LncRNA OIP5-AS1靶向miR-511-3p抑制肺癌细胞的增殖、迁移和侵袭的影响

2021-03-18 08:07张耀森卢国杰钟惠铃高建伟陈亚勇胡瑞娟
分子诊断与治疗杂志 2021年2期
关键词:小室荧光素酶数目

张耀森 卢国杰 钟惠铃 高建伟 陈亚勇 胡瑞娟

肺癌是呼吸科常见的恶性肿瘤之一,具有高发病率、高死亡率和5年预后较差等特点,其在世界癌症死亡率中位居第一[1]。尽管在肺癌治疗方面已经取得了进展,但是肺癌患者的5年预后生存率仍然未超过20%[2]。长链非编码RNA 显示在肺癌中起到抗癌或抑癌的效果,参与肺癌细胞的增殖、迁移和侵袭等,在临床诊断和治疗中具有潜在的意义[3]。研究发现,OIP5-AS1 在肺癌组织中表达上调,其异常表达与肿瘤大小、淋巴结转移和预后不良相关;敲低OIP5-AS1 能够抑制肺癌细胞的增殖,OIP5-AS1 通过调控miR-378a-3p 促进肺癌细胞的增殖[4]。miR-511-3p 在前列腺癌、结直肠癌等癌症中异常表达[5-6]。研究发现,miR-511-3p 在前列腺中组织和细胞中表达下调,可能与患者的总体生存期较短相关,过表达miR-511-3p 可以促进前列腺癌细胞的增殖和迁移[5],但是在肺癌中的研究机制尚不明确。因此,本研究将探讨LncRNA OIP5-AS1 通过靶向调控miR-511-3p 对肺癌细胞的增殖、迁移和侵袭的影响。

1 材料与结果

1.1 细胞和主要试剂

人正常肺上皮细胞BEAS-2B 和人肺癌细胞A549、NCI-H460、NCI-H2170 购自中国科学院上海细胞库;FBS、RPMI 1640 购自美国Gibco 公司;Lipofectamine 2000 试剂盒、Trziol 试剂盒和逆转录试剂盒购自美国Invitrogen 公司;青霉素、链霉素、MTT 试剂盒购自北京索莱宝公司;Transwell 小室、Matrigel 基质胶购自美国Corning 公司;CyclinD1抗体、MMP-2 抗体、GAPDH 抗体购自美国Abcam公司;双荧光素酶试剂盒美国Promega 公司;引物由上海吉玛公司设计合成。

1.2 细胞培养与转染

人正常肺上皮细胞BEAS-2B 和人肺癌细胞A549、和NCI-H460、NCI-H2170 置于5%CO2、37℃培养箱中培养,且培养基内含有10%FBS、100 U/mL青霉素和100 U/mL 链霉素的RPMI 1640 培养基。细胞生长至85%时,加入胰酶消化传代培养。将对数生长期的肺癌细胞A549 在培养内稀释细胞,然后按照Lipofectamine 2000 试剂盒说明书将si-NC 组、si-OIP5-AS1 组、miR-NC 组、miR-511-3p组、pcDNA 组、si-OIP5-AS1+anti-miR-NC 组 和si-OIP5-AS1+anti-miR-511-3p 组,转染至A549 细胞中,转染6 h 后换新鲜培养基,继续培养48 h。

1.3 OIP5-AS1和miR-511-3p的表达

取1.2 各组的正常肺上皮细胞BEAS-2B 和人肺癌细胞A549、和NCI-H460、NCI-H2170,采用Trziol 试剂盒说明书提取总RNA,在分光光度计测定RNA 纯度和浓度,采用逆转录试剂盒合成cDNA,然后进行qRT-PCR 扩增,其中分别以GAPDH 和U6 作为内部内参。

1.4 MTT 检测细胞增殖

取1.2 各组肺癌细胞A549,加入0.25%胰酶消化细胞,然后将细胞稀释后接种至96 孔板内,细胞密度为2×103个/孔,培养时间至48、72 h 时,每孔内加入5 mg/mL MTT,培养4 h,培养液内加入DMSO,在酶标仪A490 纳米处检测细胞吸光度值。

