刘萌萌,赵晨茜,刘姗姗,刘江正,孔德钦,刘 瑞,郭 鹏,海春旭,张晓迪
(1武警后勤学院卫生勤务系,天津 300309; 2空军军医大学军事预防医学系军事毒理学与防化医学教研室,陕西省自由基生物学与医学重点实验室,特殊作业环境危害评估与防治教育部重点实验室,陕西 西安 710032)
氯气是一种黄绿色、强刺激性化学气体,曾作为窒息性化学武器被大量使用于战争中,目前作为重要化工原料被广泛用于现代工业生产中。氯气毒性剧烈且密度比空气大,如果防护不当,一旦泄漏容易造成群体性急性中毒事件[1-3]。氯气中毒以呼吸道损伤为主,易致急性肺损伤(acute lung injury,ALI)、急性呼吸窘迫综合征(acute respiratory distress syndrome, ARDS),严重时可导致死亡,目前其中毒机制不清,尚缺乏特效救治药物[4]。有研究表明,线粒体氧化应激损伤可能参与了氯气导致的ALI[5-6]。己酮可可碱(pentoxifylline,PTX)属于甲基黄嘌呤的衍生物,临床上常用来改善微循环[7]。文献[8]报道,PTX可通过干预白细胞和内皮细胞相互作用减轻脓毒血症引起的肺损伤。临床研究发现,PTX可能通过调控A2A受体途径,作为抑制新型冠状病毒肺炎导致的肺部炎症的治疗策略[9]。本文以PTX干预氧化损伤-线粒体机制为切入点展开研究,为氯气中毒特效药物研发提供研究思路,也为临床救治提供理论参考。
氯气购自常州市京华气体有限公司;二辛可宁酸(bicinchoninic acid,BCA)蛋白定量试剂盒购自美国Pierce公司;Mito SOX染料购自美国Invitrogen公司;线粒体外膜转位酶20(translocase of the outer mitochondrial membrane 20,TOM 20)鼠多克隆抗体购自美国Santa Cruz Biotechnology公司;过氧化氢酶(catalase, CAT)兔多克隆抗体购于中国Proteintech Group公司;β-actin鼠多克隆抗体和PTX均为美国Sigma公司产品;超微量ATPase、丙二醛(malondialdehyde,MDA)、 还原型谷胱甘肽(glutathione,GSH)、氧化型谷胱甘肽(oxidized glutathione,GSSG)和超氧化物歧化酶 (superoxide dismutase,SOD)测定试剂盒均为南京建成科技有限公司产品;激光共聚焦显微镜为奥林巴斯公司产品;动式染毒柜为天津合普科技有限公司产品。
1.2.1 动物饲养 成年雄性SD大鼠24只,体质量为 (200±20) g,每笼6只,购自空军军医大学动物实验中心[许可证号:SCXK(陕)2014-002]。大鼠饮用自来水,垫料为锯末,12 h/12 h明暗交替,环境温度为(24±2)℃,相对湿度为(50±10)%,在染毒前12 h禁食不禁水。
1.2.2 动物分组和处理 实验动物适应性喂养1周。氯气暴露前1 d称取动物体质量后随机分为:对照组、氯气暴露组、PTX干预组(氯气暴露)、单纯PTX组(空气暴露),每组6只。氯气暴露组和PTX干预组大鼠被置于染毒柜中给予1 200 mg/m3氯气暴露染毒,时长5 min,对照组和单纯PTX组大鼠单独放入干净染毒柜中,相同流速空气暴露5 min后取出。PTX干预组和单纯PTX组于暴露前30 min和暴露后15 min分两次分别给予100 mg/kg PTX灌胃,对照组和氯气暴露组给予等量生理盐水灌胃,灌胃标准为0.1 mL/100 g。染毒结束后3 h,腹腔注射20 g/L戊巴比妥钠(40 mg/kg)麻醉,腹主动脉取血,行气管插管,结扎右侧支气管,左肺以5 mL的4 ℃无菌生理盐水进行肺泡灌注,生理盐水回收率为80%左右。右肺经生理盐水漂洗、滤纸吸干后,取中叶于40 mL/L多聚甲醛中固定24 h;其余右肺组织置于-80 ℃超低温冰箱保存待用。
