藤茶总黄酮通过调控TGF-β1/p38MAPK通路对肝纤维化大鼠的作用及机制研究

2021-08-25 14:11李木松王利兵
吉林中医药 2021年8期
关键词:激动剂低剂量黄酮

李 雯,李木松,王利兵

(1.邯郸市第三医院药剂科,河北 邯郸 056000;2.保定市人民医院肝五科,河北 保定 071000;3.唐山市工人医院肝胆外科,河北 唐山 063000)

肝纤维化是各种肝病向肝硬化发展的必经步骤,是影响慢性肝病预后的重要因素。随着全世界慢性肝病患者的增加,肝纤维化的防治尤为重要,寻找有效抑制肝纤维化的药物也日渐紧迫[1]。近年来,西药治疗肝纤维的局限性逐渐显现,中药研究逐渐被重视。中医认为[2],肝纤维化病机为正虚血瘀,正虚为肝肾阴虚与脾肾阳虚,血瘀为瘀阻肝络,因此辨证论治,解毒通络是主要治疗思路。藤茶总黄酮(TF)是从藤茶中提取的有效成分,藤茶是民间常用的治疗感冒发热、咽喉肿痛、肝炎肝硬化等疾病的药物。有研究表明[3],藤茶总黄酮具有消炎抑菌、降血脂、止咳化痰、抗氧化和保肝护肝等功效,但藤茶总黄酮在体内通路的作用机制尚不明确。研究表明[4]转化生长因子β1/p38-促分裂原活化蛋白激酶(TGF-β1/p38MAPK)通路在形成肝纤维化过程中起到重要作用,因此本研究通过皮下注射四氯化碳(CCl4)构建大鼠肝纤维化模型,口服灌胃观察藤茶总黄酮对大鼠肝纤维化的作用,通过TGF-β1/p38MAPK 通路阐述藤茶总黄酮修复肝纤维化的作用机制,为肝纤维化治疗提供更多思路和可能性。

1 材料与方法

1.1 材料 SPF 级Wistar 大鼠,雄性65 只,6 周龄,体质量190~230 g,12 h 照明,自由进食饮水,购自常州卡文斯实验动物有限公司,许可证号SCXK(苏)2016-0010。藤茶总黄酮含量47.52%(宝鸡晨光生物科技有限公司,生产批号:20190306),金龙鱼花生油(保定沃尔玛超市,生产批号:20151029),激动剂(anisomycin)(德国Merck 公司,10 mg/支),四氯化碳(CCl4,广东西陇化工,生产批号:20150511),I 型胶原蛋白(Col Ⅰ)试剂盒、III 型胶原蛋白(Col Ⅲ)试 剂 盒(美 国R&D 公 司),兔 抗 鼠TGF-β1、p38MAPK、α 平滑肌肌动蛋白(α-SMA)、基质金属蛋白酶-9(MMP-9)、小鼠抗大鼠β-actin 抗体(美国Abcam 公司),一抗、2× SYBR Green 荧光染料(美国Roche 公司),反转录试剂盒(日本Takara 公司),BCA蛋白定量试剂盒、ECL显影液(美国Bio-rad公司),HE 染色试剂盒(北京索莱宝科技有限公司)全自动生化分析仪(山东博科生物公司),RM2535 切片机(日本Leica 公司),CX40 显微镜(日本Olympus 公司),水平电泳仪、垂直电泳仪、CheniDoc Touch 成像分析系统、CFX Connect 实时荧光定量PCR 仪(美国Biorad 公司),Epoch 酶标仪(德国Bioeck 公司)。

1.2 方法

1.2.1 实验分组 对照组(背部皮下注射花生油加灌胃生理盐水)、模型组(背部皮下注射25% CCl4加灌胃生理盐水)、藤茶总黄酮低剂量组(背部皮下注射25% CCl4加灌胃75 mg/kg 藤茶总黄酮)、藤茶总黄酮高剂量组(背部皮下注射25% CCl4加灌胃300 mg/kg 藤茶总黄酮)、激动剂组(背部皮下注射25% CCl4加灌胃300 mg/kg 藤茶总黄酮加腹腔注射2 mg/kg anisomycin)。