1.5 Transwell 检测细胞迁移和侵袭

细胞迁移实验:取1.2 各组肺癌细胞A549,采用不含血清的RPMI1640 培养基将细胞密度调整为1×105个/mL。然后在Transwell 下层小室加入400 μL 含10% FBS 的RPMI 1640 培 养基,Transwell 上层小室加入100 μL 细胞,上层小室放入下层下室培养48 h,通过棉签轻轻擦去未发生迁移的细胞,甲醇固定细胞10 min 后,采用结晶紫染色30 min,显微镜下随机选取5 个视野,拍照观察,计算取平均值。

细胞侵袭实验:在不含血清的RPMI1640 培养内按照1∶3 比例稀释Matrigel 基质胶,在Transwell上层小室加入稀释好的100 μL 细胞,其他步骤同上述迁移实验一致。

1.6 蛋白免疫印迹法检测CyclinD1 和MMP-2 蛋白表达

取1.2 各组肺癌细胞A549 采用常规方法提取细胞总蛋白,按照二喹啉甲酸法定量蛋白。冰浴煮沸需要上样的缓冲液,在SDS-PAGE 上样孔内加入40 μg 蛋白样品,转移至PVDF 膜上,室温封闭培养1 h,加入一抗,CyclinD1 抗体、MMP-2 抗体和GAPDH 抗体,4℃过夜培养,加入二抗,室温培养2 h,滴加ECL 显影曝光,分析蛋白条带灰度值,计算CyclinD1 和MMP-2 蛋白。

1.7 双荧光素酶报告实验

取1.2 各组肺癌细胞A549 消化家属,将细胞稀释至1×104个/孔接种至24 孔板中,培养48h。将构建的OIP5-AS1 野生型载体(wt-OIP5-AS1)和突变型(mut-OIP5-AS1)载体与miR-NC 或miR-511-3p 共转染,转染成功后继续培养48 h,采用双荧光素酶试剂盒检测荧光素酶活性。

1.8 统计学方法

采用统计学软件SPSS 22.0 进行数据分析;计量资料以(±s)表示,均符合正态分布,两组间比较通过t检验,多组间比较通过单因素方差分析;以P<0.05 表示差异有统计学意义。

2 结果

2.1 OIP5-AS1 和miR-511-3p 在肺癌细胞中的表达

与正常肺上皮细胞BEAS-2B 相比,肺癌细胞A549、NCI-H23 和NCI-H2170 中OIP5-AS1 表达量均显著增加(P<0.05),miR-511-3p 表达量均显著降低,差异有统计学意义(P<0.05)。见表1。

2.2 敲低OIP5-AS1 对肺癌细胞A549 的增殖、迁移和侵袭的影响

与si-NC 组相比,si-OIP5-AS1 组的OIP5-AS1表达、OD 值(48、72 h 时)、迁移、侵袭细胞数目以及CyclinD1、MMP-2 蛋白表达均显著降低,差异有统计学意义(P<0.05)。见图1、表2。

2.3 过表达miR-511-3p 对肺癌细胞A549 的增殖、迁移和侵袭的影响

与miR-NC组相比,miR-511-3p组的miR-511-3p表达显著增加(P<0.05),而OD 值(48 h 和72 h时)、迁移细胞数目、侵袭细胞数目、CyclinD1 蛋白表达、和MMP-2 蛋白表达均显著降低差异有统计学意义(P<0.05)。见图2、表3。

表2 敲低OIP5-AS1 对肺癌细胞A549 的增殖、迁移和侵袭的影响(±s)Table 2 Effect of knocking down OIP5-AS1 on the proliferation,migration and invasion of lung cancer cell A549(±s)

表2 敲低OIP5-AS1 对肺癌细胞A549 的增殖、迁移和侵袭的影响(±s)Table 2 Effect of knocking down OIP5-AS1 on the proliferation,migration and invasion of lung cancer cell A549(±s)