1.2.3 肺组织HE染色 右肺中叶于40 mL/L多聚甲醛中固定、石蜡包埋后切片(厚度3~4 μm)。烤片后脱蜡至水,行HE染色,常规梯度乙醇脱水、二甲苯透明、中性树脂封片后,光学显微镜下观察肺组织病理学改变。
1.2.4 肺组织线粒体活性氧(reactive oxygen species,ROS)水平检测 5 μmol/L Mito SOX染料和10 μmol/L HOECHST染料混合,覆盖于10 μm厚新鲜肺组织冰冻切片,室温避光孵育30 min,4 ℃ PBS缓冲液洗涤3次,甘油封片,共聚焦显微镜600倍下观察荧光强度。
1.2.5 肺组织线粒体超微结构观察 取右肺下叶,40 mL/L戊二醛固定,磷酸缓冲液冲洗,切成1 mm3立方体,25 mL/L戊二醛固定,脱水、包埋、超薄切片,醋酸铀-枸橼酸铅双染,透射电镜下观察肺组织线粒体超微结构改变。
1.2.6 大鼠肺通透指数计算 大鼠腹主动脉采血后,置于含肝素的抗凝管中,轻柔摇匀,1 500 r/min离心10 min,分离上清备用;左肺灌注液于4 ℃条件下2 000 r/min离心10 min,取上清液分装。严格按照试剂盒操作步骤,使用全波段酶标仪(Infinite M200PRO,奥地利)测定大鼠支气管肺泡灌注液(bronchoalveolar lavage fluid,BALF)和血浆A562 nm值并计算蛋白浓度。肺通透指数=BALF中的总蛋白浓度/血浆蛋白浓度。
1.2.7 BALF中氧化损伤及肺组织中ATP酶相关指标的测定 左肺灌注液于4 ℃条件下2 000 r/min离心10 min后,取上清分装;准确称量50 mg肺组织,加入1 mL预冷生理盐水,冰浴条件下匀浆,于4 ℃条件下1 000 r/min离心10 min,制备50 g/L匀浆,取20 μL稀释10倍,即5 g/L匀浆。严格按照试剂盒操作步骤,测定BALF 中MAD、GSSG和GSH含量,SOD活力以及肺组织中Na+, K+-ATPase和Ca2+,Mg2+-ATPase活力,其余部分于-80 ℃保存。
1.2.8 肺组织中CAT和TOM 20蛋白的测定 剪碎100 mg肺组织,置于匀浆器中,与1 mL裂解液混合后研磨,冰上裂解30 min,14 770 r/min离心20 min,弃沉淀。取20 μL蛋白定量,其余样品加入2×SDS上样缓冲液,100 ℃加热10 min后分装样品,-80 ℃冰箱保存备用。样品电泳,常规转模、封闭、孵育抗体、清洗、ECL化学发光后,使用Quantity One灰度分析软件对CAT和TOM 20蛋白表达进行半定量分析。
氯气暴露3 h后,与对照组相比,肺组织体积增大,出现肺损伤。100倍光学显微镜下观察肺组织病理结构:对照组肺泡组织结构完整,形态正常,无明显渗出(图1A);氯气暴露后3 h,可见肺泡融合、间隔变窄,肺泡壁断裂,肺泡腔内出现血性渗出物,肺泡结构紊乱(图1B)。
Mito SOX是一种线粒体荧光探针,被活细胞线粒体内的超氧化物氧化后与核酸结合产生红色荧光。通过测定组织细胞内红色荧光的强度,可反映细胞线粒体内超氧化物的含量。共聚焦显微镜600倍镜下,氯气染毒3 h后,氯气暴露组肺组织红色荧光强度高于对照组(图2),说明氯气暴露可引起肺组织ROS水平升高。
