌发酵骨泥的钙分布如图2A 所示，发酵完成时（30 h），LP、LR 和LA 处理组的总钙含量都显著高于CK 组（P＜0.05）。与CK 组相比，LR 组、LP 组和LA 组总钙含量分别从CK 组中181.33 mg/kg上升至1176.67、1310.00 和1916.67 mg/kg。在LA组和LR 组中，去除骨泥中乳酸菌菌体后，总钙含量显著下降（P＜0.05），说明这两株乳酸菌具有一定的富集钙的能力。骨泥发酵液中不同形态的钙含量如图2B 所示，三个处理组的游离钙含量均显著高于CK 组（P＜0.05）；CK 组中游离钙含量为25.37 mg/kg，LR 组、LP 组和LA 组游离钙含量分别是CK 组的40.60 倍、50.19 倍和74.62 倍。相比较于CK 组，LR组中化合态的钙含量无显著差异，而LA 组和LP 组的化合态钙含量低于CK 组（P＜0.05）。在3 个处理组中，游离钙含量均显著高于化合态钙含量（P＜0.05），说明游离钙是骨泥发酵液中主要存在形态，其中LA 组中游离钙含量（1893.33 mg/kg）显著高于其他处理组。发酵骨泥钙磷比如图2C 所示，相比于CK 组（2.10±0.11），LA（1.68±0.17）和LR（1.82±0.19）组的钙磷比值显著降低（P＜0.05），这可能是由于乳酸菌的发酵使得骨泥中化合态的钙转变为游离钙。这些结果表明，经过乳酸菌的发酵，溶液中的游离钙浓度显著升高，且嗜酸乳杆菌钙释放能力最强。

图2 乳酸菌发酵骨泥液中的钙分布（A）、钙形态（B）及发酵骨泥钙磷比（C）Fig.2 Calcium distribution (A),calcium morphology (B) and calcium-phosphorus ratio (C) of fermented bone paste

乳酸菌可通过发酵作用分解骨泥来释放游离钙[20]。本研究中，各处理组的总钙含量和游离钙含量在发酵完成时均显著高于CK 组（P＜0.05），其中LA 组总钙含量和游离钙含量最高，分别为对照组的10.57 倍和74.62 倍，其主要原因可能是LA 产酸能力最强，能分解更多HAP[21]。此外，相比于CK 组，LP 组和LA 组在发酵完成时的化合态的钙显著下降（P＜0.05），可能是因为骨泥中化合态的钙等经过发酵转化为游离钙[9]。钙磷比结果表明，LP、LR 和LA 组骨泥样品表面的Ca/P 比值由CK 组的2.10 分别下降至1.93、1.82 和1.68，这进一步表明了发酵使得骨粉中的磷酸钙转变为游离钙。综上所述，鸡骨泥液中钙的相对含量降低，而游离钙含量增高，说明乳酸菌通过产酸使鸡骨中的HAP 分解，使得钙释放到骨泥发酵液中。

2.3 傅里叶红外光谱与X 射线衍射图谱分析

傅里叶红外光谱可以作为识别鸡骨泥中化学键和官能团特征变化的工具[22]。红外光谱如图3A 所示，与CK 组相比，LA 组、LR 组和LP 组在3379、2926 和1050 cm-1波段处的特征带峰强度减弱，在1109 cm-1波段出现新吸收峰，其中LA 组在1645 cm-1特征峰红移至1593 cm-1处，这可能是由于发酵使得鸡骨泥的官能团发生了改变[23]。图3B为处理组和对照组骨泥样品的X 射线衍射图谱，对比JCPDS 卡号09-0432 可知，所有的样品中HAP 都以无定型态形式存在。相比于CK 组，在衍射角2θ=23.8°（米勒指数111），LA 组衍射峰度降低，LP 组与LR 组特征峰分别蓝移至23.4°和23.2°处；LA 组在衍射角2θ=25.8°（002）和2θ=32.0°（211）处较CK 组的衍射峰变小、变宽。这些结果表明乳酸菌发酵使得鸡骨泥发生了化学结构变化。

