黄梅, 陈振夏, 于福来*, 王凯, 肖永锋, 庞玉新, 陈鸿发
NAA处理对艾纳香扦插生根生理生化特性的影响
黄梅1, 陈振夏1, 于福来1*, 王凯1, 肖永锋1, 庞玉新2*, 陈鸿发3
(1.中国热带农业科学院热带作物品种资源研究所/海南省艾纳香工程技术研究中心,海口 571101;2.广东药科大学中药资源学院,广东 云浮 527500;3.海南艾纳香生物科技发展股份有限公司,海口 570208)
为探讨NAA对艾纳香()扦插生根的影响,4 a生艾纳香健康枝条用500 mg/L NAA处理,对生根过程中的生理生化特征进行了研究。结果表明,艾纳香扦插生根率与内源IAA、GA含量和IAA/ABA呈正相关,而与ABA含量呈负相关。NAA处理能提高插穗的IAA含量,降低ABA含量,有助于不定根的产生。插穗生根率与多酚氧化酶(PPO)活性正相关,与吲哚乙酸氧化酶(IAAO)活性负相关。NAA处理能够提高插穗PPO活性,降低IAAO活性,对插穗生根有利。可溶性蛋白、可溶性总糖含量与生根率均呈正相关关系。NAA处理可促进插穗的可溶性总糖、可溶性蛋白的积累,提高插穗的细胞分化和代谢能力。因此,500 mg/L NAA处理插穗可促进不定根的生长发育。
艾纳香;扦插;NAA;PPO;IAAO; 营养物质
艾纳香()为菊科(Compositae)艾纳香属植物,广泛分布于我国海南、贵州、广西、云南等省区[1],是中药艾片的唯一来源植物, 主要含挥发油和黄酮类成分,具有修复、抑菌、抗氧化及抗肿瘤等多种药理活性[2-4],艾纳香油已经成功应用于“金喉健喷雾剂”、“咽立爽滴丸”等中成药品种。此外,美国食用香料和萃取物制造者协会(FEMA)规定,天然冰片可作为香料添加剂使用[5]。随着对艾纳香提取物日益增长的需求量,种植艾纳香已成为贵州红水河地区农民的主要经济来源。长期以来,艾纳香缺乏优良品种的现状仍未改变,药农种植均来自于野生种,而品种选育过程中,优良种质扩繁是难点。扦插繁殖因操作简单、成本低等原因,是良种繁育的常用手段。基于课题组前期对艾纳香扦插繁殖的研究,发现艾纳香扦插生根较为困难,扦插成活率低[6]。因此,为了加快艾纳香优良品种选育进程,保证优良性状的稳定遗传,优化艾纳香扦插繁殖体系,开展艾纳香扦插繁殖机理研究十分必要。
扦插生根除了与扦插措施[6]和外部环境[7]等密切相关外,与内源生长调节剂、氧化酶活性和营养物质等生理指标也关系密切。内源生长调节剂IAA、CTK和GA[8]促进生长发育,而ABA[9]抑制生长发育;另外,氧化酶活性也与插穗生根关系密切,Yan等[10]的研究表明,IAAO活性增加导致扦插生根能力降低。周详明等[11]的研究表明,高活性的PPO可促进不定根的形成。茅林春等[12]认为梅()插穗中养分对生根率的重要性从大到小依次为可溶性糖、总氮(TN)、淀粉和C/N,其中TN和淀粉起负效应。目前仅对艾纳香的扦插技术进行了研究[6],还未见对其扦插生根调控机理的研究。本文采用NAA处理艾纳香插条,对生根过程中的内源生长调节剂、氧化酶类活性和营养物质含量进行研究, 以揭示艾纳香扦插生根的生理机制,为优化艾纳香的繁殖体系及规模化育苗提供一定的理论依据。
在农业农村部儋州热带药用植物种质资源圃中采集4 a生艾纳香()健壮、无病虫害的枝条作为插穗,长度约为12 cm,上端平剪,下端斜剪。
前期对艾纳香扦插生根的研究表明,扦插时应采用木质化程度最高的下部枝条,以泥炭土∶河沙(/)=1∶1为基质, 用500 mg/L NAA处理的插条生根效果较好[6]。因此,本试验均选取下部枝条为插穗,将插穗放在1 000倍多菌灵溶液中消毒15 min,在500 mg/L NAA溶液中速蘸10 s后,扦插于泥炭土和河沙混合的基质上,以清水处理为对照(CK)。分别于扦插第0、7、14、21、28、35和42天取10个发育程度相同的插穗基部2 cm的皮层,迅速用剪刀剪碎,充分混匀,重复3次,放入-80 ℃冰箱保存。采用酶联免疫吸附法(ELISA)测定IAA、ABA、GA等3种内源生长调节剂含量;用比色法测定吲哚乙酸氧化酶(IAAO)活性[13];邻苯二酚比色法测定多酚氧化酶(PPO)活性[14];采用考马斯亮蓝染色法测定可溶性蛋白含量[15];用蒽酮比色法测定可溶性总糖含量[15]。
