甄瑾,春梅,李敏,刘斌,王梅玲,云永利,柳雅洁,马翔凌
白介素(interleukin,IL)-22是由多种免疫细胞分泌的细胞因子,包括辅助性T细胞(helper T cell,Th)17、NK22细胞和Th22[1],其可参与多种自身免疫性疾病的发生和发展,如系统性红斑狼疮、类风湿关节炎、多发性硬化(multiple sclerosis,MS)、干燥综合征和银屑病等。MS是典型的中枢神经系统(central nervous system,CNS)特发性炎性脱髓鞘疾病(idiopathic inflammatory demyelinating diseases,IIDDs),其好发于年轻女性。研究证实,IL-22受体α2升高是MS的危险因素[2],IL-22参与了血-脑脊液屏障(blood brain barrier,BBB)的破坏,进而促进淋巴细胞进入CNS,增加炎症因子释放,加速MS进程[3]。
星形胶质细胞是CNS的一类重要细胞,其可为CNS神经元提供营养支持,促进神经突触形成,且其在维持CNS稳态和功能中起关键作用。研究表明,阿尔茨海默病、帕金森病、MS等神经系统疾病患者以补体C3高表达为特征的A1型星形胶质细胞含量升高[4];此外,FKBP5、GGTA1、Serping1、Srgn等蛋白表达增加也是A1型星形胶质细胞的重要特征[5]。活化的小胶质细胞可通过分泌IL-1α、肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factor α,TNF-α)、C1q等细胞因子可诱导星形胶质细胞向A1型星形胶质细胞转化[4]。但IL-22作为MS病理进程中的重要细胞因子,对星形胶质细胞向A1型星形胶质细胞转化是否有影响尚未见报道。本研究旨在探讨IL-22对星形胶质细胞转化的促进作用及可能机制,以期为MS发病机制的研究提供新的方向。
1.1 实验时间 本实验时间为2020-06-20至2021-09-23。
1.2 主要试剂和仪器 主要试剂:重组人IL-22蛋白(北京拜尔迪生物技术有限公司,货号:bs-2623R),重组人IL-1α(北京拜尔迪生物技术有限公司,货号:bs-4947p),重组人TNF-α(Abcam公司,货号:ab9642),重组人C1q(Abcam公司,货号:ab96363),TRIzol(美国Sigma公司),反转录试剂盒(Vazyme公司),StarLighter Probe qPCR Mix(Universal)(北京启恒星科技有限公司,FS-Q3002),兔抗C3单抗(Abcam公司,货号:ab200999),兔抗磷酸化-丝裂原活化蛋白激酶p38(phosphorylated p38 mitogen-activated protein kinase,p-p38 MAPK)抗体(北京拜尔迪生物技术有限公司,货号:bs-5476R),兔抗磷酸化-丝裂原活化蛋白激酶活化的蛋白激酶2(phosphorylated mitogen activated protein kinase activated protein kinase 2,p-MAPKAPK-2)抗体(北京拜尔迪生物技术有限公司,货号:bs-5503R),二抗羊抗兔单克隆抗体(上海碧云天生物技术有限公司,货号:A0208)。主要仪器:细胞二氧化碳培养箱(SANYO,MCO-175),Vortex振荡器(Kylin-Bell Lab Instruments,XW-80A),移液器(Eppendorf Reference,4924000908),混匀仪(其林贝尔仪器制造有限公司,TS-100),Nanodrop分光光度计(Thermo,2000/2000C),qPCR仪(ABI,VII7),SDS-Acryl/Bis蛋白电泳仪(上海天能科技有限公司,VE-180),蛋白转膜仪(上海天能科技有限公司,VE-186),化学发光成像系统(GE,AI600)。
1.3 实验方法
1.3.1 细胞培养 将人星形胶质细胞HA1800(购自中国科学院上海细胞库)在AM1801培养基中培养(传代不超过10代),待细胞生长融合至90%,采用0.25%胰酶消化细胞并加入4 ml完全培养基,轻轻吹打细胞,转入15 ml离心管中,800 r/min(离心半径10 cm)离心3 min,弃上清液。再用3 ml含10% FBS的完全培养基重悬细胞,并将其分到3个T25细胞培养瓶中,置于37 ℃、5% CO2培养箱中培养。