红外光谱中，在3379、2926 和1050 cm-1波段处的吸收峰分别与O-H、P-O 和PO43-有关。本研究中，相比于CK 组，处理组位于3379 cm-1峰强度减弱可能归因于乳酸菌发酵使得骨中结合水减少[24]；2926 和1050 cm-1波段吸收强度减弱可能由于乳酸菌发酵作用使得HAP 分解从而促进钙的释放；位于1109 cm-1处的特征峰与P=O 有关，三组实验组在此处产生新的峰值，可能是由于HAP 在分解过程中产生了新的含磷化合物。位于1600～1700 cm-1处的特征峰主要由C=O（酰胺I 带）的拉伸振动产生，这与蛋白质的二级结构变化有关[25]，与LR 和LP 相比，LA 组在1645 cm-1发生红移现象，这可能是发酵酶解作用使得鸡骨胶原蛋白分解，促进了羟基磷灰石进一步分解，从而释放更多离子钙。X 射线衍射中，峰型的尖锐程度可反映HAP 结晶度大小[26]。图3B中，整个光谱较粗糙，未出现完整的晶形结构，说明发酵底物呈无定形态[27]。衍射角2θ=23.8°处，相比于CK 组，LA 组峰度值降低、LP 组和LR 组在衍射峰发生蓝移，说明由于乳酸菌发酵使HAP 分解，晶相纯度降低，即发酵产生的酸中大量质子置换出了钙，衍射峰减弱；与其他三组相比，LA 组在2θ=25.8 与2θ=32.0 处的衍射峰降低，说明LA 组骨钙中HAP晶相变化最大，推测LA 组发酵作用释放出更多可溶性钙。Sharma 等[28]将二氧化钛掺杂纯度较高的HAP后发现，HAP 中的钙被钛取代纯度降低，其XRD 图谱也发生衍射峰偏移，峰值变低。以上结果表明，经乳酸菌发酵后，骨泥中化合物的官能团发生改变，HAP 晶相结晶度降低，钙的化学形态发生改变，发酵体系中游离钙含量增大。

2.4 主成分分析（PCA）、聚类热图分析以及代谢通路分析

采用LC-MS/MS 对发酵骨泥中的小分子物质进行分析，共鉴定到37 种发酵代谢物。主成分（PCA）分析这些代谢物在不同处理间的特征发现，如图4A 可知PCA 共产生三个有效主成分，其中第一主成分（PC1）、第二主成分（PC2）和第三主成分（PC3）特征值分别为25.61、7.65 和1.93，方差贡献率分别为69.2%、20.7%和5.2%，累计贡献率为95.13%，表明前3 个主成分有效区分了不同处理组间发酵骨泥代谢物的特征；PCA 图显示，LP、LA、LR 组与CK 组完全分开，说明各处理组中代谢物的组成或含量与CK 组存在显著差异。分析贡献PCA模型前三个主成分的贡献因子发现丙酮酸（Pyruvate）、CDP、核糖核酸（Riboxin）、5'-CMP 和木酮糖（L-Xylulose）是PC1 的重要贡献因子；胸苷（Thymidine）、瓜氨酸（Citrulline）、脱氧肌苷（Deoxyinosine）、丝氨酸（L-Serine）、天冬氨酸（LAspartic Acid）、5-羟基-L-色氨 酸（5-Hydroxy-Ltryptophan）、精氨酸（L-Arginine）、精氨酸磷酸盐（LArginine phosphate）、胞苷（Cytidine）和乳酸（Lactic acid）是PC2 的重要贡献因子；甲酰基-5-羟基犬尿胺（Formyl-5-hydroxykynurenamine）、L-甲酰基犬尿氨酸（L-Formylkynurenine）、蔗糖（Sucrose）、dTMP 和乳清酸核苷（Orotidine）是PC3 的重要贡献因子。为了更清楚地呈现这些贡献因子在不同处理组间的差异变化，贡献主成分分析中前三个主成分的代谢物的聚类热图如图4B 所示，CK 组的样本聚集为一大类，三个处理组的样本聚集为另一大类，这与主成分分析的结果一致。相比于CK 组，三个处理组中木酮糖和蔗糖的含量显著下降（P＜0.05），而丙酮酸和乳酸的含量显著增加（P＜0.05）；相比于CK 组，三个处理组中游离氨基酸及衍生物如丝氨酸和5-羟基-L-色氨酸显著增加，而精氨酸、精氨酸磷酸盐、5'-CMP、dTMP和乳清酸核苷等显著下降（P＜0.05）。PCA 分析和聚类热图分析共同表明，有机酸、游离氨基酸、糖类物质和核苷类物质是影响乳酸菌发酵骨泥重要代谢物。