利用Excel 2010处理数据和绘制图表。
IAA含量 NAA处理组的艾纳香插穗, IAA含量从0.5 ng/g FW上升到第21天的1.18 ng/g FW (图1),不定根原基细胞分裂加快,插穗基部皮孔膨大开裂。21~35 d根原基形成,伸长,IAA含量又缓慢下降到1.10 ng/g FW,35 d后,不定根大量形成,IAA含量又快速上升。而对照组的IAA含量呈缓慢上升趋势,第42天达到峰值1.92 ng/g FW,前28 d对照组的IAA含量均小于NAA处理的,且生根进程晚于NAA处理组,说明NAA处理加快了内源IAA向插穗基部的转运,从而促进不定根的形成。
ABA含量 NAA处理后7 d ABA含量仅略微上升,7~21 d急剧下降至1.42 ng/g FW,21~28 d又呈上升趋势,28~35 d又下降(图1)。而对照组在前14 d呈上升趋势,14~21 d呈下降趋势,此后又上升,第42天达到峰值(3.48 ng/g FW)。整个生根过程中, 对照组的ABA含量基本上都大于NAA处理组,说明低浓度的ABA对插穗不定根的形成有利。
GA含量 NAA处理组和对照组插穗在生根过程中的GA含量变化基本一致,均在第7天下降到最低(分别为4.05、3.92 ng/g FW),然后持续上升(图1),说明GA含量的适当增加有利于不定根形成。
IAA/ABA NAA处理组插穗的IAA/ABA在前21 d呈上升趋势,并达到最高(0.57),21~28 d略微下降,此后又上升(图1)。对照组插穗在前14 d下降到最低(0.21),然后开始上升,28~35 d又缓慢下降,35 d后又上升。整个生根过程,NAA处理组的IAA/ABA均高于对照,说明NAA处理可提高插穗内IAA含量,抑制ABA合成,从而促进生根。同时,NAA处理的IAA/ABA在不定根形成和不定根伸长期均有升高,说明高的IAA/ABA有利于根系的生长。
图1 艾纳香插穗生根过程中内源生长调节剂含量的变化
吲哚乙酸氧化酶(IAAO)活性 IAAO能氧化植物体内的IAA,IAAO活性越小,IAA含量越高,越有利于不定根的形成与伸长,从而影响植物的生长发育。NAA处理组和对照组插穗的IAAO在生根过程中均呈先下降后缓慢上升的变化趋势(图2)。NAA处理组的7~21 d,IAAO活性下降幅度大于对照组,到第35天不定根大量形成后,IAAO活性缓慢上升,说明NAA对插穗的IAAO活性具有抑制作用,使插穗在生根期间保持相对较低的IAAO活性,从而促进不定根的形成。
多酚氧化酶(PPO)活性 插条在生根过程中, NAA处理组和对照组的PPO活性均呈现“上升-下降-上升”的变化趋势(图2)。NAA处理组的PPO活性在前21 d逐渐升高至峰值,21~28 d的PPO活性下降,此后又上升。对照组的PPO活性变化趋势与NAA处理的基本一致,但峰值比NAA处理组的晚7 d左右,这和NAA处理的生根进程比对照早7 d的结果基本吻合,说明PPO活性变化与扦插生根具有密切关系,PPO可以促进不定根的生长,且NAA处理可提高PPO活性。
可溶性总糖含量 NAA处理组和对照组插穗的可溶性总糖含量均呈“下降-上升-下降”的变化趋势(图3),NAA处理组的前14 d可溶性总糖含量呈下降趋势,14 d后开始上升,28 d后可溶性总糖含量降低,35 d后可溶性糖含量又上升。对照组的可溶性总糖含量始终低于NAA处理组,且变化也要晚于NAA处理组,说明NAA处理可促进插穗内可溶性总糖的积累,提高插穗的细胞分化和代谢能力,从而利于不定根的生长和发育。
图2 艾纳香插穗生根过程中氧化酶类活性的变化