1.2.2 模型[5]制备及给药方法 模型组、藤茶总黄酮低剂量组、藤茶总黄酮高剂量组、激动剂组大鼠皮下注射25% CCl4(CCl4与花生油1:3 混合)2 mL/kg,每3 d 注射1 次,连续10 周;对照组背部皮下注射花生油2 mL/kg,每3 天注射1 次,连续10 周;对照组和模型组第6 周开始生理盐水灌胃6.3 mL/kg,每天1 次,至第10 周结束;藤茶总黄酮低剂量组、高剂量组分别于第6 周开始灌胃75、300 mg/kg 藤茶总黄酮,至第10 周结束;激动剂组第6 周开始灌胃300 mg/kg 藤茶总黄酮后,腹腔注射anisomycin 2 mg/kg,至第10周结束。

1.2.3 标本收集 第10 周最后一次给药2 h 后眼底静脉丛取血2 mL,室温静置30 min,3 000 r/min 离心15 min,分离血清,置于-80 ℃保存,用于检测各项血清指标。各组大鼠颈椎脱臼处死后,分离肝组织,生理盐水清洗后留取左叶,10%中性甲醛固定48 h,用于HE 染色。另取部分肝脏组织于-80 ℃保存备用。

1.2.4 血清丙氨酸氨基转移酶(ALT)、天冬氨酸氨基转移酶(AST)检测 采用全自动生化分析仪测定血清中ALT、AST 含量,在损伤肝脏中,ALT、AST 水平会明显增加,以此作为判断肝功能损伤的相关指标。

1.2.5 肝组织病理学染色 各组肝组织10%甲醛固定48 h 后,流水冲洗1 h,乙醇梯度脱水后,石蜡包埋,5 μm 连续切片,石蜡切片置于烘箱中60 ℃烤片2 h,脱水后苏木精染色5 min,自来水冲洗15 min,伊红复染2 min,无水乙醇脱水,二甲苯透明后重型树胶封片,经显微镜观察各组肝组织纤维化改变。

1.2.6 肝组织中Col Ⅰ、Col Ⅲ检测 取-80 ℃保存肝组织,按照1:9 质量比加入PBS,匀浆取上清液,采用ELISA 法检测肝脏中Col Ⅰ、Col Ⅲ,严格按照试剂盒说明书操作,最后通过酶标仪测定吸光度,根据标准曲线计算Col Ⅰ、Col Ⅲ含量。

1.2.7 肝组织TGF-β1、p38MAPK、α-SMA、MMP-9 mRNA 表达检测取-80 ℃保存肝组织,通过Trizol法提取总RNA,测定RNA 含量后,通过反转录试剂盒逆转录成稳定的cDNA,逆转录体系:RNA 5 μL,dT18 1 μL,RNAase free 水 7 μL。荧光定量PCR 反应按照试剂盒反应体系:SYBR Premix Ex Taq 13 μL,10 μmol/L上下游引物各1 μL,cDNA 3 μL,ddH2O 10 μL。荧光定量反应条件:98 ℃预变性5 min;95 ℃变性30 s,58 ℃退火30 s,72 ℃延伸50 s,重复35 个循环。以β-actin 为内参,通过2-△△CT法计算TGF-β1、p38MAPK、α-SMA、MMP-9 的相对表达量,上下游引物序列见表1。

表1 引物序列

1.2.8 TGF-β1、p38MAPK、p-p38MAPK、α-SMA、MMP-9 蛋白表达检测 取约100 mg 肝组织,加入1 mL 裂解液,研磨后匀浆,放入离心管,置于冰上,10 000 r/min 离心20 min,取上清采用二喹啉甲酸(bicinchoninic acid,BCA)法测定蛋白含量。取40 μL 蛋白样品加入10 μL5×上样缓冲液,95 ℃水浴5 min,冻存于-20 ℃,用于进行十二烷基硫酸钠聚丙烯酰氨凝胶电泳(SDS-PAGE)分离。分离胶与浓缩胶配置完成后,120 V 60 min 完成电泳,半干转印条件22 V 30 min,取出NC 膜,脱脂奶粉封闭2 h,加入一抗(1:1 000 稀释)4 ℃摇床过夜孵育,加入二抗(1:2 000 稀释),常温摇床孵育1 h,PBST 振荡冲洗3 次,每次5 min,加入ECL 显色液,放入化学发光成像仪中曝光,将TGF-β1、p38MAPK、p-p38MAPK、α-SMA、MMP-9 与β-actin 灰度值相比得出目的蛋白相对表达量。

1.3 统计学分析 采用SPSS 20.0 统计学软件分析数据,符合正态分布的计量资料均以均数±标准差()描述,多样本计量资料比较采用单因素方差分析,两两样本比较采用SNK-q 检验。