图4 发酵鸡骨泥的代谢产物主成分分析（A）和聚类热图分析（B）Fig.4 Principle component analysis (A) and cluster analysis (B) of metabolites of fermented bone paste

为了进一步了解发酵骨泥中关键代谢物与乳酸菌的生物活性和发酵性能的关系，将关键代谢产物与乳酸菌的活菌数、pH、总酸度值以及游离钙含量进行相关性分析（r＞0.5 或＜-0.5，P＜0.05）。如图5 所示，有机酸（丙酮酸和乳酸）、核苷类物质（核糖核酸、脱氧肌苷、CDP 和胞苷）和氨基酸（丝氨酸、瓜氨酸）等与活菌数呈显著正相关（P＜0.05），糖类（蔗糖和木酮糖）、核苷类物质（5'-CMP、dTMP 和乳清酸核苷）和氨基酸（精氨酸）等与活菌数呈显著负相关P＜0.05）；有机酸（乳酸和丙酮酸）、核苷类物质（核糖核酸、脱氧肌苷、CDP 和胞苷）和氨基酸（丝氨酸、瓜氨酸）等与游离钙含量呈显著正相关P＜0.05），糖类（乳酸和丙酮酸）、核苷类物质（5'-CMP 和乳清酸核苷）和氨基酸（精氨酸）等与钙释放量呈显著负相关P＜0.05）。这表明三株菌可以利用糖类物质发酵骨泥促进酸类物质的产生，从而促进游离钙的释放。

图5 差异代谢物与主要生理指标关系网络图Fig.5 Network diagram of the relationship between differential metabolites and key physiological indicators

将上述差异代谢物导入至KEGG 数据库进行匹配，获取发酵过程中关键代谢物参与的代谢通路信息，进而评估关键代谢物的来源及其对钙释放的影响。如图6 所示，通过通路影响因子＞0.08 和P＜0.05对代谢通路进行筛选发现，三个处理组（LA、LR、LP）的差异代谢物所富集到的代谢通路相似，主要有嘧啶代谢、精氨酸和脯氨酸代谢、糖酵解、丙酮酸代谢、牛磺酸和次牛磺酸代谢和TCA 循环。这些富集的代谢通路表明，三个处理组的差异代谢物主要与菌体生长代谢有关。

图6 植物乳杆菌组（A）、罗伊氏乳杆菌组（B）、嗜酸乳杆菌组（C）发酵鸡骨泥代谢通路Fig.6 Metabolic pathways of fermented chicken bone paste by Lactobacillus plantarum group (A),Lactobacillus reuteri group (B),Lactobacillus acidophilus group (C)

乳酸菌利用蔗糖转化为葡萄糖和果糖，再通过糖酵解将葡萄糖转化为丙酮酸，继而通过丙酮酸途径合成乳酸[29]，乳酸菌也可将木酮糖通过丙酮酸等途径转化为乳酸[30]。蔗糖和木酮糖含量与活菌数呈负相关，而丙酮酸和乳酸含量与活菌数呈正相关，说明乳酸菌利用蔗糖和木酮糖作为碳源，通过糖酵解途径和丙酮酸途径等代谢途径产生丙酮酸和乳酸等有机酸。熊涛等[31]在发酵泡菜时发现乳酸菌可通过异型乳酸发酵将蔗糖转化为乳酸。刘洋[32]发现利用木酮糖代替蔗糖作为碳源发酵牛乳后产生大量乳酸。因此，乳酸菌可以将糖类物质经过糖酵解和丙酮酸途径转化为乳酸。