1.3.2 qPCR 将人星形胶质细胞分为对照组、IL-22处理组、C1q+TNF-α+IL-1α处理组及C1q+TNF-α+IL-1α+IL-22处理组。对照组细胞未进行特殊处理,IL-22处理组细胞给予IL-22(400 ng/ml)处理48 h,C1q+TNF-α+IL-1α处理组细胞给予C1q(400 ng/ml)、TNF-α(30 ng/ml)、IL-1α(3 ng/ml)联合处理48 h,C1q+TNF-α+IL-1α+IL-22处理组细胞给予C1q(400 ng/ml)、TNF-α(30 ng/ml)、IL-1α(3 ng/ml)、IL-22(400 ng/ml)联合处理48 h。之后采用胰蛋白酶消化并收集细胞。采用Trizol法提取细胞总RNA,Nanodrop 100分光光度计检测RNA浓度及质量。将1.0 μg RNA进行反转录,得到cDNA的第一链,之后以cDNA为模板进行qPCR,检测补体C3 mRNA表达水平,实验独立重复3次。
将人星形胶质细胞分为对照组和IL-22处理组,对照组细胞未进行特殊处理;IL-22处理组细胞给予IL-22(400 ng/ml)处理48 h。采用qPCR检测FKBP5、GGTA1、Serping1、Srgn mRNA表达水平,检测步骤同上,实验独立重复3次。qPCR引物序列见表1。
表1 qPCR引物序列Table 1 qPCR primer sequences
1.3.3 Western blot法 将人星形胶质细胞分为对照组、IL-22处理组、C1q+TNF-α+IL-1α处理组及C1q+TNF-α+IL-1α+IL-22处理组。对照组细胞未进行特殊处理,IL-22处理组细胞给予IL-22(400 ng/ml)处理48 h,C1q+TNF-α+IL-1α处理组细胞给予C1q(400 ng/ml)、TNF-α(30 ng/ml)、IL-1α(3 ng/ml)联合处理48 h,C1q+TNF-α+IL-1α+IL-22处理组细胞给予C1q(400 ng/ml)、TNF-α(30 ng/ml)、IL-1α(3 ng/ml)、IL-22(400 ng/ml)联合处理48 h。之后采用胰蛋白酶消化并收集细胞,加入200 μl细胞裂解液(150 mmol/L NaCl,1% NP-40,0.1% SDS,1 mmol/L PMSF,1%蛋白酶抑制剂),置于冰上裂解10 min。4 ℃环境下,12 000 r/min(离心半径10 cm)离心10 min。将上清液转移到新的EP管中,加上样缓冲液;4 ℃环境下,12 000 r/min(离心半径10 cm)离心1 min,采用Bradford法检测总蛋白浓度。然后取20 μg总蛋白进行SDS-PAGE,电泳完成后将蛋白转移到PVDF膜上,采用5%脱脂牛奶室温摇床封闭1 h,TBST洗膜3次,5 min/次。加入一抗(1∶2 000),4 ℃过夜;加入二抗(1∶3 000)室温孵育1 h。TBST洗膜3次,10 min/次。采用ECL法显色,检测补体C3蛋白表达水平,实验独立重复3次。
将人星形胶质细胞分为对照组、IL-22处理组、丝裂原活化蛋白激酶p38(p38 mitogen-activated protein kinase,p38 MAPK)抑制剂处理组、IL-22+p38 MAPK抑制剂处理组。对照组细胞未进行处理,IL-22处理组细胞采用IL-22(400 ng/ml)处理60 min,p38 MAPK抑制剂处理组细胞采用p38 MAPK 抑制剂SB202190(10 μmol/L)处理60 min,IL-22+p38 MAPK抑制剂处理组细胞采用IL-22(400 ng/ml)、p38 MAPK 抑制剂SB202190(10 μmol/L)处理60 min。采用Western blot法检测磷酸化p38(phosphorylated p38,p-p38)、p-MAPKAPK-2、补体C3蛋白表达水平,检测方法同上,实验独立重复3次。
1.4 统计学方法 采用Graphpad prism 9.0软件进行统计学处理。符合正态分布的计量资料以(±s)表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用q检验,两组间比较采用成组t检验。以P<0.05为差异有统计学意义。