2 结果

2.1 各组血清ALT、AST 水平比较 与对照组比较,模型组血清ALT、AST 水平均升高(P<0.05);与模型组比较,藤茶总黄酮低剂量组、藤茶总黄酮高剂量组及激动剂组血清ALT、AST 水平均降低,其中藤茶总黄酮高剂量组低于藤茶总黄酮低剂量组和激动剂组,差异均有统计学意义(P<0.05)。见表2。

表2 各组血清ALT、AST 水平比较(,n =13)

表2 各组血清ALT、AST 水平比较(,n =13)

注:与对照组比较,#P <0.05;与模型组比较,△P <0.05;与低剂量组比较,▲P <0.05;与高剂量组比较,□P <0.05

2.2 各组肝组织病理学染色观察 对照组大鼠肝细胞排列紧密饱满,肝细胞大小正常,结构清晰,未见异常。模型组肝细胞排列紊乱,细胞间隙有明显脂肪变性,肝组织纤维化严重,肝小叶有结缔组织异常增生形成假小叶。藤茶总黄酮低剂量组肝细胞排列杂乱,肝小叶间有少量变性脂肪填充,汇管区少量增生组织。藤茶总黄酮高剂量组肝细胞排列稍乱,肝小叶间未见脂肪填充,肝小叶结构未见浸润性坏死,肝结构完整,汇管区未出现纤维化。激动剂组肝小叶间胶原纤维增生,肝细胞间有散在的脂肪细胞浸润,有胶原沉淀。见图1。

图1 肝组织病理学改变(HE×400)

2.3 各组肝组织中ColIColⅢ水平比较 与对照组比较,模型组Col Ⅰ、Col Ⅲ水平均升高(P<0.05);与模型组比较,藤茶总黄酮低剂量组、藤茶总黄酮高剂量组、激动剂组Col Ⅰ、Col Ⅲ水平均降低,其中藤茶总黄酮高剂量组Col Ⅰ水平低于藤茶总黄酮低剂量组及激动剂组,差异具有统计学意义(P<0.05)。见表3。

表3 各组肝组织中Col Ⅰ、Col Ⅲ水平比较(,n =13)

表3 各组肝组织中Col Ⅰ、Col Ⅲ水平比较(,n =13)

注:与对照组比较,# P <0.05;与模型组比较,△P <0.05;与低剂量组比较,▲P <0.05;与高剂量组比较,□P <0.05

2.4 各组肝组织中TGF-β1、p38MAPK、α-SMA、MMP-9 mRNA 表达比较 p38MAPK mRNA 相对表达量组间比较,差异无统计学意义(P<0.05)。与对照组比较,模型组TGF-β1、α-SMA、MMP-9 mRNA相对表达量上升(P<0.05);与模型组比较,藤茶总黄酮低剂量组、藤茶总黄酮高剂量组及激动剂组TGF-β1、α-SMA mRNA 相对表达量降低(P<0.05),MMP-9 mRNA 相对表达量升高(P<0.05),其中藤茶总黄酮高剂量组TGF-β1、α-SMA 低于藤茶总黄酮低剂量组及激动剂组,MMP-9 高于TF 低剂量组及激动剂组,差异均具有统计学意义(P<0.05)。见表4。

表4 TGF-β1、p38MAPK、α-SMA、MMP-9 mRNA 相对表达量比较(,n =13)

表4 TGF-β1、p38MAPK、α-SMA、MMP-9 mRNA 相对表达量比较(,n =13)

注:与对照组比较,# P <0.05;与模型组比较,△P <0.05;与低剂量组比较,▲P <0.05;与高剂量组比较,□P <0.05

2.5 各组肝组织中TGF-β1、p38MAPK、p-p38MAPK、α-SMA、MMP-9 蛋白表达比较 p38MAPK 蛋白相对表达量组间比较,差异无统计学意义(P>0.05)。与对照组比较,模型组TGF-β1、p-p38MAPK、α-SMA、MMP-9 蛋白相对表达量升高(P<0.05);与模型组比较,藤茶总黄酮低剂量组、藤茶总黄酮高剂量组及激动机组TGF-β1、α-SMA、p-p38MAPK 蛋白相对表达量降低(P<0.05),MMP-9 蛋白相对表达量升高(P< 0.05),其中藤茶总黄酮高剂量组TGF-β1、α-SMA、p-p38MAPK 比藤茶总黄酮低剂量组及激动机组低,MMP-9 比藤茶总黄酮低剂量组及激动机组高,差异均具有统计学意义(P<0.05);激动剂组与藤茶总黄酮低剂量组比较,TGF-β1、p-p38MAPK、α-SMA、MMP-9 蛋白相对表达量均无明显变化(P>0.05),见图2 和表5。

