张青,熊伟,刘明,张诚实,崔栋慧,冯契靓,赵云峰
1. 上海市浦东新区浦南医院呼吸内科,上海 200125;2. 上海交通大学医学院附属新华医院呼吸与危重症学科,上海 200092
慢性阻塞性肺疾病(chronic obstructive pulmonary disease, COPD)是常见的一种呼吸道慢性疾病,我国流调数据显示COPD 患病率占40岁以上人群的14.1%[1],肺动脉高压(pulmonary hypertension, PH)是COPD 常见并发症,我国由COPD 导致的肺动脉高压占60%,大大增加了患者的病死率。 目前临床常用的检测肺动脉高压的无创方法是多普勒超声心动图,三尖瓣峰值流速>3.4 m·s-1可诊断为肺动脉高压[2],超声心动图诊断轻度、中度、重度肺动脉高压的标准为:轻度 PH[36 mmHg (1 mmHg =0.133 kPa) < 肺动脉收缩压≤50 mmHg)]、中度 PH(51 mmHg < 肺动脉收缩压 <70 mmHg)、重度 PH(肺动脉收缩压≥70 mmHg)[3]。
微小 RNA(microRNA, miRNA)是短链非编码RNA,在血清中稳定表达。 miRNA 参与广泛的生理及生物过程,包括细胞增殖、分化、凋亡、代谢、血管生成、淋巴结转移、基因调控、免疫规避等[4-7],在包括COPD、PH 等肺部疾病炎症、血管重塑过程的诸多方面也发挥重要作用。 miR-17-92 基因簇为一种典型的含有多顺反子启动子的高度保守的基因簇,位于人染色体 13q31.3 处,包含 7 个成员:miR-17-3p、 miR-17-5p、 miR-18a-5p、 miR-19a-3p、 miR-19b-3p、 miR-20a-5p 和 miR-92a-3p。 在动物模型中, miR-17-92 基因簇参与了低氧诱导下的肺动脉高压的形成。 Chen 等[8]研究发现,平滑肌细胞特异性敲除miR-17-92 的小鼠能减弱缺氧诱导的肺动脉高压,而重建miR-17-92 能够恢复平滑肌细胞特异性敲除miR-17-92 的小鼠缺氧诱导的肺动脉高压。 研究发现血浆中miRNA-19b 参与了肺动脉高压的形成[9],但是在慢性阻塞性肺疾病急性加重期(AECOPD)相关肺动脉高压患者中未见相关报道,本研究旨在探讨血浆miRNA-19b 在AECOPD 相关肺动脉高压患者中的临床价值。
1.1 一般资料选取上海市浦东新区浦南医院呼吸科病房2020年11月—2021年11月诊治的 AECOPD患者。 纳入标准: (1)入组患者均符合慢性阻塞性肺疾病急性加重(AECOPD) 诊治中国专家共识 (2017年更新版)制定的 AECOPD 标准[10]; (2)患者年龄≥60岁; (3)签署知情同意书。 符合以上全部标准的病例纳入本研究。 排除标准: (1)肺栓塞、慢性血栓栓塞性肺动脉高压、下肢深静脉血栓; (2)肺间质纤维化、糖尿病、肝功能不全、肾功能不全; (3)恶性肿瘤;(4)冠心病,心功能不全等; (5)研究者认为不宜纳入本项研究的特殊人群。 具备以上任意1 项标准的病例不纳入本研究。 采用超声心动图诊断轻度、中度、重度肺动脉高压[3]。 本研究经浦南医院伦理委员会批准通过(批准号为PNYY2020-19)。
