陆周翔 陶 松
浙江中医药大学附属湖州中医院 浙江 湖州 313000
本研究旨在构建肾阳虚类风湿关节炎(RA)骨质疏松(OP)的中医病证结合模型,探讨肾阳虚在RA-OP中的作用机制。
1.1 实验动物:SPF级DBA/1(H-2q)小鼠,雄性,8周龄,购自上海斯莱克实验动物有限责任公司,动物生产许可证号:SCXK(沪)2017-0005。在温度22±2oC,湿度50%~60%,光照12h光明和10h黑暗的环境明暗交替,换风次数15~20次/小时的环境下,饲养于浙江中医药大学动物实验研究中心,实验饲养室许可证号SYXK(浙)2018-0012。
1.2 试剂与仪器:牛Ⅱ型胶原(Chondrex,批号:Chondrex 20022),弗 氏 佐 剂(Chondrex,批 号 :Chondrex 7001,Chondrex 7002),小鼠白细胞介素17(IL-17)ELISA试剂盒(酶免,批号:MM-0170M1),小鼠骨保护素(OPG)ELISA试剂盒(酶免,批号:MM-0144M1),SYBR Green qPCR试剂盒(康为世纪,批号:CW2601),逆转录试剂盒(康为世纪,批号:CW2569),RIPA裂解液(碧云天,批号:P0013D),PMSF(碧云天,批号:ST506)。酶标仪(MD公司),核酸定量仪(Thermo Scientific),实时荧光定量PCR仪(罗氏公司)。
1.3 肾阳虚小鼠模型建立:取10只雄性DBA/1(H-2q)小鼠,皮下注射20mg·kg-1氢化可的松,每日1次,连续7d,进行小鼠肾阳虚造模;末次注射7d后进行类风湿关节炎的OP造模。
1.4 牛Ⅱ型胶原RA造模:取10只肾阳虚小鼠和10只正常小鼠进行RA造模,牛Ⅱ型胶原(sigma)以2.0mg/ml溶解在0.05mol/L醋酸(2.96ml乙酸用水稀释至1000ml)中,4℃过夜,逐滴加入等体积冷的完全弗氏佐剂(含有1mg/ml灭活的结核分枝杆菌)中后进行注射器乳化。第1天(第0周),每只小鼠接受0.1mg/0.1ml胶原,尾跟部2~3cm处皮内注射。免疫之后21天(第3周),动物接受完全相同的二次加强注射。造模成功后,RA-OP组(10只),肾阳虚型RA-OP组(10只);另取10只正常DBA/1(H-2q)小鼠作正常组。
1.5 动物体重及足趾肿胀度:二次免疫后,持续8周,每周监测小鼠体重变化,测量足掌厚度获得肿胀程度。当小鼠开始出现明显红肿,疼痛及关节活动受限等典型的胶原诱导性关节炎(CIA)改变,记录时间,求得发生率。
1.6 生化指标检测:末次给药后,小鼠禁食12h,眼眶取血,离心机以3000rpm/min,离心15min,收集上层血清,-20℃保存,48h内采用全自动生化分析仪测定ACTH、CORT、CRH的含量。
1.7 ELISA检测血清中IL-17、OPG:末次给药后,小鼠禁食12h,作腹主动脉采血,离心机以3000rpm/min,离心15min,收集血清。ELISA法检测血清中IL-17、OPG的含量。
1.8 组织学观察:骨小梁可直接反应骨的强度和稳定性,12周后将股骨标本经固定,脱钙,脱水,石蜡包埋,5μm连续切片后HE染色,在光镜下观察其骨小梁的结构变化。
1.9 RT-PCR检测股骨头组织 Th17、OPG、RANK、RANKL mRNA表达水平:以Trizol溶液按常规方法抽提股骨头组织中的总RNA,按照试剂盒说明将RNA逆转录为cDNA。以实时荧光定量PCR技术检测Th17、OPG、RANK、RANKL mRNA表达水平情况,运用2-△△Ct法计算基因相对表达量。所用引物序列如表1所示。
表1 PCR引物序列
1.10 统计学处理:采用SPSS 16.0统计软件进行数据分析,计量资料多组间用One-way-ANOAY单因素方差分析,组间比较采用SNK分析。方差不齐者采用Kruskal-Wallis H检验。所有数据以均值±标准差(±s)表示,P<0.05为差异有统计学意义。
2.1 肾阳虚型RA-OP小鼠体重、足趾肿胀度、炎症评分:由表2可知,与正常组相比,RA-OP组与肾阳虚型RAOP组小鼠体重显著下降,差异具有统计学意义(P<0.01)。由图1可知,与正常组相比,RA-OP组与肾阳虚型RA-OP组小鼠足趾厚度与炎症评分显著上升,差异有统计学意义(P<0.01)。
图1 肾阳虚型RA-OP小鼠足趾肿胀度(±s,分,n=10)
表2 肾阳虚型RA-OP小鼠体重(±s,g,n=10)
表2 肾阳虚型RA-OP小鼠体重(±s,g,n=10)