2.1 IL-22促进星形胶质细胞补体C3 mRNA、蛋白表达 对照组、IL-22处理组、C1q+TNF-α+IL-1α处理组、C1q+TNF-α+IL-1α+IL-22处理组补体C3 mRNA、蛋白表达水平比较,差异有统计学意义(P<0.05);IL-22处理组、C1q+TNF-α+IL-1α处理组及C1q+TNF-α+IL-1α+IL-22处理组补体C3 mRNA、蛋白表达水平高于对照组,差异有统计学意义(P<0.05);C1q+TNF-α+IL-1α处理组、C1q+TNF-α+IL-1α+IL-22处理组补体C3 mRNA、蛋白表达水平高于IL-22处理组,差异有统计学意义(P<0.05),见表2、图1。
表2 对照组、IL-22处理组、C1q+TNF-α+IL-1α处理组及C1q+TNF-α+IL-1α+IL-22处理组补体C3 mRNA、蛋白表达水平比较(±s,n=3)Table 2 Comparison of expression levels of complement C3 mRNA and protein in the control group,IL-22 interventional group,C1q+TNF-α+IL-1α interventional group and C1q+TNF-α+IL-1α+IL-22 interventional group
表2 对照组、IL-22处理组、C1q+TNF-α+IL-1α处理组及C1q+TNF-α+IL-1α+IL-22处理组补体C3 mRNA、蛋白表达水平比较(±s,n=3)Table 2 Comparison of expression levels of complement C3 mRNA and protein in the control group,IL-22 interventional group,C1q+TNF-α+IL-1α interventional group and C1q+TNF-α+IL-1α+IL-22 interventional group
注:IL=白介素,TNF-α=肿瘤坏死因子α;a表示与对照组比较,P<0.05;b表示与IL-22处理组比较,P<0.05
组别 补体C3 mRNA 补体C3蛋白对照组 1.001±0.063 0.361±0.023 IL-22处理组 1.848±0.054a 0.618±0.029a C1q+TNF-α+IL-1α处理组 2.622±0.084ab 0.720±0.064ab C1q+TNF-α+IL-1α+IL-22处理组 2.760±0.096ab 1.195±0.075ab F值 340.700 132.787 P值 <0.001 <0.001
图1 对照组、IL-22处理组、C1q+TNF-α+IL-1α处理组、C1q+TNF-α+IL-1α+IL-22处理组补体C3蛋白SDS-PAGE图Figure 1 SDS-PAGE of complement C3 protein in the control group,IL-22 interventional group,C1q+TNF-α+IL-1α interventional group and C1q+TNF-α+IL-1α+IL-22 interventional group
2.2 IL-22促进星形胶质细胞FKBP5、GGTA1、Serping1、Srgn mRNA表达 IL-22处理组FKBP5、GGTA1、Serping1、Srgn mRNA表达水平高于对照组,差异有统计学意义(P<0.05),见表3。
表3 对照组和IL-22处理组FKBP5、GGTA1、Serping1、Srgn mRNA表达水平比较(±s,n=3)Table 3 Comparison of mRNA expression levels of FKBP5,GGTA1,Serping1 and Srgn between control group and IL-22 interventional group
表3 对照组和IL-22处理组FKBP5、GGTA1、Serping1、Srgn mRNA表达水平比较(±s,n=3)Table 3 Comparison of mRNA expression levels of FKBP5,GGTA1,Serping1 and Srgn between control group and IL-22 interventional group