本研究对象分2 组,分别为 AECOPD 组(A 组,n=45)、 AECOPD 合并 PH 组(B 组,n=111);再根据肺动脉收缩压(PASP)结果将B 组分为轻度肺动脉高压组(B1 组,n=43)、中度肺动脉高压组(B2 组,n=36)、重度肺动脉高压组(B3 组,n= 32)共 3 个亚组。A 组中男 31例,女 14例,中位年龄 69.5岁;B 组中男71例,女 40例,中位年龄 72.7岁。 亚组中 B1 组中男28例,女 15例,中位年龄 69.5岁; B2 组好男 23例,女 13例,中位年龄 73.4岁; B3 组中男 20例,女 12例,中位年龄76.2岁。 性别构成比、年龄在以上组间比较,差异均无统计学意义(P>0.05)。
1.2研究方法
1.2.1 超声心动图测定肺动脉收缩压 应用Philip IE33 超声诊断检测仪在彩色多普勒引导下测定肺动脉收缩压。 探头频率 2.5 ~3.5 MHz,患者在静息状态下取仰卧位或者左侧卧位,平静呼吸,先后在胸骨旁左室长轴、心尖左室长轴切面、心尖四腔或五腔、动脉根部短轴、左室短轴及右室流出道长轴等切面进行探查。 测量各房室大小,大血管内径,室间隔及左、右室厚度,观察各室壁运动情况、瓣膜结构、活动情况以及有无异常的血流方向及速度,探查有无心脏畸形。对合并三尖瓣反流患者,取右室流出道为标准切面,利用连续多普勒测量三尖瓣最大反流速度(V),用简化柏努利方程计算三尖瓣跨瓣压差。 将测得的三尖瓣跨瓣压差加上右房压即为PASP。 若未合并三尖瓣反流者,可利用连续多普勒测定其分流频谱的收缩期最大分流速度,计算 PASP[3]。
1.2.2 血浆 miR-19b 、IL-6 水平测定 所有研究对象于入院次日晨起空腹抽取静脉血10 mL,取6 mL静置后送至检验科生化室检测;取4 mL 室温静置30 min后, 4 ℃ 下 3 000 r/min 离心 10 min,提取血浆,移入Eppendorf 管,置于 -80 ℃冰箱保存待测。血浆miRNA-19b 测定:采用定量反转录聚合酶链反应(qRT-PCR)测定 miR-19b。 按 Trizol 试剂盒说明书步骤提取细胞总RNA 并测定其浓度。 通过反转录获得cDNA,以cDNA 为模板进行PCR 扩增。 Caspase-3:正义链 5ˊ-GAATCCACGAGCAGAGTCAA-3ˊ,反义链 5ˊ-TAGCCTTCAACAAGCCAACC-3ˊ; β-actin:正义链 5ˊ-CTCCATCCTGGCCTCGCTGT-3ˊ, 反 义 链 5ˊ-GCTGTCACCTTCACCGTTCC-3ˊ。 反应条件: 94 ℃变性5 min, 95 ℃ 15 s, 60 ℃ 30 s(收集荧光信号), 40个循环;72 ℃ 10 min。 在扩增 miR-19b 的同时,扩增U6RNA(管家基因)作为内参照,结果以 2-ΔΔCt法表示[11]。 血浆 IL-6 测定:应用 ELISA 试剂盒(上海酶联生物科技有限公司生产)依照说明书操作方法对血浆IL-6 进行检测。
1.2.3 6 分钟步行距离的测定 在病房内用米尺事先测定30 m 距离,标明起始点位置,每5 m 标注数字,记录患者6 分钟所行走的距离。 在6 分钟内患者如果出现疲乏、头晕、心前区疼痛、呼吸困难、出冷汗、面色苍白则停止实验。 试验前后记录患者血压、心率、呼吸频率。 6 分钟步行距离分4 个等级,≥350 m 为轻度、 250~349 m 为中度、 150 ~249 m 为重度、≤149 m 为极重度,级别越低说明心肺功能越差[12]。
1.3 统计学分析应用SPSS 19.0 统计学软件进行数据分析。 计量资料以均数±标准差()表示,组间比较行独立样本t检验,组内比较用配对样本t检验,多组间比较采用单因素方差分析;计数资料以例数和百分率表示,组间比较采用χ2检验;相关性分析采用直线相关性分析。P<0.05 为差异有统计学意义。