注:与si-NC 比较,aP<0.05。

分组si-NC si-OIP5-AS1 t 值P 值OIP5-AS1 2.12±0.25 0.85±0.08a 14.515 0.000 OD(450)48 h 0.71±0.07 0.46±0.05a 8.719 0.000 72 h 0.87±0.07 0.58±0.04a 10.791 0.000迁移细胞数目(个)154.61±16.35 72.42±7.73a 13.634 0.000侵袭细胞数目(个)133.60±12.43 65.65±6.58a 14.494 0.000 CyclinD1 0.98±0.07 0.44±0.05a 18.832 0.000 MMP-2 1.02±0.09 0.51±0.04a 15.535 0.000

表3 过表达miR-511-3p 对肺癌细胞A549 的增殖、迁移和侵袭的影响(±s)Table 3 Effect of overexpression of miR-511-3p on the proliferation,migration and invasion of lung cancer cell A549(±s)

表3 过表达miR-511-3p 对肺癌细胞A549 的增殖、迁移和侵袭的影响(±s)Table 3 Effect of overexpression of miR-511-3p on the proliferation,migration and invasion of lung cancer cell A549(±s)

注:与miR-NC 比较,aP<0.05。

分组miR-NC miR-511-3p t 值P 值miR-511-3p 0.48±0.05 1.76±0.17a 21.670 0.000 OD(450)48 h 0.77±0.07 0.52±0.05a 8.719 0.000 72 h 0.92±0.08 0.65±0.06a 8.100 0.000迁移细胞数目(个)141.33±14.82 68.52±5.63a 13.778 0.000侵袭细胞数目(个)136.44±13.16 62.16±5.39a 15.670 0.000 CyclinD1 0.95±0.08 0.49±0.04a 15.429 0.000 MMP-2 0.97±0.08 0.54±0.05a 13.674 0.000

双荧光素酶实验报告结果显示,与miR-NC 组相比,miR-511-3p 组显著降低wt-OIP5-AS1 荧光素酶活性,差异有统计学意义(P<0.05),对mut-OIP5-AS1 无明显变化,与pcDNA 组相比OIP5-AS1 组的miR-511-3p 表达显著降低,差异有统计学意义(P<0.05);与si-NC组相比,si-OIP5-AS1组的miR-511-3p表达显著增加,差异有统计学意义(P<0.05)。见图3、表4、5。

图3 OIP5-AS1 与miR-511-3p 结合位点Figure 3 OIP5-AS1 and miR-511-3p binding site

表4 双荧光素酶报告实验(±s)Table 4 Double luciferase report experiment(±s)

表4 双荧光素酶报告实验(±s)Table 4 Double luciferase report experiment(±s)

分组miR-NC miR-511-3p t 值P 值wt-OIP5-AS1 0.98±0.07 0.43±0.05 19.181 0.000 mut-OIP5-AS1 0.99±0.08 0.95±0.07 1.129 0.276

表5 OIP5-AS1 调控miR-511-3p 的表达Table 5 OIP5-AS1 regulates the expression of miR-511-3p

2.5 抑制miR-511-3p 部分回复敲低OIP5-AS1 对肺癌细胞A549 的增殖、迁移和侵袭的影响

与si-OIP5-AS1+anti-miR-NC 组相比,si-OIP5-AS1+anti-miR-511-3p 组的miR-511-3p 表达显著降低(P<0.05),而OD 值(48、72 h 时)、迁移、侵袭细胞数目、CyclinD1 和MMP-2 蛋白表达均显著增加(P<0.05)。见图4、和表6。

图4 抑制miR-511-3p 可以部分回复敲低OIP5-AS1 对肺癌细胞A549 的迁移和侵袭的影响Figure 4 Inhibition of miR-511-3p can reverse the effect of knockdown of partial OIP5-AS1 on the migration and invasion of lung cancer cell A549

