Treg/ Th17平衡与脓毒症的关系研究进展①

2021-11-25 09:22:30张改君龙细雨靳露露贾建伟郭丽颖天津中医药大学天津301600
中国免疫学杂志 2021年19期
关键词:脓毒症分化调节

张改君 龙细雨 靳露露 贾建伟 郭丽颖 (天津中医药大学,天津301600)

调节性T 细胞(T regulatory cell,Treg)和辅助性T 细胞17(helper T cells Th17,Th17)同属于 CD4+T细胞亚群,但两者在免疫调节中发挥不同作用。Treg 可分泌抑制炎症的细胞因子如IL-10、TGF-β等,发挥免疫抑制作用;Th17 细胞可分泌促炎因子如IL-17、IL-21、IL-22 等,促进炎症进展。Treg/Th17平衡在维持免疫耐受中发挥重要作用。研究证实,Treg/Th17 失衡与自身免疫性疾病、肿瘤、炎症等疾病关系密切[1-3]。此外,Treg/Th17 平衡在脓毒症发生、发展及预后中具有重要调节作用。中药具有多成分、多靶点、副作用小等优势,通过调节Treg/Th17平衡在脓毒症治疗中具有重要参考意义。

1 Treg/Th17概述

1.1 Treg 分化 Treg 是 CD4+T 细胞亚型,主要在胸腺中产生,也可由外周诱导分化形成[4]。胸腺中nTreg在自身抗原、细胞因子和胸腺共刺激分子刺激下发育;外周pTreg在外周TGF-β作用下从幼稚T细胞分化而来。除CD4 和CD25 外,Treg 特异表达转录因子Foxp3,且Foxp3对Treg生成不可或缺。无论是性联免疫失调综合征(IPEX)患者,Foxp3 功能缺失型基因突变小鼠scurfy,还是Foxp3 基因敲除小鼠,均证实Foxp3 缺失可导致nTreg 细胞生成障碍,从而使其他免疫细胞尤其是不表达Foxp3 的效应CD4+T 细胞即CD4+CD25-T 细胞功能过强,导致消耗综合征或免疫细胞增生性自身免疫病[5-6]。如通过逆转录病毒使CD4+CD25-T 细胞高表达Foxp3,可导致部分效应CD4+T 细胞转化为具有抑制功能的Treg。此外,nTreg 细胞分化受T 细胞(抗原)受体(T cell receptor,TCR)信号影响,信号越强,持续时间越长,nTreg 细胞数越多[7]。初始 T 细胞可在外周经细胞因子诱导表达 Foxp3,向 iTreg 细胞分化[8]。如TGF-β 是iTreg 分化的关键细胞因子,可通过Smad2/Samd3 磷酸化诱导Foxp3 表达,促进iTreg增殖[9]。

Treg 可产生抗炎因子、耗尽关键生长因子调节炎症通路,发挥抗炎作用,维持自身免疫稳态。Treg产生IL-10和TGF-β等抗炎因子,也可通过细胞接触依赖方式分泌抗炎因子,抑制炎症进展[10-11]。临床和动物实验均表明,Treg 可增加 IL-10、IL-4、TGF-β和 IL-2 表达,降低促炎因子 IL-17 和 IFN-γ 水平[12]。活化的肝星状细胞通过细胞接触依赖方式促进Treg增殖,增强Treg 抑制活性,可明显减轻肝脏炎症和损 伤[13]。 Treg 也 可 通 过 CTLA-4 接 触 依 赖 下 调CD80/CD86 表达,调节树突状细胞表型和功能,发挥免疫抑制作用[14]。Treg 需依赖关键因子如IL-2等,促进CD4+T 细胞向Treg 分化,发挥免疫耐受作用[15]。研究发现,阻断 IL-2 可显著提高小鼠 IFN-γ和 IL-17A 表达,缺失 IL-2 可显著减少 Treg 数[16]。体外和体内实验发现,缺乏持续的IL-2 信号刺激可减弱 Treg 的抑制功能[17]。调节炎症通路也是 Treg 维持自身稳态的重要机制。研究报道,Treg 可通过调节 NF-kB 通路维持自身稳态[18]。此外,Treg 可通过抑制TLR4/NF-κB 信号通路激活减轻蛛网膜下腔出血引发的脑炎[19]。