2.1 各组肺动脉收缩压、血浆miRNA-19b、血浆IL-6、血浆CRP、NT-ProBNP 比较表 1 结果显示, A、B 组两两比较,肺动脉收缩压、血浆miRNA-19b、血浆IL-6、血浆CRP、血浆 NT-ProBNP 各指标之间的差异均有统计学意义(P均 < 0.05); B1、 B2、 B3 组两两比较,上述各指标之间的差异,均有统计学意义(P均 <0.05)。
表1 各组研究对象肺动脉收缩压及血浆miRNA-19b、血浆IL-6 、CRP 、NT-ProBNP 水平的比较( )
表1 各组研究对象肺动脉收缩压及血浆miRNA-19b、血浆IL-6 、CRP 、NT-ProBNP 水平的比较( )
注: 与 A 组比较, *P <0.05;与 B1 组比较, #P <0.05;与 B2 组比较, ▲P <0.05。
组别 肺动脉收缩压(mmHg) 血浆miRNA-19b 血浆IL-6(pg·mL-1)血浆CRP(mg·L-1)血浆NT-ProBNP(pg·mL-1)A 组 (n =45) 32.3 ±6.7 2.527 ±0.621 32.3 ±10.3 41.2 ±12.6 279.3 ± 65.5 B 组 (n = 111) 60.4 ±15.6* 1.468 ±0.421* 64.1 ±16.4* 60.4 ±17.5* 771.6 ± 168.8*B1 (n = 43) 47.1 ±12.5 1.825 ±0.413 51.7 ±17.8a 49.6 ±14.4a 517.3 ± 103.2a B2 (n =36) 62.3 ±16.7# 1.411 ±0.372# 66.3 ±21.2# 62.3 ±20.3# 803.5 ±217.7#B3 (n =32) 76.2 ±21.3#▲ 1.052 ±0.293#▲ 78.3 ±22.6#▲ 72.7 ±13.8#▲ 1077.5 ±277.5#▲
2.2 各组动脉血气和6 分钟步行距离的比较表2结果显示, A、B 组两两比较, pH 值、 PaO2、PaCO2、6分钟步行距离各指标之间的差异,均有统计学意义(P均 <0.05); B1、 B2、 B3 组两两比较,上述各指标之间的差异,均有统计学意义(P均 <0.05)。
表2 各组动脉血气和6 分钟步行距离的比较()
表2 各组动脉血气和6 分钟步行距离的比较()
注: 与 A 组比较, *P <0.05;与 B1 组比较, #P <0.05;与 B2 组比较, ▲P <0.05。
组别 pH PaO2(mmHg) PaCO2(mmHg) 6 分钟步行距离(m)A 组 (n =45) 7.31 ±0.48 54.6 ± 11.8 55.3 ±12.6 319.6 ±89.8 B 组 (n = 111) 7.27 ±0.42* 42.8 ± 14.1* 62.5 ±14.6* 244.1 ±71.8*B1 (n = 43) 7.34 ±0.77 49.7 ± 13.8 52.7 ±8.1 285.6 ±77.6 B2 (n =36) 7.27 ±0.61# 40.3 ±8.9# 62.5 ±9.9# 237.8 ±69.6#B3 (n =32) 7.22 ±0.61#▲ 36.3 ±9.2#▲ 75.3 ±15.7#▲ 195.3 ±51.7#▲