可溶性蛋白含量 NAA处理组和对照组插穗的可溶性蛋白含量均呈“上升-下降-上升”的变化趋势(图3),在前14 d呈上升趋势并达到峰值。前期可溶性蛋白质的不断积累,为不定根的发生做物质储备。14~28 d呈下降趋势,28~35 d又呈上升趋势。对照组的变化趋势基本一致,但变化稍滞后,且前期含量低于NAA处理,而后期又高于NAA处理,说明NAA处理在生根前期可以促进插穗内可溶性蛋白的积累,生根期又能加快可溶性蛋白的消耗,从而促进不定根的生长和发育。
图3 艾纳香插穗生根过程中营养物质含量的变化
本研究结果表明,艾纳香扦插生根率与内源生长调节剂IAA、GA含量和IAA/ABA呈正相关关系, 而与ABA含量呈负相关关系,这与前人[16-18]的研究结果一致。使用植物生长调节剂(NAA 500 mg/L)能提高插穗的IAA含量,降低ABA含量,有助于不定根的产生。但是姚锐[19]的研究表明低浓度的GA对北美香柏()插穗不定根的形成有利,这可能与物种不同有关。许多研究将IAA/ABA作为重要评价指标,郭素娟等[20]认为白皮松()插穗生根主要由IAA/ABA进行调控,单独的内源生长调节剂对生根影响并不显著,且IAA/ABA与生根率呈正相关,进一步说明生根过程中内源生长调节剂通过协同或者拮抗作用调控着插穗不定根的生长和发育。
IAAO可以氧化IAA,而IAA可促进不定根的形成。本研究结果表明,IAAO活性与插穗生根呈负相关,NAA对IAAO活性具有抑制性,使插穗在生根期间保持相对较低的IAAO活性,从而促进不定根的形成。这与刘萍萍等[21]的研究结果一致。PPO可以催化酚类物质与IAA形成生根辅助因子“IAA-酚酸复合物”,可促进不定根的形成[22],同时也降低了酚类物质对插条不定根形成的抑制作用[23],本研究也表明,NAA处理提高PPO活性, 从而促进插穗基部皮孔膨大开裂,不定根原基细胞分裂加快及不定根的形成。
插穗内的碳水化合物和氮素化合物是插条生根的主要营养物质,尤其是可溶性总糖和可溶性蛋白。可溶性糖是植物扦插生根的主要能源物质,可溶性蛋白的运输转运对细胞的分裂、分化及细胞中能量的传递具有重要作用。本研究结果表明,可溶性蛋白与可溶性总糖对插穗生根具有正向调控作用,前14 d由于细胞加速分裂,代谢旺盛,需要消耗自身储存的大量能量,可溶性总糖呈下降趋势, 14 d后开始上升,可能是由于淀粉水解酶活性增强,促进了淀粉的降解,使可溶性总糖含量上升,为后续不定根的发生和生长提供营养保障。生根时需要消耗大量的养分和能量,因此可溶性总糖、可溶性蛋白含量呈下降趋势,生根后发达的根系可吸收水分和营养合成可溶性糖、可溶性蛋白,因此含量又升高。这与前人[24-25]的研究结果一致。且生长调节剂NAA处理可以促进穗内可溶性总糖、可溶性蛋白的积累,提高插穗的细胞分化和代谢能力,有利于不定根的生长和发育。前人[26-28]的研究也表明利用生长调节剂可提高插穗内营养物质含量,对插穗生根有促进作用。
综上所述,艾纳香扦插生根率与插穗内源生长调节剂含量、氧化酶活性和营养物质含量等多种因素息息相关,这些生理生化因子在生根过程中彼此促进或制约。用500 mg/L NAA处理艾纳香插穗, 通过提高IAA、IAA/ABA、PPO活性、可溶性蛋白和可溶性总糖含量及降低ABA含量和IAAO活性, 促进不定根的生长发育。
[1] GUAN L L, PANG Y X, WANG D, et al.Research progress on Chinese minority medicine ofL.DC.[J].J Plant Genet Resour, 2012, 13(4): 695-698.doi: 10.3969/j.issn.1672-1810.2012.04.033.
官玲亮, 庞玉新, 王丹, 等.中国民族特色药材艾纳香研究进展 [J].植物遗传资源学报, 2012, 13(4): 695-698.doi: 10.3969/j.issn.1672- 1810.2012.04.033.