表5 TGF-β1、p38MAPK、p-p38MAPK、α-SMA、MMP-9 蛋白相对表达量比较(n =13)

图2 各组Western blot 蛋白条带图

3 讨论

肝纤维化是肝星状细胞被反复破坏后持续修复的病理过程,是肝硬化形成的关键步骤[6]。TGF-β1/p38MAPK 作为影响肝纤维化的重要通路,与细胞因子形成、炎性因子调节、应激反应激活等过程紧密相关[7]。藤茶总黄酮作为中华民族的传统中草药,已有数百年历史,具有抗氧化、调节血糖、血压和体外抗肿瘤活性等作用,中医认为,肝气瘀滞是肝纤维化的发病机理,益气养阴,活血化瘀是中药的基本治法[8-9]。已有药效研究[10-11]表明藤茶总黄酮可以梳理肝气,改善肝脏受损组织,抵抗肝脏纤维化,但具体作用机制目前仍不明确。本研究通过探讨TGF-β1/p38MAPK 通路阐述藤茶总黄酮修复肝纤维化的作用机制,为进一步阐明藤茶总黄酮修复肝损伤机制奠定基础。

本研究发现模型组细胞外基质异常沉积,肝组织结缔严重,肝脏明显纤维化,提示大鼠肝纤维化模型构建成功。有研究报道[12-13],CCl4经肝脏代谢后生成三氯甲基攻击细胞膜,从而破坏细胞膜完整性,损坏肝脏结构,形成肝纤维化,因此CCl4是构建大鼠肝纤维化模型的最佳选择。病理学结果显示,藤茶总黄酮低剂量组、高剂量组、激动剂组肝纤维化程度明显改善,其中高剂量组肝脏结构较好,提示藤茶总黄酮可改善肝组织病理损伤程度。与对照组比较,模型组血清ALT、AST、ColI、ColⅢ水平均升高,与模型组比较,藤茶总黄酮低剂量组、高剂量组及激动剂组血清ALT、AST、ColI、ColⅢ水平均降低,其中藤茶总黄酮高剂量组ALT、AST、ColI 水平低于低剂量组和激动剂组,提示藤茶总黄酮可以降低血清ALT、AST、ColI、ColⅢ水平,改善肝脏功能。ALT、AST 主要分布于肝脏细胞质及线粒体中,两者血清中含量变化可以反映肝脏细胞结构的完整性[14]。ColI、ColⅢ主要分布于肝细胞外基质,ColI、ColⅢ水平的变化反映肝纤维化严重程度。

研究[15]显示TGF-β1 是一种强促胶原蛋白生成因子,可以激活p38MAPK 磷酸化,一方面促进肝星状细胞的激活与增殖,抑制MMP-9 合成,减少细胞基质降低;另一方面促进α-SMA 高表达,导致肌成纤维细胞分化,促进胶原蛋白合成,进一步加重肝纤维化形成。抑制MMP 细胞外基质降解,加速肝纤维化病程发展,TGF-β1 在肝组织中的表达与肝纤维化病理程度息息相关[16-17]。本研究发现,与对照组比较,模型组TGF-β1、α-SMA、MMP-9 mRNA、蛋白相对表达量上升,p-p38MAPK 蛋白相对表达量上升;与模型组比较,藤茶总黄酮低剂量组、高剂量组及激动机组TGF-β1、α-SMA mRNA、蛋白相对表达量降低,p-p38MAPK 蛋白相对表达量降低,MMP-9mRNA 和蛋白相对表达量均升高,其中藤茶总黄酮高剂量组TGF-β1、α-SMA mRNA、蛋白相对表达量及p-p38MAPK 蛋白相对表达量均低于藤茶总黄酮低剂量组及激动剂组,MMP-9mRNA 和蛋白相对表达量均高于藤茶总黄酮低剂量组及激动剂组,提示藤茶总黄酮可以抑制TGF-β1/p38MAPK 通路表达,激活MMP-9 活性,促进细胞基质降解,降低α-SMA 表达,抑制p38MAPK 磷酸化,降低胶原蛋白形成,并且随着剂量增加,进一步下调TGF-β1/p38MAPK 通路表达,改善疾病进程。

综上所述,藤茶总黄酮可能通过调控TGF-β1/p38MAPK 通路,逆转肝纤维化损伤,改善受损肝脏,为肝纤维化的预防和治疗提供理论依据,并为藤茶总黄酮在抗肝纤维化的综合利用及全面开发提供科学依据。

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