2.3 相关性分析表3 结果显示, A、 B 两组研究对象血浆miRNA-19b 与肺动脉收缩压、血浆IL-6、血浆CRP、血浆 NT-ProBNP、PaCO2均呈负相关性(P均 <0.05)、与 pH 值、 PaO2、 6 分钟步行距离均呈正相关性(P均 <0.05); B1、 B2、 B3 3 组研究对象血浆 miRNA-19b 与肺动脉收缩压、血浆IL-6、血浆 CRP、血浆NTProBNP、 PaCO2均呈负相关性(P均 <0.05)、与 pH 值、PaO2、 6 分钟步行距离均呈正相关性(P均 <0.05)。
表3 各组血浆miRNA-19b 与其他指标值的相关性
PH 的发病机制主要是缺氧、炎症等各种原因引起的细胞增殖、凋亡,导致肺上皮细胞和内皮细胞损伤功能失调、肺血管重塑。 miR-17-92 簇是控制细胞发育、凋亡和增殖的最具特征的miRNA 家族之一。miR-17-92 基因簇上调可导致细胞凋亡的减少(尤其是抗缺氧诱导的细胞凋亡)和细胞增殖增加。 在缺氧所致肺动脉高压和动脉性肺动脉高压中, miR-17-92簇表达受P53 负调控,受原癌基因转录因子(C-myc)和IL-6/STAT3 通路正向调控,从而导致miR-17-92 簇靶目标 HIF1α 或 BMPR2 的升高或降低。 P53 介导的miR-17-92 的下降被认为是缺氧介导的细胞凋亡复杂过程中的一部分,在缺氧条件下, miR-17 和miR-20a的抑制也会导致明显的细胞凋亡[13]。 miRNA-17-92簇对右心室收缩压和肺血管重构也有作用。 抗miRNA-17-92 可降低右心室收缩压和肺血管重构。 Pullamsetti 等[14]在低氧诱导的肺动脉高压鼠模型中,抗miRNA-17 治疗明显减少右心室收缩压和总肺血管抵抗,增加肺动脉加速时间,恢复心输出量,减少肺血管重塑。 miRNA-19b 是 miR-17-92 基因簇中的 1 个成员,参与了肺动脉高压的形成[9]、与 IL-6、TNF-α 等参与肺动脉高压形成的炎症因子有关[15]。 研究发现血浆IL-6、血浆NT-ProBNP 与COPD 肺动脉高压密切相关,血浆NT-ProBNP 水平增高不代表患者一定存在心功能不全,而是存在肺动脉高压[16]。
本研究结果显示:A、B 组两两比较以及B1、B2、B3 组两两比较,血浆miRNA-19b、肺动脉收缩压、血浆IL-6、 血 浆 CRP、 血 浆 NT-ProBNP、 pH 值、 PaO2、PaCO2、6 分钟步行距离各指标之间的差异,均有统计学意义。 A、 B 组研究对象以及 B1、 B2、 B3 组,血浆miRNA-19b 与肺动脉收缩压、血浆 IL-6、血浆 CRP、血浆 NT-ProBNP、 PaCO2均呈负相关性,与 pH 值、PaO2、6 分钟步行距离均呈正相关性。 以上研究结果说明:合并肺动脉高压的 AECOPD 老年患者血浆miRNA-19b 水平明显低于不合并肺动脉高压的AECOPD 老年患者;在AECOPD 相关PH 老年患者中,随着肺动脉压力逐渐增高,血浆miRNA-19b 水平逐渐降低,上述情况具体机制不详,分析原因可能血浆miRNA-19b 表达受P53 负调控,与缺氧介导的肺上皮细胞和内皮细胞损伤、凋亡的复杂过程关系密切。
综上所述,在AECOPD 相关PH 老年患者中,随着肺动脉压力逐渐增高,血浆miRNA-19b 水平逐渐降低,血浆miRNA-19b 水平与AECOPD 相关PH 老年患者病情严重程度存在一定的关系。 本研究不足之处是单中心研究,样本量较小,需要以后进行多中心和大样本研究。 另外,动态监测AECOPD 相关PH 老年患者血浆miRNA-19b 的水平可能对辅助诊断AECOPD 合并PH 有一定的临床价值。