1.2 Th17 细胞分化 Th17 细胞是 CD4+T 细胞的另一个亚型,主要分泌促炎因子IL-17、IL-21、IL-22等,在炎症进展中起重要作用[20-22]。TGF-β 在炎症细胞因子(如IL-6或IL-21)刺激下,通过维甲酸受体相关孤核受体 γt(retinoic acid receptor-related orphan receptor γt,RORγt)途径参与Th17 细胞分化过程[23]。RORγt 是Th17 细胞分化和发挥功能必要的转录因子。体外在IL-6和TGF-β极化条件下刺激野生型或RORγt缺陷小鼠来源的CD4+CD25-CD62L+CD44-T细胞实验发现,野生型CD4+T 细胞IL-17 产生明显增加,而Rorγ-/-小鼠(缺乏Rorγ和Rorγt)CD4+T细胞在体外极化后 IL-17 细胞显著减少[24]。RORγt 在促进Th17 细胞分化同时,抑制T 细胞分泌IL-10,导致Th17 细胞致病性[25]。此外,TCR 与信号传导与活化转录因子3(signal transducer and activator of transcription 3,STAT3)在维持Th17 细胞致病性方面发挥重要作用[26]。

TGF-β 在诱导Th17 细胞分化方面发挥重要作用。TGF-β1 缺陷小鼠在所有组织部位的Th17 细胞显著减少[27]。尽管 IL-21 通过 SMAD4 诱导 Th17 细胞分化,但其作用发挥依赖于TGF-β,T细胞和IL-21共培养,加入 TGF-β 药物抑制剂,Th17 细胞无法形成[28]。此外,研究表明,IL-6和IL-23通过介导TGF-β诱导IL-23R mRNA 表达和Th17 细胞分化,而抗TGF-β 几乎完全抑制 IL-23R mRNA 上调及 IL-6 和IL-23诱导的Th17细胞分化[29]。

1.3 Treg/Th17 分化平衡 Th17 细胞和 pTreg 均在TGF-β 信号作用下由初始CD4+T 细胞分化而来。Th17 细胞分泌促炎因子引发自身免疫和炎症反应,Treg 可抑制这种情况,维持机体免疫稳态[30]。Treg/Th17 平衡与自身免疫性肝炎、肿瘤、脓毒症等发生发展相关[31-33]。TGF-β在T细胞分化和发育、内环境稳态、免疫耐受中发挥重要调节作用[34]。TGF-β 既可调控Foxp3表达,也可影响RORγt表达。Foxp3是初始 T 细胞分化为 Treg 的重要调节因子,RORγt 对Th17 细胞分化起关键作用。Th17 细胞可介导炎症反应,并在功能上对抗Treg。Th17细胞和iTreg从初始T 细胞分化取决于TGF-β 表达水平。低水平TGF-β、IL23 或 IL-6 诱导幼稚 T 细胞发育为 Th17 细胞[35]。组织微环境中高水平 TGF-β 可能导致 iTreg产生[36]。介导 IL-6 的 STAT3 可诱导 RORγt 表达,并在Th17 细胞分化中起作用;而介导IL-2 和IL-5 的STAT5 可直接结合 Foxp3 基因,诱导 Treg 发育和功能[37]。因此,初始 CD4+T 细胞在微环境中 TGF-β 和IL-6 同时存在时,可上调 RORγt 表达,向 Th17 细胞分化,在缺乏促炎因子如 IL-6 时,TGF-β 促进 CD4+T细胞分化为 Treg[31]。IL-2 和 IL-15 通过 STAT5 通路上调Foxp3 基因表达,诱导初始CD4+T 细胞向Treg分化[38]。低氧诱导因子1(hypoxia inducible factor-1,HIF-1)通过下调Foxp3 基因,一方面可抑制初始CD4+T 细胞向Treg 分化,另一方面通过STAT3 通路正向调控,使初始CD4+T 细胞向Th17 细胞方向分化。代谢性产物如维A 酸在TGF-β 作用下,上调Foxp3 表达,抑制 IL-6 表达,促进初始 CD4+T 细胞向Treg分化(图1)。