注:与正常组比较,*P<0.05,**P<0.01。
组别1周2周3周4周5周6周7周8周肾阳虚型RA-OP组26.40±1.73 25.86±2.03 25.87±1.80 25.65±1.86 25.37±1.68*25.19±1.86**24.86±1.81**24.43±1.56**正常组25.31±1.89 25.81±1.76 25.96±1.91 26.73±1.71 27.25±1.87 27.34±1.60 27.92±1.80 28.14±2.12 RA-OP组26.76±1.59 26.45±1.42 26.05±1.39 25.48±1.48 25.26±1.67*24.75±1.47**24.48±1.36**24.31±1.47**
2.2 肾阳虚型RA-OP小鼠CIA发生率:由图2可知,正常组小鼠CIA发生率始终为0,RA-OP组小鼠在二次免疫后第45天CIA发生率为100%,肾阳虚型RA-OP组小鼠在二次免疫后第36天CIA发生率为100%。
图2 肾阳虚型RA-OP小鼠CIA发生率
2.3 HE染色:由图3可得,正常组小鼠骨小梁完整排列紧密;而RA-OP组与肾阳虚型RA-OP组小鼠骨小梁排列稀疏,变细,间距加宽,可见微骨折。
图3 小鼠股骨组织恢复的情况(HE染色,200×)
2.4 肾阳虚型RA-OP小鼠血清ACTH、CORT、CRH水平:由图4可知,与正常组相比,RA-OP组与肾阳虚型RA-OP组小鼠外周血 ACTH、CORT、CRH含量均显著下降(P<0.01)。
图4 肾阳虚型RA-OP小鼠血清ACTH、CORT、CRH水平(±s,n=10)
2.5 肾阳虚型RA-OP小鼠血清IL-17与OPG水平:由表3可知,与正常组相比,RA-OP组与肾阳虚型RA-OP组小鼠血清,IL-17水平均显著上升,OPG水平均显著下降(P<0.01)。
表3 肾阳虚型RA-OP小鼠IL-17与OPG水平(±s,n=10)
表3 肾阳虚型RA-OP小鼠IL-17与OPG水平(±s,n=10)
注:与正常组比较,**P<0.01。
组别正常组RA-OP组肾阳虚型RA-OP组OPG(pg/ml)57.69±6.01 40.47±3.75**27.82±3.14**IL-17(pg/ml)117.69±13.79 160.13±19.64**187.05±17.52**
2.6 肾阳虚型RA-OP小鼠股骨头组织Th17、RANK、RANKL与OPG的mRNA表达水平:由图5可知,与正常组相比,RA-OP组与肾阳虚型RA-OP组小鼠股骨头组织Th17、RANK与RANKL mRNA水平均显著上升(P<0.05),OPG mRNA水平显著下降(P<0.01)。
图5 肾阳虚型RA-OP小鼠股骨头组织Th17、RANK、RANKL与OPG的mRNA表达水平(±s,n=3)
RA患者下丘脑-垂体-肾上腺(HPA)轴功能会降低,自身免疫应答异常增强[1]。肾阳虚证的表现主要与HPA轴不同层次的功能紊乱有关[2]。IL-17和RANKL/RANK/OPG信号通路与RA的关系密切相关。IL-17可以通过对RANKL/RANK/OPG信号通路的调节对成骨细胞和破骨细胞的活化产生重要影响。研究表明,IL-17诱导RANKL表达的受体激活剂,对破骨细胞生成以及骨吸收有至关重要的作用[3]。动物实验证实,在胶原或佐剂诱导的关节炎的动物模型中,血清RANKL水平明显升高,且OPG水平降低,RANKL/OPG比值显著增加[4]。因此,RANKL/OPG比值的升高,在类风湿性关节炎患者的关节破坏和骨侵蚀中起着重要作用。
本研究采用氢化可的松联合牛Ⅱ型胶原建立肾阳虚型RA-OP中医病证结合小鼠模型,结果显示,小鼠出现畏寒喜暖,毛发干枯,蜷缩弓背等表现,肾阳虚型RAOP组小鼠体重显著下降,小鼠足趾厚度显著上升;肾阳虚型RA-OP组小鼠在二次免疫后第36天CIA发生率为100%。肾阳虚型RA-OP组小鼠骨小梁排列稀疏,变细,间距加宽,可见微骨折。肾阳虚型RA-OP组小鼠外周血ACTH、CORT、CRH含量均显著下降;IL-17水平均显著上升,OPG水平均显著下降;股骨头组织Th17、RANK与RANKL mRNA水平均显著上升,OPG mRNA水平显著下降。
此病证结合动物模型,是在中医学理论指导下,结合现代医学理论,同时采用传统中医学及现代医学病因复制证候动物模型,同时具有疾病与证候特征,具有较好的可靠性及稳定性。故本实验肾阳虚与类风湿性关节炎模型复合以复制肾阳虚型RA骨质疏松中医病证结合模型,更符合中医临床要求的动物模型。