组别 FKBP5 GGTA1 Serping1 Srgn对照组 1.003±0.087 0.813±0.150 1.432±0.076 1.585±0.392 IL-22处理组 1.262±0.084 1.566±0.115 2.503±0.368 2.655±0.116 t值 -3.709 -6.900 -4.937 -4.533 P值 0.021 0.002 0.008 0.011
2.3 IL-22调控星形胶质细胞补体C3蛋白表达的相关信号通路 对照组、IL-22处理组、p38 MAPK抑制剂处理组、IL-22+p38 MAPK抑制剂处理组p-p38、p-MAPKAPK-2、补体C3蛋白表达水平比较,差异有统计学意义(P<0.05);IL-22处理组p-p38、p-MAPKAPK-2、补体C3蛋白表达水平高于对照组,差异有统计学意义(P<0.05);p38 MAPK抑制剂处理组p-p38、p-MAPKAPK-2、补体C3蛋白表达水平低于对照组,差异有统计学意义(P<0.05);IL-22+p38 MAPK抑制剂处理组p-p38、p-MAPKAPK-2、补体C3蛋白表达水平低于IL-22处理组,但高于p38 MAPK抑制剂处理组,差异有统计学意义(P<0.05),见表4、图2。
图2 对照组、IL-22处理组、p38 MAPK抑制剂处理组、IL-22+p38 MAPK抑制剂处理组p-p38、p-MAPKAPK-2、补体C3蛋白SDS-PAGE电泳图Figure 2 SDS-PAGE electrophoresis of p-p38,p-MAPKAPK-2 and complement C3 protein in control group,IL-22 interventional group,p38 MAPK inhibitor interventional group and IL-22+p38 MAPK inhibitor interventional group
表4 对照组、IL-22处理组、p38 MAPK抑制剂处理组、IL-22+p38 MAPK抑制剂处理组p-p38、p-MAPKAPK-2、补体C3蛋白表达水平比较(±s,n=3)Table 4 Comparison of expression levels of p-p38,p-MAPKAPK-2 and complement C3 protein in control group,IL-22 interventional group,p38 MAPK inhibitor interventional group and IL-22+p38 MAPK inhibitor interventional group
表4 对照组、IL-22处理组、p38 MAPK抑制剂处理组、IL-22+p38 MAPK抑制剂处理组p-p38、p-MAPKAPK-2、补体C3蛋白表达水平比较(±s,n=3)Table 4 Comparison of expression levels of p-p38,p-MAPKAPK-2 and complement C3 protein in control group,IL-22 interventional group,p38 MAPK inhibitor interventional group and IL-22+p38 MAPK inhibitor interventional group
注:p38 MAPK=丝裂原活化蛋白激酶p38,p-p38=磷酸化p38,p-MAPKAPK-2=磷酸化-丝裂原活化蛋白激酶活化的蛋白激酶2;a表示与对照组比较,P<0.05;b表示与IL-22处理组比较,P<0.05;c表示与p38 MAPK抑制剂处理组比较,P<0.05
组别 p-p38 p-MAPKAPK-2 补体C3蛋白对照组 0.761±0.067 0.827±0.018 0.956±0.050 IL-22处理组 1.218±0.043a 1.244±0.052a 1.145±0.068a p38 MAPK抑制剂处理组 0.631±0.013a 0.682±0.011a 0.574±0.015a IL-22+p38 MAPK抑制剂处理组 0.755±0.060bc 0.872±0.041bc 0.912±0.100bc F值 78.854 139.748 39.197 P值 <0.001 <0.001 <0.001