3 讨论

OIP5-AS1 是在编码OIP5 基因沿着反义方向转录的,最早是在斑马鱼中鉴定出来,在中枢神经系统的早期发育中具有重要作用[7]。OIP5-AS1 在肺腺癌、乳腺癌、神经胶质瘤和肝母细胞瘤中异常表达,调控肿瘤细胞的增殖和凋亡等机制[8]。Yang 等[9]研究发现,OIP5-AS1 在宫颈癌组织和细胞中表达上调,异常表达与晚期分期、淋巴结转移和总体生存率低显著相关;OIP5-AS1 可以通过miR-143-3p 上调ITGA6 促进宫颈癌细胞的增殖和侵袭。OIP5-AS1 在肺腺癌组织和细胞中表达上调,OIP5-AS1 通过miR-448 调控肺腺癌细胞的增殖、迁移和侵袭[10]。Mei 等[11]研究发现,OIP5-AS1 在非小细胞肺癌表达上调,与肿瘤分期和较差的不良预后有关;抑制OIP5-AS1 抑制非小细胞肺癌细胞的血管形成和侵袭。本研究结果显示,敲低OIP5-AS1的表达可以抑制肺癌细胞A549 的增殖、迁移和侵袭,说明OIP5-AS1 可以作为肺癌潜在生物标志物。

miRNA 在肺癌细胞异常表达,通过调控细胞的增殖、迁移和侵袭等发挥着作用[12-13],如miR-124-3p、miR-379-5p 和miR-3655 等[14]。Chi 等[15]研究结果发现,miR-203 在肺癌细胞表达下调,miR-203通过调控RGS17 抑制肺癌细胞的增殖、侵袭和迁移。miR-511-3p 在如乳腺癌中表达下调,LINC02163 通过调节miR-511-3p/HMGA2 轴促进乳腺癌细胞的增殖、迁移和侵袭,并抑制其细胞凋亡[16],说明miR-511-3p 可以作为肿瘤潜在生物标志物。OIP5-AS1 可以海绵多个下游miRNA参与肿瘤细胞的增殖、迁移和侵袭,本研究结果显示,miR-511-3p 在肺癌细胞中表达下调,过表达miR-511-3p 可以抑制肺癌细胞A549 的增殖、迁移和侵袭,说明miR-511-3p 可以作为肺癌的生物标志物。进一步实验证明,OIP5-AS1 可以靶向调控miR-511-3p,抑制miR-511-3p 可以部分回复敲低OIP5-AS1 对肺癌细胞A549 的增殖、迁移和侵袭的影响,说明OIP5-AS1 通过调控miR-511-3p 影响A549 细胞的增殖、迁移和侵袭。

表6 抑制miR-511-3p 可以部分回复敲低OIP5-AS1 对肺癌细胞A549 的增殖、迁移和侵袭的影响(±s)Table 6 Inhibition of miR-511-3p can reverse the effect of partial knockdown of OIP5-AS1 on the proliferation,migration and invasion of lung cancer cell A549(±s)

表6 抑制miR-511-3p 可以部分回复敲低OIP5-AS1 对肺癌细胞A549 的增殖、迁移和侵袭的影响(±s)Table 6 Inhibition of miR-511-3p can reverse the effect of partial knockdown of OIP5-AS1 on the proliferation,migration and invasion of lung cancer cell A549(±s)

分组si-OIP5-AS1+anti-miR-NC si-OIP5-AS1+anti-miR-511-3p t 值P 值miR-511-3p 2.33±0.21 1.25±0.12 13.396 0.000 OD(450)48 h 0.43±0.04 0.62±0.06 7.904 0.000 72 h 0.52±0.05 0.76±0.08 7.632 0.000迁移细胞数目(个)75.62±6.96 132.46±12.63 11.825 0.000侵袭细胞数目(个)62.48±7.32 115.93±9.85 13.066 0.000 CyclinD1 0.41±0.04 0.72±0.07 11.535 0.000 MMP-2 0.47±0.05 0.75±0.06 10.755 0.000

综上所述,敲低OIP5-AS1 的表达能够抑制肺癌细胞的增殖、迁移和侵袭,其作用机制可能与miR-511-3p 有关,旨在为早期肺癌诊断和治疗提供新的作用靶点。

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