[2] Pang Y X, Wang D, Fan Z W, et al.: A phyto- chemical and pharmacological review [J].Molecules, 2014, 19(7): 9453- 9477.doi: 10.3390/molecules19079453.
[3] YUAN Y, HUANG M, PANG Y X, et al.Variations in essential oil yield, composition, and antioxidant activity of different plant organs from(L.) DC.at different growth times [J].Molecules, 2016, 21(8): 1024.doi: 10.3390/molecules21081024.
[4] SAKEE U, MANEERAT S, Cushnie T P T, et al.Antimicrobial activity of(Lin.) DC.extracts and essential oil [J].Nat Prod Res, 2011, 25(19): 1849-1856.doi: 10.1080/14786419.2010.485573.
[5] SONG Y F, SUN X Q, LUO J L, et al.Study on the exploitation and application of natural borneol from[J].Flavour Frag Cosmet, 1998(3): 33-36.
宋永芳, 孙秀泉, 罗嘉梁, 等.天然龙脑的开发与应用 [J].香料香精化妆品, 1998(3): 33-36.
[6] HUANG M, CHEN Z X, YU F L, et al.Effect of different factors on rooting ofcuttings [J].Guizhou Agric Sci, 2020, 48(3): 122-125.
黄梅, 陈振夏, 于福来, 等.不同因素对艾纳香扦插生根的影响 [J].贵州农业科学, 2020, 48(3): 122-125.
[7] YUAN L L, WANG S P, ZHANG Q M, et al.Ecological and biological characteristics and cutting propagation ofHook.[J].J Trop Subtrop Bot, 2015, 23(4): 435-441.doi: 10.11926/j.issn.1005-3395.04.011.
袁莲莲, 王少平, 张倩媚, 等.红马蹄草的生态生物学特征及其扦插繁殖 [J].热带亚热带植物学报, 2015, 23(4): 435-441.doi: 10.11926/j.issn.1005-3395.04.011.
[8] OSTERC G, ŠTEFANČIČ M, ŠTAMPAR F.Juvenile stockplant material enhances root development through higher endogenous auxin level [J].Acta Physiol Plant, 2009, 31(5): 899-903.doi: 10.1007/s 11738-009-0303-6.
[9] SONG P F, CHEN H J, JIANG Y Q, et al.Effect of IBA on adventitious root formation and endogenous hormones dynamics in softwood cutting of rabbiteye blueberry [J].Chin Agric Sci Bull, 2014, 30(16): 117-122.
宋鹏飞, 陈华江, 姜燕琴, 等.IBA对兔眼蓝浆果嫩枝扦插生根及内源激素变化的影响 [J].中国农学通报, 2014, 30(16): 117-122.
[10] Yan Y H, Li J L, Zhang X Q, et al.Effect of naphthalene acetic acid on adventitious root development and associated physiological changes in stem cutting of[J].PLoS One, 2014, 9(3): e90700.doi: 10.1371/journal.pone.0090700.
[11] ZHOU X M, LIU Y T, ZHAO X Z, et al.Rooting anatomy of hardwood cutting forDuraxx.and activity change of related enzymes during rooting process [J].Bull Bot Res, 2016, 36(1): 58-61.doi: 10.7525/j.issn.1673-5102.2016.01.008.
周祥明, 刘玉堂, 赵宪争, 等.合欢硬枝扦插生根解剖及相关酶活性变化研究 [J].植物研究, 2016, 36(1): 58-61.doi: 10.7525/j.issn.1673-5102.2016.01.008.
[12] MAO L C, SHEN D X, LIN B N.Anatomical and physiological studies on initiation of root in Mume (Sieb.et Zucc.) stem cuttings [J].Acta Hort Sin, 1988, 15(3): 155-159.
茅林春, 沈德绪, 林伯年.梅插条生根的解剖和生理研究 [J].园艺学报, 1988, 15(3): 155-159.
[13] ZHANG Z L.Plant Physiology Experiment Instruction [M].3rd ed.Beijing: Higher Education Press, 1990: 210-212.
张志良.植物生理学实验指导 [M].第3版.北京: 高等教育出版社, 1990: 210-212.
[14] LI Z G, GONG M.Improvement of measurement method of poly- phenol oxidase activities in plant [J].J Yunnan Norm Univ (Nat Sci), 2005, 25(1): 44-45.doi: 10.3969/j.issn.1007-9793.2005.01.012.
李忠光, 龚明.植物多酚氧化酶活性测定方法的改进 [J].云南师范大学学报(自然科学版), 2005, 25(1): 44-45.doi: 10.3969/j.issn.1007-9793.2005.01.012.