IL-22是IL-10家族成员,人IL-22由146个氨基酸组成,其与小鼠IL-22有80.8%的同源性,是一个具有α螺旋的二级结构,其通过与IL-22受体结合可发挥生物学活性[6]。IL-22受体属于Ⅱ级细胞因子受体家族,由两个亚单位组成,即IL-22受体1和IL-10受体2,前者主要表达于非免疫组织,如皮肤、肺脏、肾脏、胰腺等;后者广泛表达于免疫细胞,如T淋巴细胞、B淋巴细胞、NK细胞等。研究表明,在小鼠和人肾脏细胞中,IL-22受体被激活后可引起STAT3和STAT5磷酸化,而IL-22可以活化JAK1和TYK2,从而激活丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)信号通路[7-8]。
CNS受损时,星形胶质细胞会转化成反应性星形胶质细胞,但反应性星形胶质细胞对CNS的修复作用尚存在争议[9-10]。有研究者通过纯化和遗传分析反应性星形胶质细胞发现,星形胶质细胞可以被激活成两种极化状态:A1型(神经毒性或促炎表型)和A2型(神经保护或抗炎表型)[11],尽管上述分型并不能完全代表反应性星形胶质细胞表型,但其有助于理解不同CNS疾病中星形胶质细胞的反应状态。
星形胶质细胞是最丰富的胶质细胞,对CNS功能维持具有重要作用,其可以参与神经发育过程中神经元的突触形成、成熟和消除[12]。当CNS损伤时,星形胶质细胞在细胞外环境中可改变自身形态和功能特征,从而转化为反应性星形胶质细胞[13]。与正常星形胶质细胞相比,A1型星形胶质细胞具有以下特征:突触功能下降,吞噬能力降低,神经毒性增强[14]。一般情况下,神经胶质细胞能维持CNS中的神经元存活,但A1型星形胶质细胞可以分泌可溶性毒素,进而迅速杀伤神经元和成熟的少突胶质细胞[15]。而CNS中小胶质细胞分泌的多种炎性因子可共同活化星形胶质细胞,进而在多种CNS疾病中发挥生物学作用[16]。
研究表明,MS的发病机制复杂,涉及多种细胞和信号通路,除小胶质细胞、巨噬细胞等外,星形胶质细胞也在其中发挥了重要作用[15]。局灶性白质活动性病变患者星形胶质细胞肥大,可表达高水平的胶质纤维酸性蛋白,促进炎性细胞因子、趋化因子表达及髓鞘再生,进而参与MS的发生[17];同时,在特定条件下星形胶质细胞还表现出抗原递呈细胞的特征,促进免疫细胞应答,加速CNS中的免疫损伤;再者,星形胶质细胞还与MS的硬化斑块形成直接相关[18]。因此,研究星形胶质细胞的转化机制可能对MS的治疗具有一定帮助。
研究表明,细胞因子IL-1α、TNF-α和C1q可以诱导星形胶质细胞向A1型星形胶质细胞转化[12]。本研究结果显示,IL-22处理组补体C3 mRNA、蛋白表达水平及FKBP5、GGTA1、Serping1、Srgn mRNA表达水平均高于对照组,提示IL-22可以促进星形胶质细胞转化为A1型星形胶质细胞;C1q+TNF-α+IL-1α处理组、C1q+TNF-α+IL-1α+IL-22处理组补体C3 mRNA、蛋白表达水平高于IL-22处理组,提示C1q、TNF-α、IL-1α对星形胶质细胞转化的促进作用强于IL-22,但其相互之间的作用复杂,其机制有待于进一步阐明。
IL-22作为一种重要的细胞因子,可以激活多种信号通路[19]。本研究结果显示,IL-22处理组p-p38、p-MAPKAPK-2、补体C3蛋白表达水平高于对照组;p38 MAPK抑制剂处理组p-p38、p-MAPKAPK-2、补体C3蛋白表达水平低于对照组;IL-22+p38 MAPK抑制剂处理组p-p38、p-MAPKAPK-2、补体C3蛋白表达水平低于IL-22处理组,但高于p38 MAPK抑制剂处理组;提示IL-22可能通过促进丝裂原活化蛋白激酶活化的蛋白激酶2(mitogen activated protein kinase activated protein kinase 2,MAPKAPK-2)磷酸化而激活p38-MAPK信号通路,进而促进补体C3蛋白表达。
综上所述,IL-22可促进星形胶质细胞向A1型星形胶质细胞转化,其机制可能与IL-22促进MAPKAPK-2磷酸化,进而激活p38-MAPK信号通路有关,这为MS发病机制的研究提供了新方向。
作者贡献:甄瑾、马翔凌进行文章的构思与设计;春梅、李敏、刘斌进行研究的实施与可行性分析;王梅玲、柳雅洁进行数据收集、整理、分析;春梅、云永利进行结果分析与解释;甄瑾撰写、修订论文,负责质量控制及审校,并对文章整体负责、监督管理。
本文无利益冲突。