图1 Treg和Th17细胞分化与平衡Fig.1 Differentiation and balance of Treg and Th17 cell

1.4 Treg/Th17 相关通路 雷帕霉素靶蛋白(mTOR)是一种丝氨酸/苏氨酸激酶,感受氨基酸、营养物质、生长因子等改变,调节各种基本细胞过程,包括蛋白合成、生长、代谢、衰老、再生、自噬等[39]。研究表明,敲除 Raptor 可导致 mTOR 通路功能受损小鼠发生炎症相关性疾病,被输入的正常小鼠Treg 效果减轻或逆转,而输入Raptor 敲除小鼠Treg 则无效[40]。因此,mTOR 依赖于 Treg 的免疫抑制功能。AMP 活化蛋白激酶(AMP-activated protein kinas,AMPK)是细胞能量传感器,是调节机体能量的关键分子,可通过促进线粒体脂肪酸氧化和抑制乙酰辅酶A 羧化酶活性快速提供能量[41-42]。研究表明,肝激酶B1(liver kinase B1,LKB1)可通过AMPK调节Treg代谢和能量稳态,LKB1缺陷小鼠导致Treg数减少和功能丧失,导致自身免疫性疾病[43]。部分小分子蛋白也可调节Treg/Th17 平衡,如雌激素受体α(ERRα)可促进Th17细胞分化,敲除小鼠ERRα后,小鼠体内Th17细胞表达受抑制[44]。低胆固醇饮食可通过激活肝X 受体(liver X receptors,LXRs)调节胆固醇代谢改善 Th17/Treg 平衡[45]。LXRs 激动剂T0901317 可抑制 IL-17 有效转录,抑制 Th17 细胞增殖[46]。

2 Treg/Th17与脓毒血症

2.1 脓毒血症与Treg/Th17 失衡 脓毒症是一种对宿主感染引起的免疫反应失调进而威胁生命的MODS[47]。脓毒症的特点是早期出现全身炎症反应综合征(systemic inflammatory response syndrome,SIRS),后期出现免疫抑制、消炎或以代偿性抗炎反应综合征(compensatory anti-inflammatory response syndrome,CARS)[48-49]。脓毒症发生发展可能与免疫功能紊乱密切相关。脓毒症早期和晚期,T 细胞在免疫功能抑制或免疫过激方面均发挥重要作用[50]。脓毒症患者Th17/Treg 失衡与MODS 进展关系密切。Th17 细胞分泌IL-17,IL-17 可能通过阻止IL-10过度产生减少继发性抗炎反应,从而改善严重脓毒症。脓毒症早期患者中,缺乏IL-17 可能加重脓毒血症晚期阶段免疫失衡[51]。严重脓毒症患者中,激活的Foxp3+Treg 最初被炎症刺激所淹没,但疾病后期,Treg 具有显著保护作用。Treg 缺失使晚期生存率恶化,由此可知,Foxp3+Treg 在严重脓毒症后期发挥有益作用。表明,Treg 抑制能力不足以控制严重炎症和早期死亡率,但却是严重脓毒症恢复的先决条件[52]。