[15] WANG X K.Principles and Techniques of Plant Physiological Bio- chemical Experiment [M].2nd ed.Beijing: Higher Education Press, 2006: 167-173,190-192.
王学奎.植物生理生化实验原理和技术 [M].第2版.北京: 高等教育出版社, 2006: 167-173,190-192.
[16] ZHANG Y C.Cutting propagation techniques and rooting mechanism of(Lour.) Gilg [D].Beijing: Chinese Academy of Forestry, 2010: 32-37.
张玉臣.白木香扦插繁殖技术及生根机理研究 [D].北京: 中国林业科学研究院, 2010: 32-37.
[17] YANG S J, YU X Y, SHI B S.Physiological and biochemical indexes ofduring cutting and rooting processes [J].J Xinjiang Agric Univ, 2018, 41(1): 18-24.doi: 10.3969/j.issn.1007- 8614.2018.01.003.
杨思佳, 于晓跃, 史宝胜.紫叶李嫩枝扦插生根过程中生理生化指标分析 [J].新疆农业大学学报, 2018, 41(1): 18-24.doi: 10.3969/j.issn.1007-8614.2018.01.003.
[18] ZUO Q L, GU X, WANG C J, et al.Study on physiological mechanism of tea ‘Longjing 43’ cutting during adventitious root formation [J].Tea Fujian, 2019, 41(8): 9-11.
左巧丽, 谷星, 王超军, 等.茶树‘龙井43’扦插不定根发生过程生理机制研究 [J].福建茶叶, 2019, 41(8): 9-11.
[19] YAO R.Studies on the cutting propagation technique and rooting mechanism of[D].Changsha: Central South University of Forestry & Technology, 2017: 26-28.
姚锐.北美香柏扦插繁殖技术及其生根生理生化机理的研究 [D].长沙: 中南林业科技大学, 2017: 26-28.
[20] GUO S J, LING H Q, LI F L.Physiological and biochemical basis of rooting ofcuttings [J].J Beijing For Univ, 2004, 26(2): 43-47.doi: 10.3321/j.issn:1000-1522.2004.02.009.
郭素娟, 凌宏勤, 李凤兰.白皮松插穗生根的生理生化基础研究 [J].北京林业大学学报, 2004, 26(2): 43-47.doi: 10.3321/j.issn:1000- 1522.2004.02.009.
[21] LIU P P, SUN Z C, ZHAO Y N, et al.Studies on rooting associated enzyme activities of‘Lübaoshi’ cuttings [J].Shandong For Sci Technol, 2017, 47(4): 25-27.doi: 10.3969/j.issn.1002-2724.2017.04.005
刘萍萍, 孙志成, 赵亚楠, 等.绿宝石木瓜扦插生根关联酶活性的研究 [J].山东林业科技, 2017, 47(4): 25-27.doi: 10.3969/j.issn.1002-2724.2017.04.005.
[22] ZHENG Q Q, LAN S R, LIU X D, et al.Effects of growth regulators on rooting and correlative enzyme activities of‘Xiangfei’ cuttings [J].J CS Univ For Technol, 2020, 40(5): 67-76.doi: 10.14067/ j.cnki.1673-923x.2020.05.009.
郑巧巧, 兰思仁, 刘雪蝶, 等.生长调节剂对‘香妃’含笑扦插生根及相关酶活性的影响 [J].中南林业科技大学学报, 2020, 40(5): 67-76.doi: 10.14067/j.cnki.1673-923x.2020.05.009.
[23] SONG R.Study of cutting propagation techniques and rooting mecha- nism of the superior clone ofsubsp.[D].Changsha: Central South University of Forestry & Technology, 2012: 49-50.
宋荣.凹叶厚朴优良无性系扦插繁殖技术及其生根机理研究 [D].长沙: 中南林业科技大学, 2012: 49-50.
[24] DONG R R, CHEN R D.Effects of different cutting date on softwood- cutting rooting and related physiological and biochemical changes during rooting ofMeiren [J].Acta Agric Zhejiang, 2016, 28(9): 1522-1529.doi: 10.3969/j.issn.1004-1524.2016.09.10.
董然然, 陈瑞丹.不同扦插日期美人梅嫩枝扦插生根特性及生理生化 [J].浙江农业学报, 2016, 28(9): 1522-1529.doi: 10.3969/j.issn.1004-1524.2016.09.10.