有机酸对动物骨骼中HAP 分解的机制主要包括：氢离子促进溶解（酸解）；配体控制的溶解（通过有机酸与磷灰石复合，从而打破金属氧键）[33-35]。代谢物中，丙酮酸作为乳酸的前体物质，可通过糖酵解途径和TCA 循环经乳酸脱氢酶（LDH）转化为乳酸。在发酵完成时，乳酸菌代谢产生乳酸和丙酮酸与活菌数和钙释放量呈正相关，说明有机酸可能是钙离子含量增高的关键性物质。其中三组乳酸菌发酵前后乳酸含量发生显著变化，LP、LA 和LR 组中的乳酸含量分别是CK 组中的16.18、45.27、16.50 倍，说明乳酸是影响钙离子释放最重要的酸性物质。唐勇等[9]利用乳酸菌发酵猪骨后发现，猪骨发酵液中乳酸含量与游离钙呈正相关。陈黎洪等[35]利用干酪乳杆菌CICC20296 菌株产生的乳酸可使骨泥中Ca2+浓度由0.10 mg/g 增加至10.12 mg/g。这说明乳酸菌在发酵鸡骨泥过程中，通过糖酵解、TCA 等途径产生乳酸，从而促进骨中HAP 分解并释放出游离钙。

核苷类物质和氨基酸在维持生物细胞正常生命活动中不可或缺。核苷类物质广泛存在于乳酸菌中，如5'-CMP、dTMP 和胞苷主要通过参与嘧啶代谢和嘌呤代谢途径影响DNA 和RNA 的合成[36]。氨基酸不仅作为蛋白质的组成单位，可以维持乳酸菌生命活动，也可通过酶转化为乳酸。乳酸菌可利用脱氨酶、脱羧酶将丝氨酸和瓜氨酸等转化为丙酮酸，丙酮酸继而进入TCA 循环产生乳酸，促进钙的释放[37]。因此，核苷类物质和氨基酸类物质不仅可以维持菌株正常的生长繁殖过程，也可以为有机酸的产生提供前体物质。综上，三株乳酸菌通过糖酵解途径降解发酵骨泥中的糖类，并通过TCA 循环产生有机酸，从而提升鸡骨泥液中游离钙的含量。这可能是LA 组游离钙和有机酸含量最高的重要原因。

3 结论

嗜酸乳杆菌、罗伊氏乳杆菌和植物乳杆菌均能较好的利用骨泥进行生长繁殖并产生大量的酸类物质，发酵结束时，嗜酸乳杆菌发酵组的总酸含量显著高于其他处理组（P＜0.05）。与对照组相比，罗伊氏乳杆菌发酵组、植物乳杆菌发酵组和嗜酸乳杆菌发酵组总钙含量分别从对照组的181.33 mg/kg 增加至1176.67、1310.00 和1916.67 mg/kg；游离钙含量分别是对照组的40.60 倍、50.19 倍和74.62 倍，且嗜酸乳杆菌发酵组的游离钙含量显著高于罗伊氏乳杆菌和植物乳杆菌发酵组（P＜0.05），这表明乳酸菌发酵显著增加了骨泥中钙的释放。红外光谱和X 衍射结果表明，发酵骨泥中HAP 主要以无定型形态存在，与对照组相比，罗伊氏乳杆菌发酵组、植物乳杆菌发酵组和嗜酸乳杆菌发酵组中HAP 的特征峰在2926 和1050 cm-1处的强度明显降低。经乳酸菌发酵后，骨泥中共鉴定出37 种代谢物，乳酸、丙酮酸、蔗糖等是其关键代谢物。嘧啶代谢、精氨酸和脯氨酸代谢、糖酵解、丙酮酸代谢、牛磺酸代谢和TCA 循环是影响乳酸菌生长代谢及参与钙释放的关键通路。本文探究了乳酸菌发酵影响钙释放的关键代谢途径，为利用生物发酵法制备补钙剂进一步研究提供理论依据。