在透射电镜下可见对照组肺组织血管内皮细胞线粒体形态正常,呈卵圆形或杆状,内嵴清晰,基质均匀一致,未见线粒体肿胀及空泡变性(图3A)。氯气暴露后3 h,线粒体数量增多,透光度不均,嵴结构模糊,长短径趋于相等,外膜断裂呈碎片状,基质疏松,线粒体肿胀明显且空泡化(图3B),提示氯气暴露能够导致肺血管内皮细胞线粒体结构发生异常,可能参与了ALI的发生和发展,靶向线粒体可能具有一定的保护作用。
肺通透指数是肺血管通透性改变和ALI程度的一个重要指标[10]。采用BCA法检测大鼠肺通透指数,结果显示,氯气染毒后3 h,氯气暴露组肺通透指数显著高于对照组(P<0.05);与氯气暴露组相比,PTX干预可降低因氯气染毒引起的肺通透指数异常(P<0.05,图4)。提示PTX在氯气致ALI中具有保护作用。
氯气染毒后3 h,BALF中MDA含量、SOD活力、GSSG水平显著高于对照组(P<0.05);与氯气暴露组相比,PTX干预可显著降低MDA和GSSG 水平(P<0.05),但对SOD活性无显著影响(P>0.05)。与对照组相比,氯气暴露后,GSH含量、GSH/GSSG比值降低(P<0.05),PTX干预可逆转这些趋势(图5)。
采用Western blotting检测肺组织CAT蛋白表达结果显示,与对照组相比,氯气暴露后3 h,大鼠肺组织抗氧化蛋白CAT蛋白表达下降(P<0.05);与氯气暴露组相比,PTX干预可显著上调因氯气染毒引起的表达异常(P<0.05,图6)。提示PTX可能通过上调CAT的表达,改善肺部氧化损伤。
检测肺组织中TOM 20的表达,结果显示,与对照组相比,氯气暴露可引起TOM 20蛋白表达升高(P<0.05);与氯气暴露组相比,PTX干预能够降低TOM 20蛋白表达(P<0.05,图7)。提示氯气暴露引起线粒体数量应激性升高,PTX处理可使其显著下降。
ATPase主要存在于细胞膜上,对肺泡渗出液的清除以及紧密连接蛋白的表达发挥重要作用[11]。与对照组相比,氯气损伤后3 h,肺组织Na+, K+-ATPase和Ca2+, Mg2+-ATPase活力升高(P<0.05);与氯气暴露组相比,PTX干预可显著降低升高的ATPase活性(P<0.05,图8)。
氯气作为重要的化工原料和经典化学武器,除因意外泄漏或战争使用造成人民生命和财产的巨大威胁外,还是恐怖分子进行化学袭击时的常用毒物,临床上治疗以吸氧、机械通气和激素等对症支持为主[3],限制其特效药物研发的瓶颈问题是中毒机制不清。已知氯气遇水生成次氯酸和盐酸,可刺激黏膜和上呼吸道,引起畏光、流泪等眼结膜刺激症状以及支气管痉挛、黏液增加、气道抵抗等呼吸道症状,高浓度氯气可深入肺泡,引发弥漫性肺间质及肺泡水肿,导致ALI甚至死亡[2]。本研究在大鼠染毒实验中发现,氯气损伤后,肺组织体积增大,肺泡壁变薄甚至断裂,部分肺泡腔内出现血性渗出液,肺组织破坏明显;检测肺微血管内皮细胞线粒体超微结构发现线粒体肿胀、嵴断裂,甚至线粒体双层膜断裂,损坏严重,说明线粒体是氯气中毒的重要靶细胞器。
氧化损伤是由于ROS大量产生引发的氧化还原平衡失调[12]。在正常情况下,机体通过细胞呼吸链氧化磷酸化产生少量ROS,发挥信号转导作用,维持机体正常的生理过程。体内抗氧化系统包括抗氧化酶和抗氧化物质,抗氧化酶类主要包括SOD、CAT、过氧化物酶、谷胱甘肽还原酶等,抗氧化物质主要有GSH和抗坏血酸等[13]。ROS大量生成时,SOD可催化超氧阴离子转化为过氧化氢,在CAT的作用下生成O2和H2O,进而将ROS清除;GSH在谷胱甘肽过氧化物酶的催化作用下,可以有效降低脂质过氧化物和过氧化氢水平[14]。在病理情况下,大量ROS产生,抗氧化物质被消耗,氧化还原稳态被打破,引发级联反应,导致脂质过氧化产物MDA堆积。