2.2 中药调控Treg/Th17 平衡 Th17 细胞主要通过分泌IL-17 和IL-6 引起炎症反应,而Treg 则通过分泌TGF-β 和IL-10 发挥抗炎作用。研究表明,Th17/Treg 失衡与脓毒症和各种炎症性疾病有关[51,53-54]。因此,调节 Th17/Treg 平衡可能是治疗脓毒症的有效措施[33]。HOU 等[55]通过盲肠结扎穿刺法建立小鼠脓毒症模型,发现小剂量和中剂量(100 mg/kg 和200 mg/kg)黄芪多糖处理可减少脓毒症小鼠Th 细胞数,抑制Th2 细胞和Treg 极化,减轻脓毒症小鼠肾损伤,而大剂量(400 mg/kg)黄芪多糖可过度逆转Th/Treg 反应失调损伤器官。CHEN等[56]采用体外T 细胞分化实验,观察血必净注射液对脓毒症小鼠Treg和Th17细胞分化的影响,结果发现,地塞米松对照组脓毒症小鼠存活率无显著提高,而血必净注射液可通过直接和间接增强Treg 功能,拮抗 TNF-α 和 IL-6,抑制 Th17 细胞分化和增殖,在促炎阶段抑制炎症进展,提高脓毒症小鼠感染性休克存活率。LIU 等[57]实验表明,脓毒症小鼠外周血、脾脏和胰腺组织Th1、Th17 细胞明显增多,Treg减少;而黄芩苷可能作用于RORγt受体,通过RhoAROCK途径抑制Th1和Th17反应,促进Treg增殖,减少IFN-γ 和IL-17 炎症因子释放,减轻脓毒症小鼠胰腺损伤。CHEN 等[58]发现,姜黄素可提高血浆IL-10水平,抑制脓毒症小鼠血浆TNF-α和IL-6分泌,显著减轻脓毒症小鼠肺部和肾脏炎症性损伤,可将脓毒症小鼠存活率显著提高至60%(对照组为20%),进一步实验阐述姜黄素可能通过NF-κB 信号通路增强 Treg 功能,减少 TNF-α 和 IL-6 炎症因子释放,从而提高脓毒症小鼠存活率。GAO 等[59]发现脓毒症组小鼠出现充血、炎症细胞浸润、坏死和变性等改变,且脾脏CD3+CD4+T 细胞和CD3+CD8+T 细胞凋亡率提高,丹参酮Ⅱ-A 可作用于高迁移率族蛋白B1(high mobility group box 1 protein,HMGB1)受体,降低血清 HMGB1 水平,降低脾脏 CD4、CD8+T 细胞比例,增加脾脏中Treg 数,改善脓毒症小鼠器官损伤和生存率。综上,中药在调控Treg/Th17 平衡治疗脓毒症方面疗效显著,但具体机制尚未明确,需进一步研究。

3 小结

Treg 与Th17 细胞分化需要多种调节因子参与,其中Foxp3 在Treg 分化中起关键作用,IL-6 和IL-21是诱导CD4+T 细胞分化为Th17 细胞的重要调节因子。Treg/Th17 平衡在自身免疫性疾病、肿瘤、炎症等疾病中发挥维持免疫耐受和免疫稳态作用。近年随着人们对Treg/Th17 平衡与疾病关系的不断深入,发现其与脓毒症关系密切。尽管护理和医疗水平有大幅提高,脓毒症在ICU 死亡原因中依居高不下,迫切需要探索其发病机制,制定有效治疗措施[60]。中药在调节Treg/Th17 平衡方面发挥重要作用。如氧化苦参碱可抑制Th17 细胞分化,促进Treg分化调节 Treg/Th17 平衡[61]。探讨 Treg/Th17 平衡与脓毒症的关系,可以明确脓毒症发病机制,为临床靶向治疗提供方向,为脓毒症早期诊断与治疗提供新思路。目前,虽然开展了多个中药调节Treg/Th17 平衡治疗脓毒症的研究,但深度不够,仍需加大中药治疗脓毒症疗效和机制研究。

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