[25] XU Y, LU Y F, YUAN S, et al.Rooting characteristics and related physiological and biochemical analysis of cutting rooting of[J].Jiangsu Agric Sci, 2019, 47(14): 153-157.doi: 10.15889/j.issn.1002-1302.2019.14.035.
徐茵, 卢艺菲, 袁森, 等.短序润楠扦插生根特性及相关生理生化分析 [J].江苏农业科学, 2019, 47(14): 153-157.doi: 10.15889/j.issn.1002-1302.2019.14.035.
[26] CHEN C, WU Q K, ZHANG Z H, et al.Effects of plant growth regulators on rooting capacity and physiological and biochemical characteristic ofcuttings [J].J SW For Univ, 2019, 39(3): 33-39.doi: 10.11929/j.swfu.201903113.
陈晨, 吴岐奎, 张子晗, 等.植物生长调节剂对纳塔栎插穗生根及其生理生化特性的影响 [J].西南林业大学学报, 2019, 39(3): 33-39.doi: 10.11929/j.swfu.201903113.
[27] LI S M, ZHENG X H, DUAN H C, et al.Effects of ABT-1 treatment on rooting capacity and physiological and biochemical characteristic ofcuttings [J].Acta Agric Univ Jiangxi, 2021, 43(1): 116-125.doi: 10.13836/j.jjau.2021013.
李世民, 郑鑫华, 段华超, 等.ABT-1处理对树头菜扦插生根及生理生化特性的影响 [J].江西农业大学学报, 2021, 43(1): 116-125.doi: 10.13836/j.jjau.2021013.
[28] WEI Y, ZHANG M Z, LÜ G Y, Effect of exogenous hormones on rooting development and biochemical characteristics ofduring cutting treatment [J].Nonwood For Res, 2020, 38 (3): 200-207.doi: 10.14067/j.cnki.1003-8981.2020.03.023.
韦业, 张明忠, 吕桂云, 等.外源激素处理对花椒插穗生根及其生理生化特性的影响 [J].经济林研究, 2020, 38(3): 200-207.doi: 10.14067/j.cnki.1003-8981.2020.03.023.
Effects of NAA on Physiological and Biochemical Characteristic ofduring Cutting Rooting
HUANG Mei1, CHEN Zhenxia1, YU Fulai1*, WANG Kai1, XIAO Yongfeng1, PANG Yuxin2*, CHEN Hongfa3
(1.Tropical Crops Genetic Resources Institute, Chinese Academy of Tropical Agricultural Sciences/Hainan Provincial Engineering Research Center for Blumea balsamifera,Haikou 571101, China; 2.School of Chinese Material Medical Resources, Guangdong Pharmaceutical University,Yunfu 527500, Guangdong, China; 3.Hainan Ainaxiang Biotechnology Development Co.LTD,Haikou 570208, China)
In order to explore the effect of NAA on cutting rooting of, the changes in physiological and biochemical characteristics of 4-year-old healthy branches as cuttings were studied treated with 500 mg/L NAA.The results showed that rooting rate was positively correlated with endogenous IAA, GA content and IAA/ABA, but negatively with ABA content.The IAA content of cuttings increased and ABA content decreased treated with NAA, showing that NAA had helped with adventitious roots.The rooting rate of cuttings was positively correlated with PPO activity and negatively with IAAO activity, and NAA could enhance PPO activity and reduce IAAO activity of cuttings, which is beneficial to rooting.The contents of soluble protein and total soluble sugar were positively correlated with rooting rate.NAA could promote the accumulation of total soluble sugar and soluble protein, improve the cell differentiation and metabolic ability of cuttings.Therefore, 500 mg/L NAA could promote the growth and development of adventitious roots.
; Cutting; NAA; PPO; IAAO; Nutrient
10.11926/jtsb.4397
2021-02-09
2021-05-06
海南省自然科学基金项目(319QN312, 2019CXTD414);农业农村部品种改良提升专项子任务(RZJP202006);国家热带植物种质资源库项目资助
This work was supported by the Project for Natural Science in Hainan (Grant No.319QN312, 2019CXTD414), the Special Project for Variety Improvement and Upgrading in Ministry of Agriculture and Rural Affairs (Grant No.RZJP202006), and the Project of National Tropical Plants Germplasm Resource Center.
黄梅,硕士,助理研究员,主要研究方向为南药种质资源评价及规范化栽培。E-mail: huangmei122@126.com
通信作者Corresponding author.E-mail:fulai.yu@163.com; pyxmarx@126.com