本研究发现,氯气暴露3 h后,肺组织红色荧光强度升高,BALF中MDA、GSSG水平和SOD活力升高, CAT蛋白表达水平、GSH含量以及GSH/GSSG比值下降,提示氯气暴露引起肺组织发生显著的氧化损伤,原因可能是:①氯气暴露直接产生过量的ROS;②氯气暴露引起SOD活力应激性升高,产生大量过氧化氢,又因CAT活性降低,造成大量ROS在组织细胞中堆积;③过量产生的ROS大量消耗GSH等抗氧化物质,产生GSSG等氧化物。因此,我们推测在氯气致大鼠ALI过程中,氧化损伤可能是其发生的重要环节和损伤机制,这与DE GENARO等[5]和ELFSMARK等[15]的相关报道一致。LU等[16]认为N-乙酰半胱氨酸(N-acetylcysteine, NAC)通过激活Nrf2/GR/GSH信号通路能有效抑制不同动物模型的肺损伤,但Ⅰ、Ⅱ期临床试验均证实NAC未能降低ALI患者病死率,NAC的保护作用在临床上存在争议。因此,基于关键机制阻断进行的有效药物研究仍有待深入探索。
PTX属于甲基黄嘌呤的衍生物,是一种非特异性磷酸二酯酶抑制剂,可通过抑制环腺苷酸转变为腺苷酸,提高细胞内环磷酸腺苷水平。PTX能够改善外周微循环的灌注,除具有免疫抑制、改善血流动力学和抗纤维化等药理学作用外,还具有抗氧化功能[17-19]。周涛等[20]研究结果显示,PTX在大鼠脑缺血再灌注损伤模型中,通过调节Nrf2-ARE信号通路,减轻了氧化损伤,具有显著的保护作用。以往实验主要关注PTX在肺部疾病中的抗炎功能, PTX预处理可通过抗炎作用缓解多种ALI动物模型损伤的严重程度[21]。本研究发现,PTX干预可降低氯气损伤后大鼠肺组织中的MDA和GSSG水平,升高GSH含量、GSH/GSSG比值以及 CAT蛋白表达水平,提示其具有较好的抗氧化作用,我们推测PTX可能通过提高CAT蛋白表达水平,帮助更好地清除过量过氧化氢,防止GSH的过度消耗,进而减少脂质过氧化的发生和发展。
线粒体是ROS产生的主要细胞器,我们进一步观察了线粒体的变化。TOM 20蛋白定位于线粒体外膜上,由线粒体基因组编码,可以部分反映线粒体数量和功能[22]。我们检测了肺组织TOM 20蛋白的表达水平,发现TOM 20蛋白表达水平在氯气暴露后显著升高,PTX干预降低了TOM 20蛋白表达水平,说明氯气暴露可能引起线粒体数量应激性升高,PTX可使这一异常变化得到逆转。为了更进一步探讨,本研究检测了肺泡表面存在的ATP依赖的Na+, K+-ATPase和Ca2+, Mg2+-ATPase的活性,肺泡上皮的Na+, K+-ATPase能够将Na+从肺泡腔转移到肺泡间质,促进水肿液清除[23];Ca2+, Mg2+-ATPase与钙稳态失衡密切相关,在病理条件下,ATP能量供应异常,Ca2+, Mg2+-ATPase功能异常,引起细胞外Ca2+内流和细胞质Ca2+超载,导致离子代谢紊乱,影响肺内渗出液清除率,导致肺通透指数异常。我们推测氯气进入机体后,生成的次级代谢产物可能作用于线粒体,引起线粒体数量应激性升高,ATP生成增加,ATPase活性变化,进而引发相应病理效应。本研究发现氯气暴露引起Na+, K+-ATPase和Ca2+, Mg2+-ATPase活性升高,这与HAN等[23]的研究结果相反,考虑在染毒条件下,本结果与Na+, K+-ATPase和Ca2+, Mg2+-ATPase活性的应激性升高有关。PTX可以降低其活性,这有利于清除过量的渗出液,减轻肺损伤。肺通透指数的测定验证了这一作用。
综上所述,本研究发现在氯气引起的肺损伤过程中,PTX除了发挥自身抗氧化作用外,可通过影响线粒体数量和ATPase活性,帮助清除肺泡内过多的渗出液,发挥肺损伤保护作用,进一步的分子机制还有待深入研究。